JoVE Logo
АВТОРЫ
СВЯЖИТЕСЬ С НАМИ

Войдите в систему

Для просмотра этого контента требуется подписка на Jove Войдите в систему или начните бесплатную пробную версию.

В этой статье

  • Резюме
  • Аннотация
  • Введение
  • протокол
  • Результаты
  • Обсуждение
  • Раскрытие информации
  • Благодарности
  • Материалы
  • Ссылки
  • Перепечатки и разрешения

Резюме

gDNA enrichment for NGS sequencing is an easy and powerful tool for the study of constitutional mutations. In this article, we present the procedure to analyse simply the complete sequence of 11 genes involved in DNA damage repair.

Аннотация

Широкое использование следующего поколения последовательности открыло новые возможности для исследования рака и диагностики. NGS принесет огромные суммы новых данных по раку, и особенно генетики рака. Современные знания и будущие открытия сделает его необходимо изучить огромное количество генов, которые могут быть вовлечены в генетической предрасположенности к раку. В связи с этим, мы разработали дизайн Nextera учиться 11 полных генов, участвующих в репарации ДНК повреждения. Этот протокол был разработан для безопасного учиться 11 генов (ATM, BARD1, BRCA1, BRCA2, BRIP1, CHEK2, PALB2, Rad50, RAD51C, RAD80, и TP53) от промоутера в 3'-UTR у 24 пациентов одновременно. Этот протокол, основанный на транспозазы технологии и гДНК обогащения, дает большое преимущество с точки зрения времени для генетической диагностики, благодаря отведать мультиплексирование. Этот протокол можно безопасно использовать с гДНК крови.

Введение

В 2010 году почти 1,5 миллиона человек (в основном женщины) развился рак молочной железы во всем мире. По оценкам, от 5 до 10% из этих случаев были наследственными. Почти 20 лет назад, BRCA1 и BRCA2 были определены как участие в наследственной рака груди и яичников 1. Поскольку около 15 лет назад, BRCA1 и BRCA2 кодирующие области были последовательными, чтобы определить генетическую предрасположенность к груди и рака яичников. Изменения в BRCA1 и BRCA2 обнаруживаются в 10 до 20% отдельных семей 2, предполагая, что анализ этих регионах не является достаточным для эффективного скрининга. В последнее время анализ некодирующих последовательностей (промоутер, интронов, 3-'UTR) от BRCA1 и BRCA2 подчеркнул, что новые мутации / вариации могут быть связаны с более высоким риском рака молочной железы 3-6.

BRCA1 и BRCA2 белки участвуют в гомологичной рекомбинации Ремонт (HHR), который завершается многочисленными партнерами 7. В то время как изменения в генах BRCA1 или BRCA2 вызвать дефекты в репарации ДНК, другие партнеры также могут влиять на риск рака молочной железы. Эта гипотеза представляется, были проверены с BRIP1 8 и PALB2 9 имеют проверенную влияние на рак шейки матки и рака молочной железы, соответственно. Кроме того, два других "умеренного риска" гены предрасположенности рака молочной железы, ATM и CHEK2, также могут быть изучены обычно 10.

Исходя из этих исследований, мы решили разработать протокол для анализа 11 генов (ATM, BARD1, BRCA1, BRCA2, BRIP1, CHEK2, PALB2, Rad50, RAD51C, RAP80, и TP53) у 24 пациентов одновременно, используя очень простой и относительно быстрый протокол на основе транспозазы технологии, с обогащением и секвенирования по средней пропускной устройства. Спасибоэтой методике, то последовательность полные гены от начала промотора до конца 3'-UTR, для RAP80, для которых интронного область 2500 п.н. не была покрыта (CHR5: 176,381,588-176,390,180) исключением. Это представляет в общей сложности около 1000300 б.п. учился с 2734 зондов. Обычно, BRCA1 и BRCA2 экзонных последовательности анализируются Sanger секвенирования, которая нуждается в 1,5 месяцев меньше чем за 20 больных. В соответствии с настоящим протокола (рисунок 1), в то же время, могут быть проанализированы 11 полные гены более 75 пациентов.

