JoVE Logo

Войдите в систему

Для просмотра этого контента требуется подписка на Jove Войдите в систему или начните бесплатную пробную версию.

В этой статье

  • Резюме
  • Аннотация
  • Введение
  • протокол
  • Результаты
  • Обсуждение
  • Раскрытие информации
  • Благодарности
  • Материалы
  • Ссылки
  • Перепечатки и разрешения

Резюме

Improved in vitro neurotoxicity assays would aid the identification of new neuroprotective compounds. The utility of a real-time impedance-based cell analyzer to determine cytotoxicity and cytoprotection in neuronal cell lines and to delineate the involvement of second messenger pathways, thus gaining insight in the mechanism of neuroprotection is presented.

Аннотация

Многие мозговые нарушения, связанные с есть гибель нейронов, участвующих в их патофизиологии. Улучшенная в моделях пробирке изучать нейропротекторные или нейротоксическое действие препаратов и вниз по течению путей, участвующих поможет разобраться в молекулярных механизмах нейропротекции / нейротоксичности и потенциально может способствовать развитию наркотиков. Тем не менее, многие существующие анализы токсичности в пробирке иметь серьезные ограничения - наиболее оценить нейротоксичность и нейропротекцию в одной точке времени, не позволяя наблюдать во времени процесса и кинетики эффекта. Кроме того, возможность для сбора информации о последующих сигнальных путей, участвующих в нейропротекции в реальном времени будет иметь большое значение. В текущем протоколе мы опишем использование в режиме реального времени импеданса на основе анализатора клеток, чтобы определить нейропротекторные эффекты серотонина 2А (5-HT 2A) агонистов рецепторов в нейронной клеточной линии под этикеткой без и в режиме реального времени Кондитионы с помощью измерения импеданса. Кроме того, показано, что ингибиторы второго путей мессенджеров может быть использован, чтобы очертить ниже по течению молекул, участвующих в нейропротекторного эффекта. Мы также описываем полезность этого метода, чтобы определить, способствует ли действие на пролиферацию клеток к наблюдаемому нейропротекторного эффекта. Система использует специальные микроэлектронных пластин, называемых Е-листы, содержащие чередующихся золото микроэлектродов массивы на нижней поверхности лунок, выступающей в качестве датчиков клеток. Импеданс считывания изменяется по количеству прикрепленных клеток, жизнеспособность клеток, морфологии и адгезии. Безразмерный параметр называется сотовый Индекс получают из измерения электрического сопротивления и используется для представления состояния клеток. В целом, в реальном времени сопротивление основе анализатор клеток позволяет в режиме реального времени, без наклеек оценки нейропротекции и нейротоксичности, и оценки второй участия посыльного путей, способствуя болееПодробное и высокой пропускной оценка потенциальных нейропротекторами в пробирке, для выбора терапевтических кандидатов.

Введение

Гибели нейронов играет важную роль в патофизиологии многих мозга расстройств, связанных с 1. Наличие надежной и высокой пропускной в пробирке анализов токсичности имеет решающее значение для достичь лучшего понимания тонкостей механизмов нейротоксичности и помогут при выборе нейропротекторные молекулы в качестве терапевтических кандидатов в разработке лекарственных средств 2. Тем не менее, существует множество ограничений, чтобы наиболее широко используемые в пробирке нейротоксичности assays.They оценить поражение нервной / нейропротекцию в одной временной точке, не позволяя кинетическую разрешение; часто используют этикетку или зонд, который может вмешиваться в сигнальных путей и ограничить дополнительные исследования в той же популяции клеток, и часто трудоемкий, и во многих случаях не обеспечивают механистический понимание. В настоящем исследовании мы показали полезность в режиме реального времени импеданса на основе анализатора клеток, чтобы определить, нейротоксичность и нейропротекцию в нейронной клеточной линии в режиме реального времени и под этикеткой бесплатноусловия и обеспечить понимание последующих механизмов, с помощью анализа второго путей мессенджеров, участвующих в эффекте.

