JoVE Logo

Войдите в систему

Для просмотра этого контента требуется подписка на Jove Войдите в систему или начните бесплатную пробную версию.

В этой статье

  • Резюме
  • Аннотация
  • Введение
  • протокол
  • Результаты
  • Обсуждение
  • Раскрытие информации
  • Благодарности
  • Материалы
  • Ссылки
  • Перепечатки и разрешения

Резюме

We present the technique to measure with high precision zinc isotope ratios in mouse organs.

Аннотация

Мы представляем процедуру измерения с высокой точностью соотношения изотопов цинка в органах мыши. Цинк состоит из 5 стабильных изотопов (64 Zn, Zn, 66 67, 68 Zn Zn и 70 Zn), которые, естественно, фракционированных между органами мыши. Покажем сначала, как распустить различные органы для того, чтобы бесплатно атомы Zn; Этот шаг реализуется с помощью смеси HNO 3 и H 2 O 2. Затем очистить атомов цинка от всех других элементов, в частности, из изобарических помех (например, Ni), с помощью анионообменной хроматографии в разбавленных HBr / HNO 3 среде. Эти первые два шага выполняются в чистом лаборатории с использованием химических веществ с высокой степенью чистоты. Наконец, изотопные измеряются с помощью мульти-коллектор с индуктивно-связанной плазмы масс-спектрометр, в низком разрешении. Образцы вводят с помощью камеры распыления и изотопного фракционирования, вызванную масс-спектрометра является correcTed, сравнивая соотношение количества образцов в соотношении стандарта (стандартной методике вилка). Это полный Типичная процедура производит соотношение изотопов с 50 млн (2 SD) воспроизводимости.

Введение

Измерение высокой точности (лучше, чем 100 частей на миллион / атомная единица массы) цинка стабильный изотоп состав было возможно только в течение примерно 15 лет благодаря развитию мульти-коллекторных плазменный источник масс-спектрометров и с тех пор в основном применяются в Земле и планетарных наук. Приложения к области медицины являются новыми и имеют большой потенциал в качестве биомаркеров для болезней, которые изменяют метаболизм цинка (например, болезни Альцгеймера). Эта статья сообщает метод измерения с высокой точностью природных стабильных изотопов цинка в различных органах мыши. То же самое применимо к образцам человека. Суть метода состоит в растворении органов, химической очистки цинка из остальных атомов, а затем в анализе соотношение изотопов на масс-спектрометре.

Качество Zn изотопных измерений зависит от качества химической очистки (чистоты Zn, низкое пустым оценочногоared к количеству Zn, присутствующего в образце, с высоким химический выход из процедуры) и на контроле инструментальной смещения. Высокой чистоты конечного Zn фракции необходимо удалить обе изобарических помех и неизобарических помех, которые создают эффект матрицы. Изобарические нуклиды создать прямые помехи (например, 64 Ni). Неизобарических помехи генерируют так называемую "матрицу" эффект и изменить аналитическую точность измерений при изменении состояния ионизации по сравнению с чистого цинка стандарта, к которому образцы по сравнению с 1. Низкий пустым (<10 нг) указывает, что нет загрязнение образцов внешним Zn, которые смещения измеренного изотопного состава. Как Zn изотопы могут быть фракционированию во ионообменной хроматографии 2, совокупность всех атомов Zn гарантирует, что изотопный фракционирования не происходит, что означает, что химическая процедура должна иметь полный выход, Наконец, коррекция инструментальной изотопного фракционирования при измерении масс-спектрометрии делается с помощью метода "стандарт" брекетинга.

Таким образом, основные трудности для получения точных измерений контролируют внешнего загрязнения (т.е. низкой пустым), производя полный выход химическую очистку, которая очищена от каких-либо других атомов или молекул, и коррекции инструментальный изотопного фракционирования на массового спектрометра. В этой статье мы опишем наш аналитический протокол, чтобы отделить Zn из органов мыши, а также измерений масс-спектрометрические.