протокол

1 Оценка гДНК (геномная ДНК) Выход

  1. Количественно недавно извлечены гДНК перед приготовлением библиотеке. Используйте метод флуорометрического оценки доходности количественно нетронутыми гДНК (избежать с помощью спектрофотометра для оценки доходности гДНК). Измерьте (260/280 нм) соотношение и убедитесь, что он находится между 1,8 и 2 Примечание: 50 нг гДНК необходимы для эксперимента.

2 гДНК Обогащение: День 1, Утро

  1. Перед началом
    1. Из комплекта по обогащению ДНК (см таблицу материалов / оборудования), оттепель буфера ДНК (TD) и фермент ДНК (TDE1) решений на льду. По крайней мере, за 30 минут до использования, принести очистки магнитных шариков и остановить целевую (ST) буфер до комнатной температуры (RT). Добавить 20 мкл образца гДНК на 2-2,5 нг / мкл непосредственно в 96-луночный планшет, 1 также на образец. ВАЖНО: Используйте положительный контроль для проверки протокол (образец с известным изменением последовательности).
  2. Tagmentation
    1. МIX все реагенты тщательно, перевернув 5x, и спин вниз кратко. При комнатной температуре добавляют 25 мкл TD буфера в каждую лунку, содержащую 50 нг (20 мкл) гДНК, а затем 5 мкл буфера TDE1. Установите пипеткой 50 мкл, мягко пипетки весь объем вверх и вниз 10 раз.
    2. Закройте планшет клейкой пленкой и центрифуги в течение 1 мин при 280 х г при 20 ° С. Затем поместите пластину в амплификаторе (крышку нагревали при 100 ° C) и выполните следующую программу: 55 ° C в течение 5 мин и 10 ° C в течение неограниченного времени.
    3. Во время этой инкубации подготовить лист с образцом с программным обеспечением Эксперимент Менеджер определить индексы, которые будут использоваться.
  3. Tagmentation Очистка
    ПРИМЕЧАНИЕ: Этот шаг имеет решающее значение. Будьте очень осторожны.
    1. Проверьте отсутствие осадка в очистных магнитных шариков и ST буфера. Если осадки присутствуют, разогреть решения в руках. Оттепель буфер ресуспендирование (RSB) на льду.
    2. В РТ, вихревое решение ST и добавить15 мкл в каждую лунку, содержащую образец. Установите пипеткой 65 мкл, мягко пипетки весь объем вверх и вниз 10 раз. Инкубировать в течение 5 минут при комнатной температуре. Закройте планшет и центрифуги в течение 1 мин при 280 х г при 20 ° С.
    3. Добавить 52 мкл предварительно смешанных очистки магнитных шариков в каждой лунке. Установите пипеткой 117 мкл, мягко пипетки весь объем вверх и вниз 10 раз. Инкубировать в течение 10 минут при комнатной температуре. Закройте планшет и центрифуги в течение 1 мин при 280 х г при 20 ° С.
    4. Удалите клейкую пленку. Поместите 96-луночного планшета на магнитной подставке в течение 2 мин при комнатной температуре. Убедитесь, что супернатант выглядит вполне ясно.
    5. Подготовьте свежий 80% раствором этанола (в течение 24 образцов, добавляют 2 мл дистиллированной воды до 8 мл этанола). Снимите и выбросьте супернатантную, стараясь не потревожить бусы.
    6. Удерживая пластину на магнитной подставке, добавить 200 мкл свежеприготовленного 80% этанола в каждую лунку, не нарушая бусы и инкубировать пластины не менее 30 секпри комнатной температуре. Удалите супернатант и повторите этой промывки во второй раз. Убедитесь, что этанол был удален. Дайте высохнуть при комнатной температуре в течение 10 мин или до полного испарения этанола.
    7. Снять пластину из магнитного стенда и добавить 22,5 мкл RSB буфера. Установите пипетку до 22,5 мкл, мягко пипетки весь объем вверх и вниз 10 раз. Поместите 96-луночного планшета на магнитной подставке и инкубируют в течение 2 мин. Убедитесь, что супернатант выглядит вполне ясно. Аккуратно перенести 20 мкл супернатанта в новом 96-луночного планшета.
      Примечание: При желании, определить размер tagmented образцов с помощью анализатора фрагмента. Вместо шагов, указанных выше, использовать электрофореза гель акриламида с высоким разрешением. Фрагменты должны быть между 150 б.п. и 1000 б.п..
  4. 1-й ПЦР-амплификация
    1. Оттепель ПЦР мастер смесь, содержащая полимеразы (LP-PMM), индекс 1 грунтовку, и индекс 2 праймеров решения на льду. Подходим комбинированный OF индексы с образца листа Эксперимент Manager. Для мультиплексирования, подготовить различные i7 от индекса 1 (i7, N7xx) для каждого образца.
    2. В каждую лунку, добавить 20 мкл LP-РММ, 5 мкл индекс 1 и 5 мкл индекса 2 Установите пипеткой 50 мкл, мягко пипетки весь объем вверх и вниз 10 раз. Закройте планшет клейкой microseal фильма. Центрифуга в течение 1 мин при 280 х г при 20 ° С.
    3. Место пластины в амплификаторе (крышку нагревают при 100 ° С) и программу запуска 1 (Таблица 1).
      ПРИМЕЧАНИЕ: процедура может быть остановлена ​​в этот момент и реакции хранили в течение ночи в амплификаторе или в течение 2 дней между 2 и 8 ° C.