Предыдущие исследования подтвердили обоснованность анализатора в режиме реального времени клеток, чтобы определить цитотоксичность, а также воздействие на пролиферацию клеток в линии клеток по сравнению со стандартными методиками 3,4,5,6. Например, хорошая корреляция наблюдалась между показаниями стандартного жизнеспособность клеток WST-1 анализа и ценностей Сотовые Индекс в нескольких временных точках под базальных условиях распространения и после двух различных токсичных парадигм в HeLa клеток 3. В A549 и MDA-MB-231 клеток пролиферации и цитотоксичности, спровоцированной с микротрубочками стабилизатора паклитаксела показали очень близкие значения, когда оценивали путем измерения индекса клеток и стандартно используется сульфородамина В (SRB) анализ 4. В нейронной клеточной линии увековечены нейронов гиппокампа НТ-22 Сотовые измерения индекса были подтверждены на их способность тO обнаружить пролиферацию клеток, цитотоксичность и глутамата цитопротекцию против широко используемого 3- (4,5-диметилтиазол-2-ил) 2,5-дифенилтетразоли-бромид (МТТ) 5. В том же исследовании Результаты анализа МТТ и измерения Указатель Сотовый также хорошо коррелирует измерения нейронов пролиферацию клеток-предшественников, цитотоксичность после факторов роста лишения и спасения цитотоксичности по пан-ингибитор каспазы QVD 5. Цитотоксичность индуцированных в клетках NIH 3Т3 по Vandetanib (роста эндотелия сосудов рецептора фактора и ингибитора рецептора эпидермального фактора роста) показали сходные результаты измеренных значений индекса с клеткой или поглощение нейтрального красного анализа 6.

Недавно мы использовали систему анализатора клеток в реальном времени для оценки нейропротекторное действие серотонина 2A агонист рецептора (2A 5-НТ) (±) -2,5-диметокси-4-iodoamphetamine гидрохлорид (DOI) в нейрональной клеточной линии ( SK-N-SH клетки) и скрининг для вовлечения СЕКОой посыльного пути через контроль эффективности их химического ингибирования на наблюдаемой нейропротекции 7. Интересно, что 5-HT 2A рецепторов имеет как галлюциногенные и nonhallucinogenic агонистов (как DOI и лизурид, соответственно), которые могут активировать как общие и различные вторичного мессенджера пути 8.

Преимущества представленной техники в том, что она позволяет собирать информацию о выживаемости клеток в реальном времени в ходе дней, чтобы очертить участие второго посыльного пути, чтобы оценить возможный вклад распространения эффектов нейропротекции, и выбрать оптимальное время Для дополнительных конечных точек исследований по той же клеточной популяции. Принципиальная схема рабочего процесса в текущем протоколе представлена ​​на рисунке 1.

протокол

1 Подготовка

  1. Поместите станцию ​​в реальном времени анализатора клетки в культуре ткани инкубатор при 37 ° С и 5% СО 2. Выполняйте все обращения для культивирования клеток и фармакологические методы лечения в капот культуры ткани в стерильных условиях.
  2. ПРИМЕЧАНИЕ: нейронов клеточные линии, требующие различные настройки температуры по сравнению со стандартными условиями для культуры, должны быть соответствующим образом скорректированы. Для слабо прилипшие клеточных линий, использовать покрывающие агенты, чтобы облегчить взаимодействие клеток с золотыми микроэлектродов в нижней части лунки Е-плиты 96.
  3. Подготовка 1,000X исходные растворы фармакологических соединений для лечения клеточной культуры (нейропротекторов и второй ингибиторы мессенджеров путей в соответствующем растворителе - диметилсульфоксид или стерильной воды) и хранить их при -20 ° С. Используйте растворитель, как автомобиль в следующих процедур.
  4. Культура человеческого нейробластомы SK-N-SH клетки в DMEM / F12, дополненной 10% фетальной бычьей сыворотки (FBS) (среда) пролиферацию клеток в культуральных колбах с 175 см 2 поверхности с плотностью около 75%. Держите количество проход клеток в диапазоне (около 10 проходов), чтобы установить соответствие между экспериментов с точки зрения скорости пролиферации клеток и ответ на цитотоксичность. Предпочтительны низкие значения прохождение.
  5. Промыть клейкий слой SK-N-SH клеток с PBS, и Trypsinize с 0,05% раствором трипсина-ЭДТА в течение 5 мин при 37 ° С. Центрифуга клетки при 170 × г в течение 5 мин для удаления трипсин. Ресуспендируют клеток в 10 мл пролиферации среды. Граф клеток с прилавка скипетр клеток и регулировать количество клеток в 300 000 клеток / мл, разбавляя клетки с распространением среды.

