JoVE Logo

Войдите в систему

Для просмотра этого контента требуется подписка на Jove Войдите в систему или начните бесплатную пробную версию.

В этой статье

  • Резюме
  • Аннотация
  • протокол
  • Обсуждение
  • Раскрытие информации
  • Благодарности
  • Материалы
  • Ссылки
  • Перепечатки и разрешения

Резюме

В этой статье описывается управление Люкс-отмеченных Бактериями мышей и последующее В естественных условиях Анализ с использованием ИВИС биолюминесценции изображений.

Аннотация

Это видео описывает использование всего тела bioluminesce томография (BLI) для изучения бактериальных торговле живыми мышами, с акцентом на использовании бактерий в генной и клеточной терапии рака. Бактерии, присутствующие привлекательной класс вектор для лечения рака, обладающие природной способностью расти преимущественно в опухоли после системного введения. Бактерии инженерии, чтобы выразить кассеты люкс гена разрешения BLI обнаружения бактерий и одновременно опухоли сайтов. Расположение и уровень бактерий в опухоли с течением времени могут быть легко рассмотрены, визуализировали в двух или трех измерениях. Метод применим для широкого спектра бактериальных видов и типов опухолей ксенотрансплантата. В данной статье описывается протокол для анализа биолюминесцентного бактерий в подкожной опухоли мышей подшипника. Визуализация синантропных бактерий в желудочно-кишечном тракте (ЖКТ) от BLI также описан. Это мощный и дешевый, изображений в реальном времени стратегия предTS идеальный метод для изучения бактерий в естественных условиях в контексте исследования рака, в частности генной терапии и инфекционных заболеваний. Это видео описывает процедуру для изучения люкс с метками E. палочки в живых мышей, что свидетельствует о пространственной и временной отсчет достижимо использованием BLI с системой ИВИС.

протокол

1. Опухоль индукционные

  1. Для обычных индукции опухоли, минимальная доза онкогенных клеток суспендируют в 200 мкл бессывороточной культуральной среде вводили подкожно (п) во фланг инфекцию бесплатный 6-8 недельных самок BALB / C или бестимусным MF1-nu/nu мышей п = 6 (Harlan, Оксфордшир, Великобритания) (1 х 10 6 клеток 4T1) с использованием 21-калибровочного иглы шприца. Жизнеспособность клеток, используемых для посева было больше, чем на 95%, как это определено количество визуальных использованием гемоцитометра и Трипановый Синяя краска исключения (Gibco).
  2. После создания опухоли, опухоли было позволено расти и развиваться и наблюдали дважды в неделю. Объем опухоли вычисляли по формуле V = (AB 2) Π / 6, где находится самый большой диаметр опухоли и B является самой длинной диаметра, перпендикулярного диаметра.

2. Бактериального препарата

  1. Бактериальный штамм, используемый в этом protocoЯ был E. соН К-12 MG1655, небелковой-токсин, экспрессирующих штамм, укрывательство luxABCDE кодирования плазмиды, которая позволяет бактериям быть обнаружены BLI. E. палочки MG1655 содержащие интегрированный luxABCDE был выращен в аэробных условиях при 37 ° С в среде LB (Sigma-Aldrich, Ирландия) с добавлением 300 мкг / мл эритромицина (Em). Биолюминесцентного производной MG1655 был создан с помощью плазмиды p16S люкс, который содержит учредительные HELP P luxABCDE оперона 1.
  2. Для подготовки введения мышам, культуры инкубировали в среде LB при 37 ° C в шейкере со скоростью 200 оборотов в минуту до середины логарифмической фазы (оптической плотности при 600 нм). Бактерии собирают центрифугированием (6000 х г в течение 5 мин), промывают PBS (Sigma), и разводят в PBS 1 × 10 7 колониеобразующих единиц (КОЕ) / мл для внутривенного введения, или 1 х 10 10 для принудительного кормления.

3. Бактериальные администрацииния

  1. Мыши были произвольно разделены на экспериментальные группы, когда опухоль достигает примерно 100 мм 3 объема. Для внутривенного введения, сдержанный мышей каждый получил 10 6 клеток в 100 мкл, вводится непосредственно в латеральную хвостовую вену помощью 28G иглу шприца. Количество жизнеспособных каждой посевной определяется ретроспективным покрытием.
  2. Для исследования желудочно-кишечного тракта колонизации, 10 9 бактериальных клеток вводили перорально в 100 мкл на мышь через желудочный зонд, три дня подряд. Ранее существовавшие комменсальной бактериальной уровни снизились до подачи добавлением 5 мг / мл стрептомицина в мышь питьевой воды в течение 7 дней до начала желудочный зонд 1.