3 гДНК Обогащение: День 1, День

  1. Перед началом
    1. Оттепель олиго (ОГО), захват цели буферные 1 (NCT1), и RSB решения на льду. По крайней мере, за 30 минут до использования, принести очистки магнитных шариков в РТ.
  2. ПЦР Очистка
    1. Центрифуга пластину с шагом 2,4, в течение 1 мин при 280 х г при 20 ° С.
    2. При комнатной температуре добавляют 45 мкл смешанного очистки магнитных шариков в каждой лунке. Установите пипетку до 95 мкл, мягко пипетки весь объем вверх и вниз 10 раз. Инкубировать в течение 10 минут при комнатной температуре. Поместите 96-луночного планшета на магнитной подставке в течение 2 минут при комнатной температуре.
    3. Убедитесь, что супернатант выглядит вполне ясно. Подготовьте свежий 80% раствором этанола (в течение 24 образцов, добавляют 2 мл дистиллированной воды до 8 мл этанола). Удалите супернатант заботящийся, чтобы не нарушить гранул.
    4. Удерживая пластину на магнитной подставке, добавить 200 мкл свежеприготовленного 80% этанола в каждую лунку, не нарушая бусы и инкубировать пластины в течение 30 сек при комнатной температуре. Удалите супернатант и повторите этой промывки во второй раз. Убедитесь, что этанол был удален. Дайте высохнуть при комнатной температуре в течение 15 мин.
    5. Снять пластину из магнитного стенда и добавить 40 мкл RSB буфера. Установите трубуTTE 40 мкл, мягко пипетки весь объем вверх и вниз 10 раз.
    6. Поместите 96-луночного планшета на магнитной подставке и инкубируют в течение 2 мин. Верхний слой должен появиться совершенно ясно. Аккуратно перенести 38 мкл супернатанта в новый 96-луночный планшет.
    7. Определить доходность каждого образца на более флуориметрическим методом. Это первая часть протокола будут проверяться, если начисленные урожайность от 30 до 50 нг / мкл.
  3. 1-й Гибридизация
    1. Бассейн до 12 выборок в бассейне на этой стадии путем смешивания 500 нг каждого образца в новом 96-луночного планшета. Убедитесь, что окончательный объем каждого бассейна не превышает 40 мкл.
      ПРИМЕЧАНИЕ: При необходимости, уменьшить объем бассейнов с помощью вакуумного концентратора устройство при комнатной температуре (Внимание: концентрация ДНК не могут быть изменены при нагревании, даже при 30 ° С, как отопление приводит к деградации ДНК). Регулировка конечного объема 40 мкл путем добавления раствора RSB.
    2. Тщательно перемешайтеРешение NCT1. Для каждой лунке, содержащей 40 мкл объединенных образцов ДНК, добавить 50 мкл NCT1, и 10 мкл CSO. Установите пипеткой 100 мкл, мягко пипетки весь объем вверх и вниз 10 раз. Печать тарелку и центрифуги в течение 1 мин при 280 х г при 20 ° С.
    3. Место пластины в амплификаторе (крышку нагревают при 100 ° С) и программу запуска 2 (Таблица 1).

