JoVE Logo
АВТОРЫ
СВЯЖИТЕСЬ С НАМИ

Войдите в систему

Для просмотра этого контента требуется подписка на Jove Войдите в систему или начните бесплатную пробную версию.

В этой статье

  • Резюме
  • Аннотация
  • Введение
  • протокол
  • Результаты
  • Обсуждение
  • Раскрытие информации
  • Благодарности
  • Материалы
  • Ссылки
  • Перепечатки и разрешения

Резюме

Provided is a protocol for developing a real-time recombinase polymerase amplification assay to quantify initial concentration of DNA samples using either a thermal cycler or a microscope and stage heater. Also described is the development of an internal positive control. Scripts are provided for processing raw real-time fluorescence data.

Аннотация

It was recently demonstrated that recombinase polymerase amplification (RPA), an isothermal amplification platform for pathogen detection, may be used to quantify DNA sample concentration using a standard curve. In this manuscript, a detailed protocol for developing and implementing a real-time quantitative recombinase polymerase amplification assay (qRPA assay) is provided. Using HIV-1 DNA quantification as an example, the assembly of real-time RPA reactions, the design of an internal positive control (IPC) sequence, and co-amplification of the IPC and target of interest are all described. Instructions and data processing scripts for the construction of a standard curve using data from multiple experiments are provided, which may be used to predict the concentration of unknown samples or assess the performance of the assay. Finally, an alternative method for collecting real-time fluorescence data with a microscope and a stage heater as a step towards developing a point-of-care qRPA assay is described. The protocol and scripts provided may be used for the development of a qRPA assay for any DNA target of interest.

Введение

Количественный амплификации нуклеиновых кислот является важным методом для обнаружения окружающей среды, пищевого происхождения, и водно-патогенных микроорганизмов, а также для клинической диагностики. В режиме реального времени количественной полимеразной цепной реакции (КПЦР) является метод золотой стандарт для чувствительной, конкретной и количественного определения нуклеиновых кислот, например, для ВИЧ-1 вирусной нагрузки испытаний, обнаружение бактериальных патогенов, и скрининг на многих других организмов 1 - 3. В режиме реального времени кПЦР, праймеры амплификации ДНК патогена в циклах, и флуоресцентный сигнал, который пропорционален количеству амплифицированной ДНК в образце при каждом цикле. Образец, содержащий неизвестное концентрации патогенов ДНК может быть определена количественно с использованием стандартной кривой, которая относится к начальной концентрации ДНК стандартных образцов и времени, при котором флуоресцентный сигнал достигает определенного порога (т.е. порогового цикла, или С Т).

Поскольку в режиме реального времени КПЦР требует дорогостоящего оборудования термоциклировании и несколько часов, чтобы получить результаты, альтернативные изотермические методы амплификации, такие как рекомбиназа полимеразной амплификации (РПА), были разработаны четыре. Эти платформы обычно обеспечивают результаты быстрее и амплификации нуклеиновых кислот при более низкой температуре, одной, которая может быть выполнена с менее дорогой, простой оборудования. РПА, которое является особенно привлекательным для точка-в-ухода приложений, усиливает ДНК в минутах, требуется более низкая температура амплификации (37 ° С), и остается активным в присутствии примесей 5,6. РПА анализы были разработаны для широкого спектра применений, в том числе анализа пищевых продуктов, обнаружения возбудителя, рак скрининга лекарственных средств, и выявления biothreat агентов 7 - 12. Тем не менее, использование РПА для количественного определения нуклеиновых кислот была ограничена 13,14.

В предыдущей работе, это было шоWn, что в режиме реального времени количественный РПА (QRPA) возможна 15. Здесь более подробно протокол предназначен для использования в режиме реального времени количественный RPA количественно неизвестных образцов с использованием стандартной кривой, способ, аналогичный количественного использованием КПЦР. Этот протокол описывает, как выполнить реакцию РПА термоциклере для обнаружения ДНК ВИЧ-1, как доказательство правильности концепции, а также о том, как развивать внутренний положительный контроль (IPC), чтобы убедиться, что система функционирует нормально. Сбор данных с использованием амплификатор или микроскопа и анализа данных для построения стандартной кривой с использованием обучающих данных также подробно. Наконец, метод количественного неизвестных образцов, используя калибровочную кривую с помощью специального сценария показано. Этот метод дает количественное QRPA образцов с неизвестными концентрациями и имеет много преимуществ по сравнению с традиционными реального времени кПЦР.