Добыча производится с использованием малое количество разбавленных кислот (HBr / HNO 3 СМИ) на микро-колонки (0,5 мкл и 0,1 мкл) анионообменной смолы. Он имеет полное выход и измерения имеют внешний воспроизводимость лучше, чем 50 частей на миллион по соотношению 66 Zn / Zn 64. Еще одно преимущество метOD, что это очень быстро. Способ, таким образом, очень хорошо адаптированы к медицинских наук, в которой нужно анализировать большое количество образцов по сравнению с геонауках, где были разработаны эти аналитические методы.

протокол

ПРИМЕЧАНИЕ: Процедуры с участием животных были одобрены уходу и использованию комитета Институциональные животных (IACUC) в Университете Париж Дидро в.

1. Подготовка материалов

  1. Суб-кипят перегонять 1 л кислот (HNO 3, HBr) для того, чтобы очистить их от примесей.
  2. Очистите стаканы и наконечник адаптер в горячей (~ 100 ° С) сосредоточены ванну HNO 3 кислоты, по крайней мере два дня.
  3. Вымойте наконечники в холодной 3 н HNO 3 бане в течение нескольких дней и промыть отдельно три раза деионизированной водой.

2. Подготовка образцов

  1. Обезболить мышей путем внутрибрюшинной инъекции кетамина и ксилазина. Оценка анестезии по методу палец пинча.
  2. Собирают кровь сердечной пункцией в присутствии гепарина в 1,5 мл пробирки.
  3. Отделите плазму от клеток крови центрифугированием (10 мин, 1500 мкг) и передать плазму полипропилена Cryogenic флаконы, используя подсказки полипропиленовые.
  4. Удалите остатки крови из органов за счет сокращения печеночных вен и инъекционных DPBS через сердце. Оценка гибель мышей путем смещени шейных позвонков.
  5. Урожай органы стерильными инструментами из нержавеющей стали, освободить их от окружающих жир, если таковые имеются, и оснастки заморозить их в полипропиленовые флаконы криогенных.

3. Химическая очистка

  1. Во-первых, распустить образцов в смеси ~ 1 мл концентрированной (30%) H 2 O 2 и ~ 1 мл концентрированной (~ 15 м) HNO 3. У всех этих шагов внутри вытяжного шкафа.
    1. Поместите весь орган интерес в 15-миллилитровую тефлоновую мензурку. Затем добавьте H 2 O 2 / HNO 3 в стакан 5. Хранить стакан открыт в течение нескольких минут, чтобы избежать брызг за счет реакции окисления органического вещества и выделением СО 2.
    2. Наконец, поставить стакан на горячей плите при Абоут 100 ° С в течение нескольких часов или до решения совершенно ясно.
  2. Открыть стакан и высушить раствор на горячей плите при температуре около 100 ° С.
  3. После того, как образец сухой, добавьте 1 мл 1,5 N HBr к образцам; закрыть стакан, и пусть он распустить на горячей плите при 100 ° С в течение нескольких часов.
  4. Между тем приготовить 500 мкл колонки.
    1. Добавить 500 мкл сетки смолы AG1X8 200-400 на колонку и положить его на полку колонки с мусорном стакане под ним. Промыть смолы чередованием: 5 мл 18,2 МОм ⋅ см воды, 5 мл 0,5 н HNO 3, 5 мл воды, 5 мл 0,5 н HNO 3, а затем 5 мл воды. Используйте кондиционер смолы с 5 мл 1,5 N HBr.
  5. Удалить стаканы из горячей плите и поместить их в ультразвуковой ванне в течение 30 мин, а затем позволить стаканы остыть до комнатной температуры.
  6. После того, как стакан охлаждают и смолу промывают, открыть мензурку. Положите адаптер наконечника Тон шприц, добавьте пипетки; пипетки на 1 мл образца и загрузить его на смоле (очень медленно, чтобы не перемешивать смолу).
  7. После того как все жидкость проходит через колонку, добавляют 5 мл 1,5 N HBr.
  8. После того, как 5 мл 1,5 N HBr через колонку, заменить мусора стакан с чистой 15 мл химический стакан.
  9. Добавляют 5 мл 0,5 н HNO 3 2,5 мл за один раз. На этом этапе Zn элюируют из смолы.
  10. После того, как 5 мл HNO 3 проходит через колонку, снимите стакан и поместить его на горячей плите при 100 ° С до тех пор, пока сушат.
  11. Удалить столбец из держателя колонны; мусор смолы (использовать новую смолу для каждого образца).
  12. После того, как образец высохнет, повторите протокол с таким же объемом кислот на меньшем колонке (100 мкл), а затем поместить его на горячей плите, пока не высушили. Образец готов к масс-спектрометрии.