4 гДНК Обогащение: День 2, Утро

  1. Перед началом
    1. Из комплекта по обогащению ДНК (см таблицу материалов / оборудования) оттепели 2 N NaOH (HP3), цель элюирование буфер 1 (ET1), задачи буфера для элюции 1 ET2, стрептавидиновой магнитных шариков (SMB), промывочный раствор 1 (WS1), мытье Решение 2 (WS2), моющий раствор 3 (WS3), решения ОГО, и NCT1 в РТ.
  2. 1-й Гибридизация Wash
    1. Извлеките 96-луночного планшета с амплификатор и центрифуги 1 мин при 280 х г при 20 ° С. Удалите клейкую крышку очень сторожныLLY.
    2. Перенести 100 мкл реакционной смеси от пластины к новому MIDI 96-луночного планшета и добавляют 250 мкл раствора хорошо перемешивали SMB. Установите пипеткой 350 мкл, мягко пипетки весь объем вверх и вниз 10 раз. Уплотнение пластину и инкубируют при комнатной температуре в течение 30 мин.
    3. Центрифуга в течение 1 мин при 280 х г при 20 ° С, снимите клейкую уплотнения и поместите пластину на магнитной подставке в течение 2 мин. Убедитесь, что супернатант выглядит вполне ясно. Удалите супернатант и удалить пластину из магнитного стенде.
    4. Добавить 200 мкл хорошо смешанный раствор WS1 в хорошо содержащих бисером. Установите пипеткой 200 мкл и осторожно пипеткой весь объем вверх и вниз 15х избегая образования пузырьков / пены.
    5. Место пластины на магнитной подставке в течение 2 мин. Убедитесь, что супернатант выглядит вполне ясно. Удалите супернатант и удалить пластину из магнитного стенде.
    6. Добавить 200 мкл хорошо смешанный раствор WS2 в скважинах Контатка бусы. Установите пипеткой 200 мкл и осторожно пипеткой весь объем вверх и вниз 15x избежать образования пузырей / пены.
    7. Место пластины на магнитной подставке в течение 2 мин. Убедитесь, что супернатант выглядит вполне ясно. Удалите супернатант и удалить пластину из магнитного стенде.
    8. Добавить 200 мкл хорошо смешанный раствор WS2 в лунки, содержащие шарики. Установите пипеткой 200 мкл и осторожно пипеткой весь объем вверх и вниз 15x.
    9. Передача весь объем в новом 96-луночного планшета. Печать тарелку и поместите пластину в амплификаторе (крышка нагревали при 100 ° C). Запустите амплификаторе при 42 ° С в течение 30 мин.
    10. Imediately разместить тарелку на магнитной подставке в течение 2 мин. Убедитесь, что супернатант выглядит вполне ясно. Снять уплотнение и сразу отбросить все супернатант. Тогда, удалить пластину из магнитного стенде.
    11. Добавить 200 мкл WS2 в лунки, содержащие шарики. Установите пипетку до 200мкл и осторожно пипеткой весь объем вверх и вниз 15x избежать образования пузырей / пены. Печать тарелку и поместите пластину в амплификаторе (крышка нагревали при 100 ° C). Запустите амплификаторе при 42 ° С в течение 30 мин.
    12. Сразу же место пластину на магнитной подставке в течение 2 мин. Убедитесь, что супернатант выглядит вполне ясно. Снять уплотнение и сразу отбросить все супернатант. Тогда, удалить пластину из магнитного стенде.
    13. Добавить 200 мкл хорошо смешанный раствор WS3 в лунки, содержащие шарики. Установите пипеткой 200 мкл и осторожно пипеткой весь объем вверх и вниз 15x.
    14. Место пластины на магнитной подставке в течение 2 мин. Убедитесь, что супернатант выглядит вполне ясно. Откажитесь все супернатант и удалить пластину из магнитного стенде.
    15. Повторите WS3 мыть второй раз.
    16. После удаления супернатанта, запечатать пластины и кратко центрифуги снести остаточный супернатант. Поместите пластину намагнитный стенд в течение 2 мин. Откажитесь от остаточного супернатант.
    17. В 0,2 мл пробирку, перемешивают 28,5 мкл ЕТ1 и 1,5 мкл растворов HP3. Эта смесь в течение 1 бассейн, если больше бассейны, получают, умножают эти объемы на количество пулов, приготовленных.
    18. Снять пластину из магнитного стенде. Добавить 23 мкл полученной выше смеси. Установите пипеткой 23 мкл и осторожно пипеткой весь объем вверх и вниз 15x. Печать тарелку и оставьте на 5 минут при комнатной температуре. Центрифуга в течение 1 мин при 280 х г при 20 ° С.
    19. Место пластины на магнитной подставке в течение 2 мин. Убедитесь, что супернатант выглядит вполне ясно. Удалите клейкую пленку и передачи 21 мкл супернатанта к новому 96-луночного планшета.
    20. Добавить 4 мкл раствора ET2 в каждую лунку. Установите пипеткой 25 мкл и осторожно пипеткой весь объем вверх и вниз 10 раз и заклеить плашки.
      ПРИМЕЧАНИЕ: процедура может быть остановлена ​​в этот момент и реакции храниться до 7 дней при температуре от -15 ° С. Если пластина заморожены, полностью оттаять перед началом 2-й гибридизации.
  3. 2-й Гибридизация
    1. Центрифуга пластину в течение 1 мин при 280 х г при 20 ° С. Удалите клейкую пленку и добавить 50 мкл NCT1 10 мкл CSO и 15 мкл ПЦР воду, содержащую до 25 мкл библиотеки. Установите пипеткой 100 мкл и осторожно пипеткой весь объем вверх и вниз 10 раз.
    2. Печать тарелку и центрифуги в течение 1 мин при 280 х г при 20 ° С.
    3. Место пластины в амплификаторе (крышку нагревают при 100 ° С) и программу запуска 2 (Таблица 1).