протокол

1. Программа термоциклер в режиме реального времени QRPA реакций

  1. Создать новый протокол в программном обеспечении термоциклера.
    1. Вставьте предварительной инкубации шаг: 39 ° С в течение 1 мин.
    2. Добавьте второй шаг: 39 ° С в течение 20 сек с последующим пластинчатым чтения.
    3. Наконец, вставьте "Go To", которая повторяется второй шаг 59 несколько раз.
    4. Сохраните протокол.
  2. Создайте новый пластину на вкладке "Редактор тарелка" программного обеспечения. Выберите скважин на пластине, соответствующие места РПА реакций (здесь, используют колодцы A1, A4-A8, B1 и B4-B8).
    ПРИМЕЧАНИЕ: Это не важно, указан ли тип образца из скважины (например, "Стандарт", "НТЦ"), а анализ данных выполняется с помощью пользовательского сценария.
    1. Для экспериментов, содержащих только ВИЧ-1 ДНК, выберите "HEX" флюорофор для всех скважин. Для экспериментов, содержащих ДНК ВИЧ-1 и внутренний положительный COуправляете, выберите оба "Hex" и "FAM" флуорофоры для всех скважин. Сохранить пластину.

2. Подготовка к ВИЧ-1 QRPA экспериментов

  1. Соберите РПА реакции в указанном предварительного усиления рабочей содержащих назначение пипетки, наконечники, Vortexer, и мини-центрифуги, как и для количественной ПЦР. Как РПА может усилить одну копию ДНК на целых десять порядков (данные не показаны), ручка и распоряжаться пробирки, содержащие пост-продуктов амплификации ДНК в определенном районе после усиления.
    1. Избегать контакта между всеми Предварительное усиление реагентов и пост-продуктов амплификации. Спрей предварительной амплификации рабочие и оборудование с 50% хлорной до и после всех экспериментов. Используйте бумажное полотенце, чтобы вытирать излишки отбеливатель.
  2. Покупка последовательность прямого праймера 5'-TGG CAG ТАТ TCA TTC ACA ATT TTA AAA GAA AAG G-3 'и обратного праймера 5'-CCC GAA AAT ТТТ GAA ТТТ ТТГ ТАА TTT GTT ТТТ G-3 'от коммерческих синтезаторов ДНК. Купить последовательность зонда 5'ТГК тат тат GTC TAC ТАТ TCT TTC CCC [SIMA / HEX] GC [ТГФ] C [DT-BHQ1] GTA CCC CCC AAT CCC C-3 'из коммерческих источников. Хранить все праймеры и зонды при 4 ° С в аликвотах при концентрации 10 мкМ до использования.
    ПРИМЕЧАНИЕ: QRPA анализ усиливает уникальный ВИЧ-1 последовательности. Для этого доказательство правильности концепции анализа, использовать плазмиды pHIV-IRES- eYFPΔEnvΔVifΔVpr описанный Саттон и др., Который содержит последовательность-мишень 16. Для QRPA экспериментов, плазмида хранили при 4 ° C в аликвотах, содержащих 1, 10, 10 2, 10 3, 10 и 4 копий в мкл в буфере, содержащем 10 мМ Трис, 0,1 мМ ЭДТА при рН 8,0, и 1 нг / мкл геномной ДНК человеческого носитель (360486). Эта концентрация ДНК-носитель эквивалентно концентрации ДНК, полученной из коммерческих наборов экстракции ДНК в сыворотке, используемых для ВИЧ-1 диагностики 17. Эти ВИЧ-1разведения использовали в качестве матриц в QRPA реакций построить калибровочную кривую.