2 Покрытие и размножение SK-N-SH клеток

  1. Добавить 100 мкл распространения среды в каждую лунку по E-плиты 96 и оставить его на 30 минут в капот культуры ткани при комнатной температуре, чтобы уравновесить. Вставьте E-PLAТе 96 в режиме реального времени анализатора клеток станции в СО 2-инкубаторе при 37 ° С.
  2. Запустите программу анализатора клеток в реальном времени. На странице Макет выберите скважины включены в эксперименте и введите в поля ввода информации о типе клеток, количества клеток, имен и концентраций химических соединений, используемых для лечения клеток.
    Примечание: Для целей данного протокола по крайней мере, 4 повтора рекомендуются для каждой обработки.
  3. На странице программного Расписание определить «Шаги», включенный в эксперименте, выбрав количество зачисток измерительной ячейки Index и интервал между рабочими циклами для каждого шага. Поскольку Шаг 1 предопределено для измерения фона, выберите "Добавить шаг" и установите Шаг 2 для измерения индекса ячейки каждые 15 мин в течение 96 ч.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Для лечения, в котором, как ожидается, эффекты с быстрой кинетики, установить зачисток на более короткие промежутки времени.
  4. Нажмите кнопку Пуск, чтобы начать автоматически заданную Шаг 1и измерить фоновый импеданс СМИ. Это значение автоматически вычитают с помощью программного обеспечения в каждой точке данных, как только клетки добавляли в лунки.
  5. С помощью ранее полученного на стадии 1.5) клеточной суспензии из 300000 клеток / мл в среде распространения. 30000 клеток / лунку для клеточной токсичности / нейропротекция исследований и 15000 клеток / лунку для исследований клеточной пролиферации. Выньте E-Plate и добавить 100 мкл клеточной суспензии на лунку для клеток токсичности / нейропротекция исследований и добавить клеточной суспензии 50 мкл и 50 мкл распространения среду на лунку для исследований клеточной пролиферации. Количество посеянных клеток на лунку должно быть оптимизировано для каждой клеточной линии эмпирически.
  6. Аккуратно вихревой E-Plate 96 даже для обшивки клеток. Оставьте E-Пластина 96 в течение 30 мин в капот культуры ткани при комнатной температуре, чтобы позволить решить эти клетки равномерно на дне лунки.
  7. Вставьте E-Plate 96 в режиме реального времени анализатора клеток станции и начать Шаг 2 на графике рвозраст. Монитор величины индекса сотовый в течение всего эксперимента, просмотрев кривые клеток на странице участка и исходных данных индекса сотовый на Cell Index странице программного обеспечения.

