JoVE Logo

Войдите в систему

Для просмотра этого контента требуется подписка на Jove Войдите в систему или начните бесплатную пробную версию.

В этой статье

  • Резюме
  • Аннотация
  • Введение
  • протокол
  • Результаты
  • Обсуждение
  • Раскрытие информации
  • Благодарности
  • Материалы
  • Ссылки
  • Перепечатки и разрешения

Резюме

Наши цели были разрабатываем, производим и проверить ферромагнитных стентов для захвата эндотелия клеток. Десять стенты были испытаны на разрыв и более 10 стентов были испытаны при задержке магнетизма. Наконец, 10 стентов были испытаны в пробирке и более 8 стенты были имплантированы в 4 свиней, чтобы показать захват и удержание клеток.

Аннотация

Быстрое эндотелиализацию сердечно-сосудистых стентов необходимо для снижения тромбоза стента и избежать анти-тромбоцитов терапии, которые могут уменьшить риск кровотечений. Возможность использования магнитных сил, чтобы захватить и удержать эндотелиальные клетки вырост (EOC), меченные супер парамагнитные наночастицы оксида железа (Spion) было показано ранее. Но этот метод требует разработки механически функциональной стента из магнитного материала и биологически совместимого с последующим в пробирке и в естественных испытаний, чтобы доказать, быстрое эндотелиализацию. Мы разработали слабоферромагнитное стент из 2205 дуплексной нержавеющей стали с использованием системы автоматизированного проектирования (САПР) и его дизайн был доработан с помощью конечно-элементного анализа (FEA). Окончательный дизайн стента выставлены основной нагрузки ниже предела разрушения материала во время механического обжатия и расширения. Сто стенты были изготовлены и подмножество из них используется для механических испытаний в отставкеained измерения магнитного поля, в-пробирке исследования захвата клеток и в естественных имплантации исследований. Десять стенты были испытаны для развертывания, чтобы убедиться, если они понесли опрессовки и расширение цикл без сбоев. Еще 10 стентов были намагничены с помощью сильной неодимовый магнит и их сохранил магнитное поле было измерено. Стенты показал, что сохраняется магнетизм было достаточно, чтобы захватить Spion-меченого EOC в наших в пробирке исследований. Spion меченных захвата и удержания ЕОК была проверена в крупных животных моделях имплантации стента 1 намагниченной и 1 не-намагниченной стента управления в каждом из 4 свиней. Стентированной артерии эксплантировали через 7 дней и анализировали гистологически. В слабомагнитные стенты, разработанные в этом исследовании, были способны привлекать и удерживать Spion меченных эндотелиальные клетки, которые могут способствовать быстрому заживлению.

Введение

Patients implanted with vascular stents manufactured from thrombogenic materials like stainless steel, cobalt chromium, and platinum chromium – both bare metal stents (BMS) and drug eluting stents (DES) – need anti-platelet therapy to prevent thrombus formation. BMS heal rapidly, but are subject to late stage restenosis due to incomplete healing. DES require long term anti-platelet therapy due to delayed healing. Anti-platelet therapy administered to avoid thrombosis as a result of incomplete or delayed healing leads to increased bleeding risk and may not be suitable for certain patients1,2. An ideal stent will heal completely and quickly thus avoiding long-term anti-platelet therapy and late stage restenosis. This complete healing can only be achieved if the stent is rapidly coated with a monolayer of endothelial cells after implantation. Coating the stents with biocompatible materials such as gold or other biopolymers has been shown to improve thrombo-resistance, but none of these techniques achieved ideal blood compatibility as may be possible by coating with endothelial cells3,4.

A stent can be coated with endothelial cells post implantation by attracting circulating progenitor cells. This self-seeding technique can be achieved by utilizing ligands and antibodies. But this technique is limited by the low number of circulating endothelial progenitor cells. A promising strategy is to deliver cells directly to the stent immediately following implantation during a short period of blood flow occlusion3,5. This strategy requires a technique for rapidly capturing cells and retaining them on the stent even after restoring blood flow. We have developed a technique in which a magnetic stent is used to attract and retain magnetically-labeled endothelial cells delivered post implantation. To achieve this, a functional BMS with sufficient magnetic properties to capture and retain magnetically-labeled endothelial cells is required6.