3. Соберите ВИЧ-1 QRPA стандартной кривой

  1. Перед сборкой реакции QRPA, подготовить заранее амплификации рабочее пространство, как описано в стадии 2.1.1. Поместите 96-а холодный блок при хранении при 4 ° С.
  2. Подготовка реагентов для 12 реакций:
    1. Перемещение ацетат магния, буфер регидратации и 12 РПА реакции гранул предварительно усиления рабочей области.
    2. Оттепель ацетат магния и буфер регидратации при комнатной температуре.
    3. Алиготе 32,5 мкл ацетата магния (2,5 мкл на реакцию) в микроцентрифужных трубки.
    4. Подготовка 13x мастер микс. Добавить 383,5 мкл буфера повторной гидратации (29,5 мкл на реакцию) в отдельную пробирку микроцентрифужных на мастер-смеси. Добавить 41,6 мкл нуклеазы свободной воды (3,2 мкл на реакцию) на мастер-микс. Vortex мастер микс.
    5. Вернуться к aceta магнияТе и регидратации буфером для хранения при -20 ° С.
    6. Перемещение праймеров и зондов аликвот из холодильника в области предварительного усиления, избегая чрезмерного воздействия света, чтобы свести к минимуму фотообесцвечивания.
    7. Добавить 27,3 мкл каждого из 10 мкМ прямого и обратного праймеров (2,1 мкл каждого праймера в реакции) к основной смеси.
    8. Добавить 7,8 мкл 10 мкМ HEX-меченных ВИЧ-1 ДНК-зондом (0,6 мкл на реакцию) на мастер-микс.
    9. Вернуться праймеров и зонда для хранения.
  3. Соответствующие расположение пластины, описанной в разделе 1.2, разместить один фермент гранул в каждой из крайних левых трубок и один фермента гранул в каждой из 5 до нужных трубок 2 малоэтажных 8-а полос ПЦР трубки.
  4. Осторожно добавляют 37,5 мкл основной смеси в каждую пробирку, содержащую фермент осадок, используя новый наконечник пипетки для каждой трубки и осторожном перемешивании в основной смеси и гранулы с наконечником, пока осадок не будет полностью растворится. Слегка помешивая, чтобы предотвратить пузырь formatiна, и снять наконечник осторожно, чтобы предотвратить потерю реакционного объема.
  5. После того как все гранулы фермента были регидратации с мастер-смеси, получить 96-а холодный блок из 4 ° C хранения. Поместите полоски ПЦР-пробирку в холодную блока, чтобы охладить мастер микс.
  6. В то время как мастер микс охлаждения, загрузите тепловой программного обеспечения ЦИКЛОВАТЕЛЬ с протоколом и к пластинке, описанной в разделе 1.
  7. Вырезать 2 полоски прозрачной пластиковой клея микро-уплотнения, чтобы быть немного шире, чем пробирки для ПЦР, и получить 2 плоских ПЦР-пробирку полосы крышки.
  8. Получить 6 аликвоты шаблона из хранилища (содержащие 0, 1, 10 1, 10 2, 10 3, или 10 4 копий ВИЧ-1 плазмиды в мкл).
  9. Добавить 10 мкл каждого шаблона в пробирки, предназначенные для этой концентрации шаблона. Использование нового пипетки для каждой трубки, осторожном перемешивании раствора с наконечником для смешивания основной смеси и шаблона. Будьте уверены, чтобы добавить шаблон в нужном месте, чтобы мATCH макет табличке, описанной в разделе 1.2.
  10. Убедитесь, что трубка полоса адаптера ПЦР для микроцентрифуге на месте.
  11. Не включать 2,5 мкл ацетата магния в каждую крышку трубки, которые будут размещены на пробирку, содержащую реакцию QRPA.
  12. Аккуратно крышки в верхней части пробирки ПЦР таким образом, что они не полностью закрытых и могут быть удалены. Ацетат магния будет придерживаться крышками и должны быть четко видны сверху.
  13. Вставка каждую пробирку PCR полосу с крышками на каждой стороне держателя ПЦР трубки. Закройте крышку minifuge вращаться ацетат магния из крышек и в реакции РПА, инициируя реакцию РПА. Центрифуга, пока все пузырьки не будут устранены, и вся жидкость собирается в нижней части каждой трубы (10 сек).
  14. Быстро удалить полоски ПЦР-пробирку и вернуть их в холодной блока, чтобы остановить реакцию QRPA.
  15. Осторожно снимите крышки, чтобы предотвратить образование аэрозолей и печать каждую пробирку полоску ПЦР с разрезомкусочки прозрачного микро-уплотнения пленки.
  16. Быстро ходить термоциклер и загрузить две полоски ПЦР трубки в термоциклер в местах, соответствующих расположение панели (колодцы A1-B8). Закройте крышку термоциклер, нажмите кнопку "Пуск Выполнить" и назначить имя файла для эксперимента.
    Примечание: Хотя производитель рекомендует перемешивание пробы через 5 мин инкубации, этот шаг не является необходимым для данного анализа и могут быть опущены.
  17. После выполнения завершена, выберите "Настройки", "базовой линии", "Нет Вычитание", чтобы отобразить исходные данные флуоресценции. Экспортировать данные в программу электронных таблиц, выбрав "Экспорт", "Экспорт всех Паспорта для Excel." Файл с добавлениях "Количественное амплификации Результаты" будет создан, содержащий исходные данные флуоресценции в режиме реального времени.