3 Сыворотка Лишение

  1. 24 часа в сутки после посева клеток, приостановить эксперимент, и снимите E-Plate 96 от реального времени анализатора клеток станции. Развести второй ингибиторы посланник запасов 1,000X с DMEM / F12 сыворотки среде - до 200 × конечной концентрации. Лечить клетки с 1 мкл ингибиторы второго путей мессенджеров для проверки на их участии в нейротоксичности / нейропротекции 30 мин до начала цитотоксичность, ингибирует соответствующие пути. Верните E-Plate 96 на станцию ​​и возобновить экспериментальные измерения Индекса сотовый.
  2. Через 30 мин пауза эксперимент снова. Осторожно снимите распространения среду полностью от E-Plate 96 лунок с пипеткой (или многоканального пипетки), стараясь не нарушить клейкий слой клетокнаправляя край пипетки в угол скважины. Добавить 200 мкл / лунку бессывороточной DMEM / F12 среду (лишение среднего сыворотки). Обеспечить быстрый обмен клеточной культуральной среде, чтобы свести к минимуму механическое перемешивание клеток.
  3. Развести соединения должны быть проверены на их нейропротективных эффектов от 1,000X складе с бессывороточной DMEM / F12, до 200 × конечной концентрации. Добавить 1 мкл соединения должны быть проверены на их нейропротективных эффектов и 1 мкл ингибиторов второй путей мессенджеров в отдельных скважин в соответствии с экспериментальной плана.
  4. В клетках для исследований распространения не изменить среду. Развести тестируемых соединений с 1,000X складе 200 × конечной концентрации в среде распространения, лечения с 1 мкл на лунку и продолжают культуры в среде распространения.
  5. Резюме эксперимент продолжать Сотовые измерений индекса каждые 15 мин в течение 96 ч, как ранее установлено.

4 Данныенализ

  1. Для нейротоксичности / данные Нейропротекция нормализовать Cell Index к последней точке времени до медикаментозного лечения или смены среды для уменьшения различия между экспериментами, выбрав "нормализованное Cell Index" и "нормализовать Время" на странице участка.
  2. Выделите скважин на странице участка для экспериментальных условиях интерес и нажмите кнопку "Добавить", чтобы построить нормированные кривые Индекс сотовый. Обратите внимание на кинетику нейротоксического / нейропротекторного эффекта или вторичных мессенджеров торможения в виде нормализованных кривых Индекс клетки как функцию времени.
  3. Заметим, кривые Индекс ячейка для тестируемых лекарственной терапии в среде распространения в зависимости от времени, чтобы оценить, насколько действие на пролиферацию участвует в нейропротекторного / нейротоксического эффекта.
  4. Экспорт экспериментальную информацию для всех форумов сотовый временных точках из клетки странице программного Index в файл Excel, чтобы начать статистическую оценку результатов
    Примечание: В качестве первого шага в статистическом анализе набор модифицированных программ MATLAB, которые используют Т-теста в Уэлча, с р-значение нанесены semilogarithmically, использовать перевернутую ось против временной шкале (при условии, в качестве дополнительных файлов кода). Эти программы позволяют обнаружить р-значений по времени процессе всего эксперимента анализатора клеток в реальном времени, и, таким образом, упрощения выбора моментов времени для более детального статистического анализа. Смотрите дополнительные материалы для получения подробной информации о программах.
  5. Для статистического анализа различий в значениях Сотовые Индекс в различных условиях лечения в определенные моменты времени, выберите значения индекса сотовый в соответствующих временных точках из экспортированного файла Excel. Анализ значений индекса сотовый для выбранных временных точках с односторонним или двусторонним анализа дисперсии (ANOVA) с последующим тестом после специальной использованием статистического программного обеспечения.

Результаты

Сыворотка лишение приводит к снижению значений Сотовые индекс, который можно контролировать непрерывно с анализатором в режиме реального времени мобильный

Нейротоксические стимулы к клеткам привести к снижению значений Сотовые индекс, который можно конт...

Обсуждение

Текущий протокол представляет утилиту анализатора в реальном времени клеток для оценки непрерывно и под этикеток без условий Нейрозащитные / нейротоксическое действие соединений в нервных клеточных линий и, чтобы получить представление о втором пути мессенджеров, участвующих в эффе...

Раскрытие информации

Расходов на публикацию для текущего видео-статьи спонсировали "ACEA Biosciences".

Благодарности

Financial support for the experiments presented in the study was provided by the Marie Heim-Vögtlin program of the Swiss National Science Foundation.

We thank Ms. Johanna Nyffeler for developing a set of modified MATLAB programs for screening for statistically significant differences in real-time cell analyzer’s data and Dr. Yama Abassi for helpful discussion.