5 гДНК Обогащение: День 2, Во второй половине дня

  1. Перед началом
    1. Оттепель ET1, ET2, SMB, WS1, WS2, WS3 и HP3 решения при комнатной температуре гибридизации стирки. Из комплекта по обогащению ДНК, оттепель ПЦР мастер микс, содержащий полимеразы (TC-PMM), грунтовки коктейль ПЦР (PPC), и RSB решения на льду для ПЦР-амплификации.
  2. 2-й Гибридизация Wash
    1. Следуйте точно такой же протокол, что и для 4,2 - 1 м гибридизации стирки.
  3. ПЦР-амплификация
    1. В новом 96-луночного планшета, смешивают 20 мкл элюции с шагом 5,2, 25 мкл TC-РММ, и 5 мкл КПП. Установите пипеткой 50 мкл и осторожно пипеткой весь объем вверх и вниз 10 раз. Печать тарелку и центрифуги в течение 1 мин при 280 х г при 20 ° С.
    2. Место пластины в амплификаторе (крышку нагревают при 100 ° С) и программу запуска 3 (Таблица 1).

6 гДНК Обогащение: День 3

  1. Перед началом
    1. Оттепель RSB решение на льду. По крайней мере, за 30 минут до использования, принести очистки магнитных шариков в РТ.
  2. ПЦР Очистка
    1. Центрифуга тарелку с шага 5.3 в течение 1 мин при 280 х г при 20 ° С, и снимите клейкую крышку.
    2. В РТ, добавить 90 мкл рreviously смешивается очистки магнитных шариков в каждой лунке. Установите пипетку до 140 мкл, мягко пипетки весь объем вверх и вниз 10 раз. Инкубировать в течение 15 минут при комнатной температуре. Поместите 96-луночного планшета на магнитной стоять в течение 5 минут при комнатной температуре. Убедитесь, что супернатант выглядит вполне ясно.
    3. Подготовьте свежий 80% раствором этанола (в течение 2 образцов, добавьте 200 мкл дистиллированной водой до 800 мкл этанола). Удалите супернатант заботящийся, чтобы не нарушить гранул.
    4. Удерживая пластину на магнитной подставке, добавить 200 мкл свежеприготовленного 80% этанола в каждую лунку, не нарушая бусы и инкубировать пластины в течение 30 сек при комнатной температуре. Удалите супернатант и повторите этой промывки еще раз. Убедитесь, что этанол был удален. Дайте высохнуть при комнатной температуре в течение 15 мин или до полного испарения этанола в то время как пластина на магнитной подставке.
    5. Снять пластину из магнитного стенда и добавить 30 мкл RSB буфера. Установите пипеткой 30 мкл, и осторожно пипеткой тон весь объем вверх и вниз 10 раз. Инкубируйте в течение 2 мин при комнатной температуре.
    6. Место пластины 96-а на магнитной подставке и инкубировать 5 мин или до супернатант выглядит вполне ясно. Аккуратно перенести 28 мкл супернатанта в новый 96-луночный планшет (пластинчатого типа: TCY).
      ПРИМЕЧАНИЕ: Эта процедура может быть остановлена ​​на данном этапе и реакции хранить при -15 ° С в течение 7 дней.