4. Разработка положительного контроля внутреннего

  1. Выбор ДНК-последовательность из вида, что вряд ли можно найти в целевом образца. Последовательность должна быть больше, чем целевой ампликона, так что генерация последовательности-мишени способствует.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Для этого теста, Cryptosporidium parvum, паразит кишечника, была выбрана в качестве шаблона для генерации последовательности МПК, потому что этот организм вряд ли можно найти в крови и была доступна в лаборатории из другого проекта. Для создания последовательности IPC, извлечь и очистить ДНК из С. parvum ооцисты, как описано в другом месте 18.
  2. Покупка вперед (5'-TGG CAG ТАТ TCA TTC ACA ATT TTA AAA GAA AAG G / ATC ТАА GGA AGG CAG CAG GC-3 ') и обратном (5'-ССС GAA AAT ТТТ GAA ТТТ ТТГ ТАА ТТТ GTT ТТТ G / ТГК TGG AGT ATT CAA GGC АТА-3 ') праймеры из коммерческих источников. Праймеры ПЦР МПК, используемые в этом анализе, показаны на рисунке 1 и содержит одну область, которая является дополнением к шаблону МПК DNA (например, культуры C.parvum, фиолетовый на рисунке 1) и одном регионе, которую предлагается бесплатный организма-мишени (например, ВИЧ-1, синий на рисунке 1).
  3. Выполнение ПЦР с использованием праймеров и матрицы ДНК IPC.
    1. Соберите 50 мкл реакции ПЦР с использованием набора реагентов Phusion High-Fidelity ДНК-полимеразы в соответствии с инструкцией завода-изготовителя, за исключением полимеразы. Используйте 2 мкл ДНК-матрицы и Phusion буфера HF.
    2. Добавить полимеразу Phusion каждой реакции после горячей начала в 98 ° C, с последующим 60 сек при 98 ° С, с последующими 40 циклами по 15 сек при 98 ° С, 30 сек при 62 ° С, 30 сек и при 72 & deg; С с конечным удлинением при 72 ° С в течение 5 мин. После термоциклирования, удерживая температуру образцов 4 ° C.
    3. Анализ проб с помощью гель-электрофореза на 2% агарозном геле ТАЕ, а затем извлечь и очистить ДНК с использованием набора QIAquick Gel Extraction согласно протоколу микроцентрифужных входитКомплект.
  4. Экран кандидатов МПК для их способность усиливать с помощью QRPA.
    1. Подготовка QRPA реакции, как описано в разделе 3, используя ВИЧ-1 праймеры, FAM-меченного зонда, специфического к МПК (5'-AGG TAG TGA CAA GAA ATA ACA ATA CAG GAC [FAM] T [ТГФ] T [DT-BHQ1 ] ГГТ ТТТ GTA АТТ GGA-3 '), и в общей сложности 0, 10, 10 2, 10 3, 10 4, 10 или 5 копий каждого МПК кандидата на реакцию, тестирование всех концентраций в дубликатах.
    2. Выберите кандидата IPC, который усиливает наиболее последовательно и имеет нижний предел-Of-обнаружения.
  5. Co-амплификации ВИЧ-1 и МПК для определения оптимальной концентрации МПК ДНК.
    1. Как и в разделе 3, объединить следующие в каждой реакции 50 мкл: 29,5 мкл буфера повторной гидратации, 2,1 мкл РПА из прямого праймера [10 мкМ], 2,1 мкл РПА обратного праймера [10 мкМ], 0,6 мкл ВИЧ-1 HEX меченных зонда [10 мкМ], 10 мклВИЧ-1 ДНК при различных концентрациях, 2,5 мкл ацетата магния, и один фермент таблетки. Вместо добавления 3,2 мкл нуклеазы свободной воды, как это делалось на шаге 3.2.4, добавить 0,6 мкл МПК FAM-меченного зонда [10 мкМ] и 2,6 мкл ДНК МПК. Использование концентрации МПК, которое предельно из обнаружения (LOD) при QRPA выполняется с только ДНК МПК (LOD определяется как самую низкую концентрацию, где количество генерации сигнала флуоресценции, что больше, чем от флуоресценции, генерируемого образцов с нет ДНК-мишень).
    2. Выдержите образцы, используя протокол, описанный в разделе 1.1.
    3. Если IPC не усиливает в каждом образце, попробуйте повторить эксперимент с МПК концентрация на порядок выше. Оптимальная концентрация ДНК МПК для ВИЧ-1 анализа 10000 копий / мкл. В то время как образцы считаются действительными, если есть или IPC или ВИЧ-1 амплификации ДНК, в идеале IPC имеет обнаруживаемого усиление длякаждый реакция.