Материалы

NameCompanyCatalog NumberComments
xCELLigence  RTCA SP system bundleACEA BiosciencesNo: 00380601030Consists of RTCA Analyzer, RTCA SP Station and RTCA Control Unit
E-plate 96ACEA BiosciencesNo: 05232368001For culturing the cells, inserted in the RTCA SP Station
SK-N-SH cellsATCC (in partnership with LGC Standards)HTB-11Can be replaced by another adherent neuronal cell line of interest
DMEM/F12 Sigma-AldrichD8437Cell culture medium
Fetal bovine serumLife Technologies16140-063Supplements proliferation, but not serum deprivation medium
Tissue culture flask T175Sarstedt83.1812.302For culturing cells, which will be later plated on the E-Plate 96
0.05% Trypsin-EDTALife Technologies25300-054For trypsinization of cells cultured in tissue culture flasks
Scepter 2.0 cell counterMerck MilliporePHCC20060Automated cell counter
Phosphate-buffered salineLife Technologies10010-015For washing the cells
(±)-DOI hydrochlorideSigma-AldrichD1015-HT2A agonist for cell culture treatment
LY-294002 hydrochlorideSigma-AldrichL9908PI3-K inhibitor for cell culture treatment 
Lisuride maleateTocris Bioscience4052Compound with 5-HT2A agonistic activity for cell culture treatment
Dimethyl sulfoxideSigma-AldrichD4540For dissolving LY-294002 and lisuride maleate

Ссылки

  1. Cavallucci, V., D'Amelio, M. Matter of life and death: the pharmacological approaches targeting apoptosis in brain diseases. Curr. Pharm. Des. 17 (3), 215-229 (2011).
  2. Bull, S. HPA CHaPD 001: Review of Environmental Chemicals and Neurotoxicity. Focus on Neurological Diseases. , (2007).
  3. Ke, N., Wang, X., Xu, X., Abassi, Y. A. The xCELLigence system for real-time and label-free monitoring of cell viability. Methods Mol. Biol. 740, 33-43 (2011).
  4. Limame, R., et al. Comparative analysis of dynamic cell viability, migration and invasion assessments by novel real-time technology and classic endpoint assays. PLoS One. 7 (10), e46536 (2012).
  5. Diemert, S., et al. Impedance measurement for real-time detection of neuronal cell death. J. Neurosci. Methods. 203 (1), 69-77 (2012).
  6. Kustermann, S., et al. A label-free, impedance-based real time assay to identify drug-induced toxicities and differentiate cytostatic from cytotoxic effects. Toxicol In Vitro. 27 (5), 1589-1595 (2013).
  7. Marinova, Z., Walitza, S., Grünblatt, E. 5-HT2A serotonin receptor agonist DOI alleviates cytotoxicity in neuroblastoma cells: role of the ERK pathway. Prog. Neuropsychopharmacol. Biol. Psychiatry. 44, 64-72 (2013).
  8. González-Maeso, J., et al. Hallucinogens recruit specific cortical 5-HT(2A) receptor-mediated signaling pathways to affect behavior. Neuron. 53 (3), 439-452 (2007).
  9. Tsuchioka, M., Takebayashi, M., Hisaoka, K., Maeda, N., Nakata, Y. Serotonin (5-HT) induces glial cell line-derived neurotrophic factor (GDNF) mRNA expression via the transactivation of fibroblast growth factor receptor 2 (FGFR2) in rat C6 glioma cells. J. Neurochem. 106 (1), 244-257 (2008).
  10. Galante, D., et al. Differential toxicity, conformation and morphology of typical initial aggregation states of Aβ1-42 and Aβpy3-42 beta-amyloids. Int. J. Biochem. Cell. Biol. 44 (11), 2085-2093 (2012).
  11. Sheline, C. T., Cai, A. L., Zhu, J., Shi, C. Serum or target deprivation-induced neuronal death causes oxidative neuronal accumulation of Zn2+and loss of NAD. Eur. J. Neurosci. 32, 894-904 (2010).

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на использование текста или рисунков этого JoVE статьи

Запросить разрешение

Смотреть дополнительные статьи

Neuroscience90

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Исследования

Образование

О JoVE

Авторские права © 2025 MyJoVE Corporation. Все права защищены