4. Масс-спектрометрия-Измерение

  1. Анализ изотопного компо Znложение на нескольких коллектор-индуктивно-связанной плазмы масс-спектрометра (МС-ICP-MS).
    1. Используйте параметры машины приведены в таблице 1.
  2. Поместите чашки Фарадея, чтобы собрать в массе (m / z) 62 Ni, Cu 63, 64 Zn, Cu 65, 66, 67 Zn Zn и 68 Zn.
  3. Приготовьте раствор, содержащий 500 частей на миллиард Zn в 0,1 М HNO 3 для изотопного анализа.
  4. Проанализировать 500 частей на миллиард раствор Zn с помощью распылительной камеры в сочетании с 100 мкл / мин тефлоновой распылитель. Для каждого образца, измерения 30 сканирований (1 блок из 30 циклов), в которых время интегрирования каждой развертки 8,389 сек.
  5. Исправьте фон путем вычитания на пик интенсивности нулевые от контрольного раствора (0,1 М HNO 3 раствора, используемого для повторного растворения образцов).
  6. Контроль и правильно можно 64 Ni изобарической вмешательство путем измерения интенсивности пика 62 Ni.Предположим, что / 62 Соотношение 64 Ni Ni естественно (0,2548), правильно это значение из инструментальной предвзятости массовой, а затем удалить 64 Ni от массы 64, как:
    64 Zn реального = 64 Zn измеряется - 64 Ni = 64 Zn измеряется - (64 Ni / 62 Ni), естественно х 62 Ni измерить.
  7. Откорректируйте инструментальную массовое смещение в скобки каждого из образцов с 500 частей на миллиард стандартного раствора стандарта СМК Лион Zn (или другого доступного стандарта, например IRMM-3702). Выполнение стандартного брэкетинг путем деления Zn соотношение образца 66 Zn / 64 от среднего значения Zn отношение двух стандартов измеренных до и после образца минус 1 и умноженное на 1000. 66 Zn / 64 (смотри уравнение 1). Типичный внешний точность по стандарту СВК Лион Zn 0,05 permil / нуклон (2 стандартное отклонение, 2 SD).

Результаты

В 1,5 N HBr, основные виды цинка (ZnBr3-) формы очень сильные комплексы с анионообменной смолой, тогда как большинство других элементов не взаимодействуют со смолой. Цинк затем извлекают путем изменения среды в разбавленной HNO 3, изменение видообразования Zn в Zn2 +, который высвобожда...

Обсуждение

Воспроизводимость измерений оценивается через воспроизведены анализа тех же образцов, проведенных в различных аналитических сессий. Например 6, мы воспроизвели ту же скалу земной 7 раз, и мы получили результаты, представленные в таблице 2.

Как и ожидалось ...

Раскрытие информации

Авторы не имеют ничего раскрывать.

Благодарности

FM-подтверждает финансирование от НРУ через Chaire d'Совершенство IDEX Сорбонна Париж Сите, Insu через PNP гранта, Институт Университетский де Франс, а также программа Labex UniverEarth Сорбонны в Париже Сите (ANR-10-LabX-0023 и НРУ -11-IDEX-0005-02). Мы также благодарим финансирование от Европейского исследовательского совета при Европейского сообщества H2020 рамочной программы / ERC грантовое соглашение # 637503 (Нетронутый).