5. Построение стандартной кривой из нескольких экспериментов

  1. Убедитесь, что данные для каждого эксперимента были экспортированы в программу электронных таблиц, как описано в разделе 3.13.
  2. Открыть и запустить скрипт "JoVE_qRPA_standard_curve.m". Все входы автоматически предлагается в окне командной строки. После того как сценарий инициируется, пользователь автоматически будет предложено назначить "Количество файлов данных" используется для построения стандартной кривой.
  3. В окне командной строки введите число файлов, которые будут использоваться для построения стандартной кривой и нажмите клавишу ВВОД.
  4. Введите в окне командной количество образцов и количество повторов в каждом учебном файла (нажимая клавишу ВВОД после каждой записи).
    ПРИМЕЧАНИЕ: В макете пластины, описанной в разделе 1.2, было 6 образцов с различными концентрациями и 2 повторов каждого образца).
  5. Введите в командной строке низкая DNКонцентрация используется для построения стандартной кривой (в log10 копий) и нажмите Enter (для расположения плиты, описанной в разделе 1.2, низкая концентрация шаблон '1' log10 копий).
  6. Введите в окне командной строки разница в концентрации между каждого стандарта (в log10 копий), затем нажмите Enter (для расположения плиты, описанной в разделе 1.2, концентрационный интервал равен '1' log10 копий).
  7. После запроса введите «Скат порог" в окне командной и нажмите клавишу ВВОД.
  8. В окне командной строки введите "Номер (г) стандартных отклонения выше фона для позитивного порога", а затем нажмите клавишу ВВОД. Типичные значения для диапазона г от 1 до 5.
  9. Укажите было собрано данных с использованием термоциклер ('1'), * .tiff микроскопе ('2'), или * .jpg микроскопе ('3'), набрав номер «1, '' 2 ' или "3", а рressing войти.
  10. Выберите, чтобы установить новый порог IPC или использовать значение по умолчанию для порога, набрав 'Y' или 'N,' соответственно, при запросе.
  11. Далее, выберите каждый из файлов электронных таблиц, используемых для построения калибровочной кривой.
    ПРИМЕЧАНИЕ: скрипт будет автоматически импортировать данные HEX и флуоресценции FAM; определить, является ли каждая реакция была действительна (т.е. является ли сигналы флуоресценции превысили пороговые значения для шестигранных или ФАМ каналов); определить коэффициент R 2 для экспоненциальной, линейной, а полином второго порядка нужным; Сюжет "log10 копий в сравнении с порога цикла" для каждого образца, используемого для создания стандартной кривой; и создать файл электронной таблицы, содержащий существенные переменные, чтобы восстановить стандартную кривую для экспериментов проверки не требуя от пользователя повторно ввести все входные параметры.

6. Анализ проверки и количественной оценки неизвестных образцов с использованиемСтандартная кривая

  1. Используйте скрипт "JoVE_qRPA_validation_and_quantification.m", чтобы оценить точность и точность анализа с использованием образцов с известными концентрациями или использовать его для количественной оценки образцов с неизвестными концентрациями.
    Примечание: Поскольку ранее опубликованных исследований показали, что экспоненциальный подходит дали лучший R-квадрат коэффициента 18, этот сценарий использует экспоненциальное, пригодный для стандартной кривой. Если другой тип посадки желательно, сценарий может быть изменен соответствующим образом.
    1. Открыть и запустить скрипт "JoVE_qRPA_validation_and_quantification.m". После того как сценарий инициируется, пользователь автоматически ввести все входы в окне командной строки.
    2. Введите '1' для проверки по результатам анализа с использованием стандартной кривой с известными концентрациями образца или ввести '2', чтобы количественно неизвестных образцов.
    3. При появлении запроса либо выбрать сохраненный стандартную кривую или построить новый, введя йе информация, автоматически запросил в окне команд (та же информация, что требуется для "JoVE_qRPA_standard_curve.m" сценарий из раздела 5).
    4. Введите число экспериментов (то есть, файлы электронных таблиц), чтобы проанализировать для проверки / количественной оценке.

7. Подготовка к сбору данных с использованием флуоресцентного микроскопа и подогревом Chip

  1. Убедитесь, флуоресцентный микроскоп имеет этап нагреватель и регулятор температуры 1-канальный высокой точностью стабильности на месте.
  2. Убедитесь, что флуоресцентный микроскоп имеет куб фильтра для возбуждения и собирать флуоресценции от каждого флуорофора. Excite и собирать FAM флуоресценции генерируется в процессе амплификации IPC ДНК через GFP фильтр (возбуждение BP 470/40 нм, эмиссия BP 520/50 нм). Excite и собирать HEX флуоресценции, генерируемого во время ВИЧ-1 амплификации ДНК через HEX фильтра (возбуждение BP 530/30 нм, эмиссия BP 575/40 нм).
  3. Используйте программное обеспечение для редактирования скрипт микроскопом, чтобы создать автоматизированную алгоритм для репликации данных для сбора на термоциклер.
    1. Во-первых вставить "Настройки" шаг, чтобы закрыть затвор. Затем добавьте в "экспозиции" шаг, чтобы установить экспозицию до 60 сек. Вставьте "Привязать", чтобы выполнить задержку 60 сек, который реализует 1-минутного периода предварительной инкубации. Добавить "Настройка" шаг, чтобы изменить рабочую группу с GFP фильтра. Вставьте другой «экспозиции» шаг, чтобы настроить экспозицию до 200 мс. Все экспозиции с помощью GFP или фильтр кубики HEX будет установлен в 200 мс.
    2. После «разоблачения» шагом, добавить "Привязка" и указать камеру, с которой будет принято изображения. Используйте другой "Настройка" шаг, чтобы закрыть затвор и "Сохранить изображение" шаг, чтобы сохранить изображение на временную папку, определенного пользователем.
    3. Следующая переключатель в кубе HEX фильтра с помощью другого "Настройка" шаг и еан добавить «экспозиции» на 200 мс, "Привязка", и "Сохранить изображение" шагом.
    4. Повторите эту процедуру 59 раз с первоначальной задержкой 20 сек, вместо 60 (закрывающегося затвора, подождите 20 сек, переключатель GFP фильтра куба, установите контакт с 200 мс, оснастки, недалеко затвора, сохранять, переключатель HEX фильтра куба, установить экспозицию 200 мс, оснастки).
  4. Создать чип, который будет содержать QRPA реакции.
    1. Для экспериментов с использованием микроскопа, используйте файл JoVE_qRPA_base.ai вырезать прямоугольное основание 40 х 15 мм из листа толщиной 1/8 "черной акриловой помощью лазерного резака устанавливается на 100% мощности, скорости на 10%.
    2. Используйте файл JoVE_qRPA_well.ai сократить реакцию и состоящий из 10 х 10 мм площади в с диаметром 5 мм вырезать круглое отверстие из листа толщиной 1,5 мм прозрачный акрил.
    3. Прикрепите до трех скважин на единой базе, используя суперклей гель.
    4. Сухой ночь.