4. Биолюминесценции изображений

  1. 2D в естественных условиях BLI изображений проводили с использованием IVIS100 (суппорт). В определенных временных точках сообщение бактериальной администрации, мышей анестезировали использованием XGI-8 суппорт газа анестезииСистема с 3% Isofluorane, и все тело изображение анализ был проведен в ИВИС 100 система в течение 2-5 мин при высокой чувствительности.
  2. Для визуализации 3D, анестезированных мышей были помещены в трансфера мыши изображений внутри оптической системы визуализации для спины томография (ИВИС Spectrum, суппорт). Для получения изображения бактериальной люциферазы сигнала для 3D-оптических реконструкции, фильтр твердых диапазоне длин волн 500-580 нм были использованы с бен приобретение 16 раз по 3-4 мин на фильтр, чтобы максимизировать отношение сигнал-шум. В рамках этой последовательности захвата изображений, структурированные изображения света было получено для определения высоты карте. Эта карта была введена рассеянный свет томографии (DLIT) реконструкций алгоритмов, которые были использованы для формирования 3D-изображения с помощью оптического неотрицательных наименьших квадратов оптимизации 2.
  3. Анализ изображений: Регионы интересов были определены и количественно, используя программное обеспечение Живые изображения (суппорт).

5. ПредставительРезультаты

В этом исследовании, непатогенные синантропных бактерий E.coli K-12 MG1655 выражения luxABCDE оперона была IV вводили мышам подкожно опухолями 4T1 ксенотрансплантата. Бактериальные люкс сигнал был обнаружен в частности, в опухоли мышей сообщению IV-администрирования (рис. 2). Культура восстановления бактерий из образцов мышей подтверждает существование линейной зависимости между жизнеспособных бактерий номера и количество света обнаружено (рис. 3). В естественных изображений перорального синантропных бактерий в ЖКТ достигается также с помощью 3D BLI.

figure-protocol-4981
Рисунок 1. Протокол Timeline. Подкожные опухоли индуцированные у мышей и бактерий вводили при развитии опухоли (100 мм 3). Онлайн мышей BLI имв возрасте в различных временных точках сообщение бактериальной администрации (стрелки отображения типичных раза).

figure-protocol-5441
Рисунок 2. Администрация E. палочки MG1655 luxABCDE опухоли мышей подшипника. Подкожный 4T1 опухоли индуцированные в MF1 Nu / Nu мышей и E. палочки MG1655 luxABCDE вводить на развитие опухоли. Каждое животное получало 10 6 клеток вводится непосредственно в боковую хвостовую вену. Мыши были обследованы в четырех временных точках в ходе исследования (черные точки оси и изображения) с последующей восстановление жизнеспособных бактерий (КОЕ) из опухолей образца жертву мышей (гистограмма). Увеличение числа и бактериальные плазмиды экспрессии генов, в частности, в опухолях наблюдалась в течение долгого времени (представительных мышей показано на момент времени). Нажмите, чтобы увеличить показатель .

figure-protocol-6407
Рисунок 3. Отношения между внутриопухолевые бактериального числа и биолюминесценции. Жизнеспособных бактерий в опухоли были перечислены экс естественных условиях бактериальные культуры от опухоли после BLI в различные моменты времени пост IV администрации. Вход значения бактериального числа (КОЕ) по отношению к bioluminesce в естественных единицах на графике. Надежная корреляция между бактерий и бактериальных сигналы биолюминесценции наблюдаются R 2 = 0,9717 1.

figure-protocol-7030
Рисунок 4. 3D ИВИС изображения мышиного желудочно-кишечного тракта колонизирована E. палочки MG1655. GIT мышей была колонизирована перорального введения 10 9 КОЕ E. палочки в течение трех дней подряд. Пример изолированного изображения с 3D-томографии колонизировали мышь показано на рисунке.3D-изображения показывают цифровой атлас мыши скелета обеспечить анатомическую регистрации. E. палочки MG1655 биолюминесценции видна в зеленый при более низких, и фиолетовый на более высоких уровнях.

Обсуждение

В контексте генной терапии, использование биологических агентов для доставки терапевтических генов для пациентов показало большие надежды 3-5. Подобно вирусам, врожденные биологические свойства бактерий условия для эффективной доставки ДНК в клетки или ткани, особенно в контек?...

Раскрытие информации

Нет конфликта интересов объявлены.

Благодарности

Авторы хотели бы отметить поддержку, относящиеся к этой рукописи от Европейской комиссии Седьмой Рамочной Программы (PIOF-GA-2009-255466) и Ирландский совет по исследованиям в области здравоохранения (HRA_POR/2010/138). Lux-отмеченных E. палочка была своего рода подарок от доктора Кормак Гаан, University College Cork.