In this paper, we discuss the methods for designing, manufacturing, and testing a 2205 stainless steel stent. The stents were designed using CAD and FEA. The manufactured stents were magnetized using a neodymium magnet and the retained magnetic field was measured using a magneto-resistance microsensor probe. We then tested the stents for magnetically-labeled cell capture in a culture dish during our in-vitro experiments. Finally, the stents were tested in-vivo by implanting magnetic and non-magnetic stents in 4 pigs and histologically analyzing the stented arteries.

протокол

Все исследования на животных были одобрены Уходу за животными и использованию комитета (IACUC) в клинике Майо.

1. Разработка и анализ в 2205 из нержавеющей стали стента

  1. Проектирование голый металл стента, используя CAD
    1. Сделать экструдированного полый цилиндр, выбрав на "экструдированный хозяин / базовой 'особенность с толщиной стенки, равной толщине стент стойки.
    2. Разработка шаблона стента на другом эскиза плоскости, касательной к цилиндру экструдированного. Сделать ширину развертки в соответствии с окружностью экструдируемого полого цилиндра.
    3. Перевести плоский шаблон дизайна на полого цилиндра с помощью функции обтекания.
    4. Сохраните участие в его родном формате, а также в формате ACIS, чтобы быть экспортированы для ВЭД.
  2. Анализ методом конечных элементов для моделей стентов
    1. Импорт твердой геометрии, сохраненные в формате ACIS в части модуля ВЭД программного обеспечения для дальнейших Analysесть.
    2. Модель 2 аналитические цилиндров коаксиально стента в части по моделированию программного обеспечения FEA. Наружный цилиндр имеет исходный диаметр больше, чем диаметр стента, чтобы имитировать щипцы и внутренний цилиндр имеет начальную диаметр 1 мм, чтобы имитировать воздушный шар инфляции.
    3. Двойной щелчок на дереве пункта "экземпляры" сборочного модельер собрать сказанное части в относительных позиций.
    4. Используйте модуль сетки программного обеспечения ВЭД, указать тип элемента как 20-узловой элемент с шестигранной уменьшенной интеграции, указать размер элемента, и сетка стента.
    5. Укажите качения жесткие контактные пары между стента и двух цилиндров, соответственно, в "свойствах взаимодействия" в дереве модели.
    6. Связать упругопластическая поведение напряженно-деформированного 2205 нержавеющей стали модели стента.
    7. Определить граничные условия, чтобы, во-первых обжимной наружный цилиндр до 1 мм, имитирующее CRimping стента. Удалить наружный цилиндр для имитации релаксацию извитой стента. Expand внутренний цилиндр 3 мм, чтобы имитировать расширение и, наконец, удалить внутренний цилиндр для имитации отдачи стента.
    8. Определить параметры моделирования, включая число процессоров и объем оперативной памяти, выделенных в «анализ» модели дерева пункта и запустить симуляцию.
    9. После завершения моделирования, открыть файл результата (filename.odb) и пост-обработки результатов для изучения основных штаммов и итеративно улучшить дизайн стента для достижения главной деформации 20%, которое меньше предела разрушения материала ,

2. Стент Изготовление и тестирование для обжима и расширения

  1. Стент изготовление
    1. Получите 2205 труб из нержавеющей стали от пистолета бурения и точности шлифования цельного материала на точность обработки компании, такие как Precision Products действий в Pioneer,ОЙ.
    2. Передача точность наземных труб и плоский дизайн рисунок стента в компании стента резки, таких как Laserage Technology Corporation в Уокиган, штат Иллинойс для лазерной резки и электрополировки.
    3. Пассивации поверхности с помощью стентов электрополированные погружением их в сильной кислотой (50% HCl) в течение 10 мин с последующим основанием (10% NaHCO 3) еще 10 мин. ВНИМАНИЕ: обрабатывать химикатами с надлежащего защитного оборудования и под вытяжкой. Наконец, мыть стентов с этиловым спиртом и деионизированной воды. Этот процесс называется кислотного травления.
  2. Тестирование выпускаемой стента для опрессовки и расширения
    1. Обжимные стента на воздушном шаре в Trifold использованием ручного обжима инструмент. Держите стента и буклетов шар в обжимного инструмента. Нажмите ручку радиально деформировать стент обжимаемого на воздушном шаре.
    2. Осмотрите гофрированной стента, используя микроскоп для равномерного обжатия и каких-либо признаков отказа в структуре должнымпластической деформации.
    3. Expand его проектируемого диаметром 3 мм с помощью давления в Trifold баллон с водой. Проверьте расширенные стентов для микроскопических трещин и единой расширения.