8. Сбор и ана данныхSIS с помощью флуоресцентного микроскопа

  1. Подготовьте микроскоп для сбора данных при загрузке сценарий автоматической сбора данных JoVE_AxioVision_Script.ziscript.
    1. Установите этапа нагреватель до 48 ° С и подогрева чип реакции на стадии нагревателя около 20 мин. Установка температуры 48 ° С поддерживает температуру 39 ° С в реакции а (данные не показаны).
    2. Использование 10X, 0,45 NA цели, сосредоточиться на верхней части внутренней кромки реакции также с GFP фильтр на место. Края акрила autofluorescent после лазерной резки и может быть легко визуализировать. После фокусировки, не регулировать высоту столике микроскопа, пока все данные не будут собраны.
  2. Сборка основной смеси QRPA в указанном предварительной амплификации рабочей как описано в стадии 4.5.1. Для каждого образца, смешать фермента гранул, основной смеси, а также ВИЧ-1 ДНК-матрицы в микроцентрифужных трубки. Добавить 2,5 мкл ацетата магния в первом reactioп и кратко вихрь.
  3. Быстро транспортировки микроцентрифужную трубки, содержащей образец QRPA к флуоресцентным микроскопом.
    1. Тщательно пипетки 30 мкл реакционной РПА в реакции также без создания пузырьков. Поместите каплю ПЦР-минерального масла марки по поводу реакции РПА, чтобы предотвратить испарение.
    2. Расположите ну прямо под объектив микроскопа, заботясь, чтобы только изображение центра Ну, не любой из авто-флуоресцентный акриловых края. После хорошо позиционируется, запустите скрипт автоматизации 7. скрипт генерирует одно изображение в формате JPEG с использованием куб фильтра FAM и одно изображение в формате JPEG с использованием куб HEX фильтр через каждые 20 сек.
  4. После сценарий будет завершен, передавать эти изображения из папки временного хранения перед запуском дополнительных образцов.
    1. Создание 2 папки: 1 для каждого флуорофора (т.е. "HEX" и "FAM"). Храните обе папки в том же родительской папки. В каждом флуорофорапапки, создавать папки, меченного числа копий ДНК, присутствующих в образце (например, 0, 10, и т.д.).
    2. Перенесите все файлы с префиксом "HEX" в соответствующую вложенную папку в папке "HEX". Перенесите все файлы с префиксом "GFP" в соответствующую вложенную папку в папке "FAM".
  5. Повторите Разделы 8.2-8.4 для QRPA реакциях с 0, 10, 10 2, 10 3, 10 4, и 10 5 ВИЧ-1 ДНК-копий.
  6. После сбора данных для всех образцов QRPA в эксперименте, загрузить сценарий "JoVE_real_time_intensity_to_excel.m." В ответ на сценарий, выберите родительскую папку, содержащую 2 флуорофорные папки, которые в свою очередь содержат изображения для каждой концентрации во вложенных папках.
    ПРИМЕЧАНИЕ: скрипт будет автоматически генерировать файл электронной таблицы в родительском каталоге, в котором данные флуоресценции HEX будет сохранен в листовой ДНЭд 'HEX', и данные флуоресценции FAM будут сохранены в листе с именем "FAM". В каждом листе, номер цикла указан в столбце В, и данные флуоресценции в режиме реального времени для повышения концентрации шаблона приведены в столбцах C, D, и т.д.. Каждый реальном времени флуоресценции данное есть средняя интенсивность флуоресценции изображения, захваченного в тот момент времени.
  7. Используйте функцию печати по умолчанию разброс в программе электронных таблиц для построения ячейки B2: H61 в "HEX" и "ФАМ" листов для визуализации флуоресценции в режиме реального времени и генерировать графики, аналогичные тем, на рисунках 2а, 2b, 3а, и 3В.
    Примечание: таблицы, полученной на этапе 8,6 могут быть также использованы в сценарии "JoVE_qRPA_standard_curve.m" и "JoVE_qRPA_validation_and_quantification.m".