  3. Библиотека Валидация и Количественное
    1. Определения качества библиотеки с помощью анализатора фрагмента. Гель-электрофорез акриламида высокого разрешения может быть использован для замены описанные выше шаги, но не рекомендуется. Фрагменты должны быть между 150 б.п. и 1000 б.п..
      ПРИМЕЧАНИЕ: Рекомендуется: Количественная библиотеку КПЦР для получения наилучшего числа кластеров во секвенирования.
    2. В качестве эталона, использовать проверенную библиотеку (2 Нм). Если первая библиотека готовится, использовать фаг PhiX ДНК (10 нМ), предусмотренное калибровки sequencчисле устройство.
    3. Готовят серийные разведения положительного контроля, чтобы получить 7 баллов по 20, 16, 8, 6, 4, 2 и 1 вечера в EBT (EB элюирование буфера + 0,1% Твин-20). Развести библиотеку интерес в 1/1000 и 1/2000. Каждая точка должна быть проанализирована в трех экземплярах.
    4. Подготовьте следующую смесь (умножить объемы по количеству скважин используется): для 1 а, добавить 10 мкл SYBR Green содержащие КПЦР основной смеси (2x), 0,2 мкл прямого праймера (10 мкм, AATGATACGGCGACCACCGAGAT), 0,2 мкл обратного праймера (10 мкМ, CAAGCAGAAGACGGCATACGA), и 7,6 мкл ПЦР сорта воды.
    5. После смешивания, сместить в 96-луночный планшет, 18 мкл смеси в каждую лунку и 2 мкл положительного контроля и библиотеки разведений. Печать тарелку и центрифуги в течение 1 мин при 280 х г при 20 ° С. Затем поместите пластину в количественном ПЦР термоциклер и выполнение программы 4 (Таблица 1).
    6. Проанализируйте результаты как обычной абсолютной количественной получать суммы дохода по каждой лibrary. Преимущество количественной ПЦР является то, что только количественно ДНК, которые будут взаимодействовать с проточной ячейки.
      Примечание: Не следует использовать флуориметрического количественное определение ДНК в связи с наличием миметиков молекул ДНК в одного из реагентов. Этот метод количественного бы переоценить библиотеки доходность и, следовательно, недооценивают счет кластеризации.
  4. Секвенирование Запуск
    1. Развести каждый библиотеки в 4 нМ в конечном объеме 30 мкл буфера для элюции (EB), и объединить все библиотеки и хорошо перемешать.
    2. Подготовка свежий раствор 0,2 N NaOH в EB буфера и перемешивают 10 мкл этого раствора NaOH с 10 мкл объединенных библиотек. Все хорошо перемешать и инкубировать точно 5 мин при комнатной температуре.
    3. После 5 мин, сразу добавить 980 мкл гибридизации буфера (от секвенирования картриджа) и хорошо перемешать. Затем смешать 400 мкл этой смеси с 600 мкл буфера гибридизации. Все хорошо перемешать и перенести 600 мкл в картридже 300 цикла (2 х 150) для инъекции 8вечера. Запуск последовательности.