Материалы

NameCompanyCatalog NumberComments
Название реагента Компания Номер в каталоге Комментарии
4T1 клеточной линии ATCC CRL-2539 Сингенных модели рака молочной железы, полученных от спонтанно возникающих BALB / C опухоли молочной железы
DMEM Sigma-Aldrich D6429 Дульбекко изменения Орла Средний
PBS Sigma-Aldrich D8537 Фосфатным буферным раствором
Xenogen ИВИС Суппорт Life Sciences ИВИС 100 для 2D изображений; ИВИС Spectrum для 3D.
Лурия бульон Миллер (LB) Sigma-Aldrich L2542 Рост средой для E. палочки
Эритромицин Sigma-Aldrich E5389 Антибиотик
Стрептомицин Sigma-Aldrich S9137 Антибиотик
MF1nu/nu мышей Харлан (UK) 069 (ню) / 070 (Nu / +) Hsd: Бестимусным Nude-Foxn1nu
BALB / C мышей Харлан (UK) 066 Гаплотипа: H-2 D
Желудочный зонд иглы Vet-Tech Solutions (UK) DE009 22G х 38 мм прямой зонд иглы
Шприц для инъекции IV BD Biosciences 309309 - 1 мл Инсулиновый шприц с 28 х G ½ дюйма микро-тонкой иглой IV.
Шприц для инокуляции опухоли Braun 9161376V Omnifix 26 G х иfrac12; дюймовые иглы

Ссылки

  1. Cronin, M., et al. High resolution in vivo bioluminescent imaging for the study of bacterial tumour targeting. PLoS One. 7, e30940 (2012).
  2. Kuo, C., Coquoz, O., Troy, T. L., Xu, H., Rice, B. W. Three-dimensional reconstruction of in vivo bioluminescent sources based on multispectral imaging. J. Biomed. Opt. 12, 024007 (2007).
  3. Tangney, M., Ahmad, S., Collins, S. A., O'Sullivan, G. C. Gene therapy for prostate cancer. Postgrad Med. 122, 166-180 (2010).
  4. Morrissey, D., O'Sullivan, G. C., Tangney, M. Tumour targeting with systemically administered bacteria. Curr. Gene Ther. 10, 3-14 (2010).
  5. Collins, S. A., et al. Viral vectors in cancer immunotherapy: which vector for which strategy. Curr. Gene Ther. 8, 66-78 (2008).
  6. Yu, Y. A., Zhang, Q., Szalay, A. A. Establishment and characterization of conditions required for tumor colonization by intravenously delivered bacteria. Biotechnol. Bioeng. 100, 567-578 (2008).
  7. Baban, C. K., Cronin, M., O'Hanlon, D., O'Sullivan, G. C., Tangney, M. Bacteria as vectors for gene therapy of cancer. Bioeng. Bugs. 1, 385-394 (2010).
  8. Cronin, M., et al. Orally administered bifidobacteria as vehicles for delivery of agents to systemic tumors. Mol. Ther. 18, 1397-1407 (2010).
  9. van Pijkeren, J. P., et al. A novel Listeria monocytogenes-based DNA delivery system for cancer gene therapy. Hum. Gene Ther. 21, 405-416 (2010).
  10. Ahmad, S., et al. Induction of effective antitumor response after mucosal bacterial vector mediated DNA vaccination with endogenous prostate cancer specific antigen. J. Urol. 186, 687-693 (2011).
  11. Riedel, C. U., et al. Improved luciferase tagging system for Listeria monocytogenes allows real-time monitoring in vivo and in vitro. Appl Environ Microbiol. 73, 3091-3094 (2007).
  12. Cheng, C. M., et al. Tumor-targeting prodrug-activating bacteria for cancer therapy. Cancer Gene Ther. 15, 393-401 (2008).
  13. Foucault, M. L., Thomas, L., Goussard, S., Branchini, B. R., Grillot-Courvalin, C. In vivo bioluminescence imaging for the study of intestinal colonization by Escherichia coli in mice. Appl. Environ. Microbiol. 76, 264-274 (2010).
  14. Collins, S. A., Hiraoka, K., Inagaki, A., Kasahara, N., Tangney, M. PET Imaging For Gene & Cell Therapy. Curr. Gene Ther. , (2012).
  15. Tangney, M., Francis, K. P. In vivo Optical Imaging in Gene & Cell Therapy. Curr. Gene Ther. , (2012).

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на использование текста или рисунков этого JoVE статьи

Запросить разрешение

Смотреть дополнительные статьи

69VectorLuxImagingLuciferase

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Исследования

Образование

О JoVE

Авторские права © 2025 MyJoVE Corporation. Все права защищены