Материалы

NameCompanyCatalog NumberComments
Multi-collection inductively-coupled-plasma mass-spectromterThermo-Fisher
Anion-exchange resin AG1 X8 200-400Bio-Rad140-1443-MSDS
Teflon beakersSavillex 200-015-12
In-house-made teflon colunms made with shrinkable teflon

Ссылки

  1. Marechal, C. N., Telouk, P., Albarede, F. Precise analysis of copper and zinc isotopic compositions by plasma-source mass spectrometry. Chemical Geology. 156 (1), 251-273 (1999).
  2. Marechal, C. N., Albarede, F. Ion-exchange fractionation of copper and zinc isotopes. Geochim. Cosmochim. Acta. 66 (9), 1499-1509 (2001).
  3. Weiss, D. J., Mason, T. F. D., Zhao, F. J., Kirk, G. J. D., Coles, B. J. Isotopic discrimination of zinc in higher plants. New Phytologist. 165 (3), 703-710 (2005).
  4. Jouvin, D., Louvat, P., N, M. F. C. Zinc isotopic fractionation: why organic matters. Environ Sci Technol. 43 (15), 5747-5754 (2009).
  5. Moynier, F., et al. Isotopic fractionation and transport mechanisms of Zn in plants. Chemical Geology. 267 (3-4), 125-130 (2009).
  6. Moynier, F., Herzog, G., Albarede, F. Isotopic composition of zinc, copper, and iron in lunar samples. Geochim. Cosmochim. Acta. 70 (24), 6103-6117 (2006).
  7. Moynier, F., et al. Isotopic fractionation of zinc in tektites. Earth Planet. Sci. Lett. 277 (3-4), 482-489 (2009).
  8. Chen, H., Savage, P., Teng, F. Z., Helz, R., Moynier, F. Zinc isotope fractionation during magmatic differentiation and the isotopic composition of the bulk Earth. Earth Planet. Sci. Lett. 369-370, 34-42 (2013).
  9. Moeller, K., et al. Calibration of the new certified materials ERM-AE633 and ERM-AE6447 for copper and IRMM 3702 for zinc isotope amount ratio determination. Geostd. Geoan. Res. 36 (2), 177-199 (2012).
  10. Bigeleisen, J., Mayer, M. Calculation of equilibrium constants for isotopic exchange reactions. J. Chem. Phys. 15, 261-267 (1947).
  11. Luck, J. M., Ben Othman, D., Albarede, F. Zn and Cu isotopic variations in chondrites and iron meteorites: Early solar nebula reservoirs and parent-body processes. Geochim. Cosmochim. Acta. 69 (22), 5351-5363 (2005).
  12. Moynier, F., Dauphas, N., Podosek, F. A Search for 70Zn Anomalies in Meteorites. Astrophys. J. 700 (2), L92-L95 (2009).
  13. Paniello, R., Day, J., Moynier, F. Zn isotope evidence for the origin of the Moon. Nature. 490 (7420), 376-380 (2012).
  14. Pichat, S., Douchet, C., Albarede, F. Zinc isotope variations in deep-sea carbonates from the eastern equatorial Pacific over the last 175 ka. Earth and Planetary Science Letters. 210 (1-2), 167-178 (2003).
  15. Moynier, F., Fujii, T., Shaw, A., Le Borgne, M. Heterogeneous of natural Zn isotopes in mice. Metallomics. 5 (6), 693-699 (2013).
  16. Balter, V., et al. Bodily variability of zinc natural isotope abundance in sheep. Rapid Com. Mass. Spec. 24, 605-612 (2010).
  17. Balter, V., et al. Contrasting Cu, Fe, and Zn isotopic patterns in organs and body fluids of mice and sheep, with emphasis on cellular fractionation. Metallomics. 5 (11), 1470-1482 (2010).
  18. Urgast, D. S., et al. Zinc isotope ratio imaging of rat brain thin sections from stable isotope tracer by LA-MC-ICP-MS. Metallomics. 4, 1057-1063 (2012).
  19. Marin-Carbonne, J., Rollion-Bard, C., Luais, B. In-situ measurements of iron isotopes by SIMS: MC-ICP-MS intercalibration and application to a magnetite crystal from the Gunflint chert. Chem. Geol. 285 (1-4), 50-61 (2011).
  20. Fietzke, J., et al. Boron isotope ratio determination in carbonates via LA-MC-ICP-MS using soda-lime glass standards as reference material. J. Anal. Atom. Spec. 25, 1953-1957 (2010).

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на использование текста или рисунков этого JoVE статьи

Запросить разрешение

Смотреть дополнительные статьи

99

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Исследования

Образование

О JoVE

Авторские права © 2025 MyJoVE Corporation. Все права защищены