Анализ 7. данных

  1. После того, как устройство обработки данных, передачи .bam и .vcf файлы на новый компьютер.
    ПРИМЕЧАНИЕ: фрагментация транспозазу включает следы. Следовательно, программа автоматически обрезает эти данные.
  2. Соберите генетические вариации, полученные при анализе устройства.
  3. Анализ экспортируемые файлы (.bam, .vcf) с другим программным обеспечением (Аламут), следуя инструкциям производителя. Тогда, сравнить генетические вариации, полученные с обоих анализов. Только вариации выявляется дважды считаются присутствует.

Таблица 1 Условия ПЦР

Программа Температура Время Кол. повторов
1 72 ° C 3 мин 1
98 ° С 30 сек 1
98 ° С 10 сек 10
60 ° С 30 сек
72 ° C 30 сек
72 ° C 5 мин 1
10 ° С неограниченное
2 95 ° C 10 мин 1
93 ° C 1 мин 1
91 ° C 1 мин 1
89 ° C 1 мин 1
87 ° C 1 мин 1
85 ° С 1 мин 1
83 ° С 1 мин 1
81 ° C 1 мин 1
79 ° С 1 мин 1
77 ° C 1 мин 1
75 ° C 1 мин 1
71 ° C 1 мин 1
69 ° С 1 мин 1
67 ° С 1 мин 1
65 ° С 1 мин 1
63 ° C 1 мин 1
61 ° С 1 мин 1
59 ° С 1 мин 1
58 ° С 1 мин 16-18 ч
3 98 ° С 30 сек 1
98 ° С 10 сек 10
60 ° С 30 сек
72 ° C 30 сек
72 ° C 5 мин 1
10 ° С неограниченное
4 95 ° C 10 мин 1
95 ° C 15 сек 40
60 ° С 1 мин

Результаты

Образец КК Результаты

Способность этого метода для определения последовательности генов-мишеней на основе качества гДНК (фиг.2А) и качества шаге tagmentation. Если tagmentation не является достаточным (фиг.2В, верхняя панель), секвенирование не будет удовлетворител?...

Обсуждение

Широкое использование устройств и технологий NGS предоставил новые возможности в изучении рака и генетических нарушений. В дополнение к целой секвенирования генома или РНК последовательности, анализ большого количества выбранных гДНК последовательностей в многочисленных пациентов ?...

Раскрытие информации

The authors have no conflicts of interest to declare.

Благодарности

We thank the Ligue contre le Cancer de Côte d’Or and the Centre Georges-François Leclerc for their financial support. We thank Philip Bastable for the editing of the manuscript.

Материалы

NameCompanyCatalog NumberComments
MiSeqIlluminaSY-410-1001Sequencing/medium throughput device
Nextera Enrichment kitIlluminaFC-123-1208Transposase based technology
300 cycle cartridgeIllumina15033624
AMPure beadsBeckman CoulterA63881Magnetic purification beads
Magnetic standAlpaquaA32782
96-well PlatesLife Technologies4306737
MIDI 96-well platesBioradAB0859
Microseal ABioradMSA-5001This seal is necessary only for PCR amplification. Other standard seals can be used throughout the experiment
MiSeqIlluminaProvided with the sequencing device
Experiment Manager software
Internet adress: http://designstudio.illumina.com/NexteraRc/project/new
Manufacturer website tool