Результаты

Перед выбором последовательность в качестве МПК в QRPA экспериментов с мишенью (ВИЧ-1) ДНК, внутренний позитивный контроль (МПК) кандидаты формируются и скринингу на их способность усиливать в QRPA реакций без ВИЧ-1 ДНК, присутствующей. Кандидаты IPC больше, чем мишень (ВИЧ-1) ДНК, чтобы предотв?...

Обсуждение

Для того, чтобы получить значимые данные количественной с использованием алгоритма MATLAB, пользователь должен выбрать соответствующие значения входного сигнала, когда будет предложено. После начала каждого сценария в разделах 5 и 6, все входные переменные автоматически запросил в окне ?...

Раскрытие информации

The authors declare they have no competing financial interests.

Благодарности

Это исследование было профинансировано за счет гранта от Фонда Билла и Мелинды Гейтс через Великие задачи в Глобальной инициативы в области здравоохранения.

Материалы

NameCompanyCatalog NumberComments
qRPA Assay
HIV-1 forward primerIntegrated DNA Technologiescustom DNA oligos5’-TGG CAG TAT TCA TTC ACA ATT TTA AAA GAA AAG G-3’ 
HIV-1 reverse primerIntegrated DNA Technologiescustom DNA oligos5’-CCC GAA AAT TTT GAA TTT TTG TAA TTT GTT TTT G-3’ 
HIV-1 probeBioSearch Technologies custom DNA oligos5’- TGC TAT TAT GTC TAC TAT TCT TTC CCC [SIMA/HEX] GC [THF] C [dT-BHQ1] GTA CCC CCC AAT CCC C -3’ 
IPC probeBioSearch Technologies custom DNA oligos5’-AGG TAG TGA CAA GAA ATA ACA ATA CAG GAC [FAM] T [THF] T [dT-BHQ1] GGT TTT GTA ATT GGA A -3’
RPA exo reagents (pellets, rehydration buffer, magnesium acetateTwistDxTwistAmp exo
PCR tube stripsBioRadTLS0801
PCR flat cap tube stripsBioRadTCS0803
Micro-seal adhesiveBioRad558/MJ 
HIV-1 target (pHIV-IRES- eYFPΔEnvΔVifΔVpr)custom plasmid, see: Segall, H. I., Yoo, E. & Sutton, R. E. Characterization and detection of artificial replication-competent lentivirus of altered host range. Molecular Therapy 8, 118–129, doi:10.1016/S1525-0016(03)00134-5 (2003).
Human male genomic DNAApplied Biosystems360486
96 well cold-blockCole ParmerEW-36700-48
Thermal cyclerBioRadCFX96
MiniFugeVWR93000-196
VortexVWR58816-121
Tris buffer 1.0 M, pH 8.0EMD Millipore648314
EDTA 0.5 M, pH 8.0PromegaV4321
Nuclease free waterAmbionAM9937
IPC Development
Cryptosporidium parvum IPC templateWaterborne IncP102CIt is also possible to order a double stranded synthetic target from IDT if the user is unequipped to work with C. parvum (a BSL-2 infectious agent). PCR and RPA primers for C. parvum were designed using GenBank accession number AF115377.1
PCR long forward primerIntegrated DNA Technologiescustom DNA oligos5’-TGG CAG TAT TCA TTC ACA ATT TTA AAA GAA AAG G/ ATC TAA GGA AGG CAG CAG GC-3’
PCR long reverse primerIntegrated DNA Technologiescustom DNA oligos5’- CCC GAA AAT TTT GAA TTT TTG TAA TTT GTT TTT G/ TGC TGG AGT ATT CAA GGC ATA -3’
Phusion High-Fidelty DNA PolymeraseNew England BiolabsM0530S
Qiaquick Gel Extraction KitQiagen28704
TAE 10X bufferEMD Millipore574797
AgaroseSigma AldrichA9539
Microscope Experiments
Upright fluorescence microscopeZeissZeiss Imager.J1
Stage heaterBioscience ToolsTC-GSH
1-Channel Precision High Stability Temperature ControllerBioscience ToolsTC-1100S
FAM/GFP filter cubeZeissfilter set 38 (000000-1031-346)excitation BP 470/40 nm, emission BP 520/50 nm
HEX filter cubeChroma49014excitation BP 530/30 nm, emission BP 575/40 nm
Laser cutterEngraver's NetworkVLS3.60
1/8" black acrylicMcMaster Carr8505K113
1.5 mm clear acrylicMcMaster CarrPD-72268940 
Super glueOffice DepotDuro super glue 
PCR grade mineral oilSigma AldrichM8662-5VL
Data Analysis
Microsoft ExcelMicrosoft
MATLABMATLAB
MATLAB script: "JoVE_qRPA_standard_curve.m”Included in SI
MATLAB script: "JoVE_qRPA_validation_and_quantification.m”Included in SI
MATLAB script: "JoVE_real_time_intensity_to_excel.m”Included in SI
Adobe IllustratorAdobe
JoVE_qRPA_well.aiIncluded in SI
JoVE_qRPA_base.aiIncluded in SI
AxioVision softwareZeiss
JoVE_AxioVision_Script.ziscriptIncluded in SI