Ссылки

  1. Cornelisse, C. J., Cornelis, R. S., Devilee, P. Genes responsible for familial breast cancer. Pathol. Res. Pract. 192 (7), 684-693 (1996).
  2. Culver, J., Lowstuter, K., Bowling, L. Assessing breast cancer risk and BRCA1/2 carrier probability. Breast Dis. 27, 5-20 (2007).
  3. Cox, D. G., et al. Common variants of the BRCA1 wild-type allele modify the risk of breast cancer in BRCA1 mutation carriers. Hum. Mol. Genet. 20 (23), 4732-4747 (2011).
  4. Maia, A. T., et al. Effects of BRCA2 cis-regulation in normal breast and cancer risk amongst BRCA2 mutation carriers. Breast Cancer Res. 14 (2), 63 (2012).
  5. Anczuków, O., et al. BRCA2 deep intronic mutation causing activation of a cryptic exon: opening toward a new preventive therapeutic strategy. Clin. Cancer Res. 18 (18), 4903-4909 (2012).
  6. Brewster, B. L., et al. Identification of fifteen novel germline variants in the BRCA1 3'UTR reveals a variant in a breast cancer case that introduces a functional miR-103 target site. Hum. Mutat. 33 (12), 1665-1675 (2012).
  7. Roy, R., Chun, J., Powell, S. N. BRCA1 and BRCA2: different roles in a common pathway of genome protection. Nat Rev Cancer. 12 (1), 68-78 (2012).
  8. Ma, X. D., et al. First evidence for the contribution of the genetic variations of BRCA1-interacting protein 1 (BRIP1) to the genetic susceptibility of cervical cancer. Gene. 524 (2), 208-213 (2013).
  9. Haanpää, M., Pylkäs, K., Moilanen, J. S., Winqvist, R. Evaluation of the need for routine clinical testing of PALB2 c.1592delT mutation in BRCA negative Northern Finnish breast cancer families. BMC Med. Genet. 14, 82 (2013).
  10. Southey, M. C., Teo, Z. L., Winship, I. PALB2 and breast cancer: ready for clinical translation. Appl. Clin. Genet. 6, 43-52 (2013).
  11. Ulahannan, D., Kovac, M. B., Mulholland, P. J., Cazier, J. B., Tomlinson, I. Technical and implementation issues in using next-generation sequencing of cancers in clinical practice. Br. J. Cancer. 109, 827-835 (2013).
  12. Hernan, I., Borràs, E., de Sousa Dias, M., Gamundi, M. J., Mañé, B., Llort, G., Agúndez, J. A., Blanca, M., Carballo, M. Detection of genomic variations in BRCA1 and BRCA2 genes by long-range PCR and next-generation sequencing. J. Mol. Diagn. 14, 286-293 (2012).
  13. Knierim, E., Lucke, B., Schwarz, J. M., Schuelke, M., Seelow, D. Systematic comparison of three methods for fragmentation of long-range PCR products for next generation sequencing. Plos One. 6, e28240 (2011).
  14. de Sousa Dias, M., Hernan, I., Pascual, B., Borràs, E., Mañé, B., Gamundi, M. J., Carballo, M. Detection of novel mutations that cause autosomal dominant retinitis pigmentosa in candidate genes by long-range PCR amplification and next-generation sequencing. Mol. Vis. 19, 654-664 (2013).
  15. . The Breast Cancer Linkage Consortium. Cancer Risks in BRCA2 Mutation Carriers. J. Natl. Cancer Inst. 91, 1310-1316 (1999).
  16. Levy-Lahad, E., Friedman, E. Cancer risks among BRCA1 and BRCA2 mutation carriers. Br. J. Cancer. 96 (1), 11-15 (2007).
  17. Risch, H. A., et al. Population BRCA1 and BRCA2 mutation frequencies and cancer penetrances: a kin-cohort study in Ontario, Canada. J. Natl. Cancer Inst. 98 (23), 1694-1706 (2006).
  18. Slater, E. P., et al. PALB2 mutations in European familial pancreatic cancer families. Clin. Genet. 78, 490-494 (2010).
  19. Brennan, G. T., Relias, V., Saif, M. W. BRCA and pancreatic cancer. J.O.P. 14 (4), 325-328 (2013).

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на использование текста или рисунков этого JoVE статьи

Запросить разрешение

Смотреть дополнительные статьи

92NexteraNGSBRCA1BRCA2

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Конфиденциальность

Условия эксплуатации

Политика

СВЯЖИТЕСЬ С НАМИ

РЕКОМЕНДОВАТЬ БИБЛИОТЕКЕ

НОВОСТИ JoVE

Исследования

Образование

АВТОРЫ

Библиотекарь

О JoVE

Авторские права © 2025 MyJoVE Corporation. Все права защищены