Ссылки

  1. Yoon, J. -. Y., Kim, B. Lab-on-a-Chip Pathogen Sensors for Food Safety. Sensors. 12 (8), 10713-10741 (2012).
  2. Quintero-Betancourt, W., Peele, E. R., Rose, J. B. Cryptosporidium parvum and Cyclospora cayetanensis: A review of laboratory methods for detection of these waterborne parasites. Journal of Microbiological Methods. 49 (3), 209-224 (2002).
  3. Sedlak, R. H., Jerome, K. R. Viral diagnostics in the era of digital polymerase chain reaction. Diagnostic Microbiology and Infectious Disease. 75 (1), 1-4 (2013).
  4. Asiello, P. J., Baeumner, A. J. Miniaturized isothermal nucleic acid amplification, a review. Lab on a Chip. 11 (8), 1420-1430 (2011).
  5. Piepenburg, O., Williams, C. H., Stemple, D. L., Armes, N. A. DNA detection using recombination proteins. PLoS Biology. 4 (7), 1115-1121 (2006).
  6. Krõlov, K., Frolova, J., et al. Sensitive and Rapid Detection of Chlamydia trachomatis by Recombinase Polymerase Amplification Directly from Urine Samples. The Journal of Molecular Diagnostics JMD. 16 (1), 127-135 (2014).
  7. Santiago-Felipe, S., Tortajada-Genaro, L. a., Puchades, R., Maquieira, A. Recombinase polymerase and enzyme-linked immunosorbent assay as a DNA amplification-detection strategy for food analysis. Analytica Chimica Acta. 811 (1), 81-87 (2014).
  8. Kersting, S., Rausch, V., Bier, F. F., von Nickisch-Rosenegk, M. Rapid detection of Plasmodium falciparum with isothermal recombinase polymerase amplification and lateral flow analysis. Malaria Journal. 13 (1), 99 (2014).
  9. Crannell, Z. A., et al. Nucleic Acid test to diagnose cryptosporidiosis: lab assessment in animal and patient specimens. Analytical Chemistry. 86 (5), 2565-2571 (2014).
  10. Rohrman, B. A., Richards-Kortum, R. R. A paper and plastic device for performing recombinase polymerase amplification of HIV DNA. Lab on a Chip. 12 (17), 3082 (2012).
  11. Loo, J. F. C., Lau, P. M., Ho, H. P., Kong, S. K. An aptamer-based bio-barcode assay with isothermal recombinase polymerase amplification for cytochrome-c detection and anti-cancer drug screening. Talanta. 115 (1), 159-165 (2013).
  12. Euler, M., et al. Development of a panel of recombinase polymerase amplification assays for detection of biothreat agents. Journal of Clinical Microbiology. 51 (4), 1110-1117 (2013).
  13. Abd El Wahed, A., et al. A portable reverse transcription recombinase polymerase amplification assay for rapid detection of foot-and-mouth disease virus. PloS One. 8 (8), e71642 (2013).
  14. Escadafal, C., et al. Rapid Molecular Assays for the Detection of Yellow Fever Virus in Low-Resource Settings. PLoS Neglected Tropical Diseases. 8 (3), e2730 (2014).
  15. Hutson, S. L., et al. T. gondii RP Promoters & Knockdown Reveal Molecular Pathways Associated with Proliferation and Cell-Cycle Arrest. PLoS ONE. 5 (11), 15 (2010).
  16. Segall, H. I., Yoo, E., Sutton, R. E. Characterization and detection of artificial replication-competent lentivirus of altered host range. Molecular Therapy. 8 (1), 118-129 (2003).
  17. Crannell, Z. A., Rohrman, B. A., Richards-Kortum, R. Quantification of HIV-1 DNA using Real-Time Recombinase Polymerase Amplification. Analytical Chemistry. 86 (12), (2014).
  18. Sollis, K. a., et al. Systematic review of the performance of HIV viral load technologies on plasma samples. PloS one. 9 (2), e85869 (2014).
  19. . . Guidelines for the use of antiretroviral agents in HIV-1-infected adults and adolescents. , 1-166 (2011).

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на использование текста или рисунков этого JoVE статьи

Запросить разрешение

Смотреть дополнительные статьи

971

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Конфиденциальность

Условия эксплуатации

Политика

СВЯЖИТЕСЬ С НАМИ

РЕКОМЕНДОВАТЬ БИБЛИОТЕКЕ

НОВОСТИ JoVE

Исследования

Образование

АВТОРЫ

Библиотекарь

О JoVE

Авторские права © 2025 MyJoVE Corporation. Все права защищены