3. Характеристика Стент для Нераспределенная магнитном поле

Примечание: цилиндрический магнит 2 дюйма диаметром и 1 дюйм высоты был использован в данном исследовании. Полюса магнита выстраиваются вдоль оси. Поверхностная плотность магнитного потока магнита составляет примерно 1 Т.

  1. Намагнитить стентов диаметрально или аксиально с помощью сильной неодимовый магнит. Держите стента близко к сильным магнитом в течение приблизительно 1 мин для намагничивания.
  2. Держите стента на одном из плоских граней с диаметром вдоль силовых линий магнитного поля, которые будут намагниченных диаметрально или держат стента рядом с цилиндрической поверхностью с осью, направленной вдоль силовых линий магнитного поля, чтобы намагнитить его оси. Нераспределенная магнитного Fielд стента оказалась стабильной в течение по крайней мере 24 ч, но с использованием стента, как можно скорее после намагничивания.
  3. Установите стентов индивидуально на стеклянные оправки и затем смонтировать стеклянные оправки в точности патрона магнитного зондирования прибора. Магнитный зонд микросенсор может быть точно расположены близко к стента, не касаясь поверхности, используя XYZ этапы сборки магнитного зондирования приспособления (рисунок 4).
  4. Измерьте базовой чтение магнитной микросенсора далеко от стента и затем измерить магнитное поле удерживается на поверхности стента путем размещения зонда, используя этапы XYZ магнитного зондирования прибора.

4. Магнитные Исследования сотовый Захват

  1. Получение клеток, мечение Spion и окрашивания флуоресцентным красителем
    1. Вывести эндотелиальные клетки вырост (EOC) из свиной периферической крови, как описано в 5,7. Культура в колбе Т-75 Untiл примерно 80% сливной (5x10 8x10 6 до 6 клеток).
    2. Обобщить SPIONs как диаметр магнетита 10 нм (Fe 3 O 4) ядра, окруженного 50 нм поли (молочная-со-гликолевой кислоты) (PLGA) оболочки, как описано в 8,9.
    3. Инкубируйте полученный КРВ с Spion в концентрации 200 мкг / мл клеточной культуральной среды в течение 16 ч при 37 о С.
    4. Аспирируйте клеточную культуральную среду осторожно. Осторожно промыть клетки добавлением 10 мл фосфатно-солевом буфере (PBS) в колбу, качалки и аспирации PBS.
    5. Пятно клеток с флуоресцентным красителем (CM-DiI) для визуализации в ходе экспериментов. Это делается в соответствии с инструкциями изготовителя, добавив краситель 10 мл среды культуры клеток при концентрации 5 мкл / мл и инкубацию с клетками в течение 30 мин при 37 ° С.
    6. Промыть клетки с PBS, как на стадии 4.1.4 и инкубируют с 3 мл 0,25 раствора трипсина% ЭДТА в течение 5 мин при 37 ° С доподнимать клетки из колбы.
    7. Передача клеточной суспензии в 15 мл коническую пробирку, довершение с PBS, и центрифугируют при 500 х г в течение 5 мин, с образованием осадка клеток.
    8. Повторное приостановить осадок клеток в PBS при концентрации 1-2x10 6 клеток / мл и тщательно перемешать с помощью пипетки и из конической трубе несколько раз.
  2. В-клеточных пробирке исследования
    1. Спроектировать и изготовить (например, 3D печать) простой приспособление для удержания стента чуть выше поверхности покровным стеклом.
    2. Размагнитьте стент с использованием электромагнитного degausser или намагнитить стента диаметрально или аксиально с помощью сильной неодимовый магнит.
    3. Внесите Spion меченных EOC приостановлено в PBS в блюдо с аксиально намагниченных или диаметрально намагниченные или не намагниченных стентов управления. Изображение стенты с EOC приостановлено в PBS немедленно флуоресценции с использованием перевернутой флуоресцентного микроскопа.
5. В естественных условиях исследования животных

  1. Имплантация стента
    1. Нарисуйте периферической крови от 4 здоровых свиней Йоркшир - взвешивание приблизительно 50 кг - 3 недели до имплантации стента, соответственно, и культура ЕОК, как описано в 5,7.
    2. Администрирование анти-тромбоцитов лечение, начиная за 3 дня до операции (аспирин 325 мг и клопидогрела 75 мг в день).
    3. В день имплантации стента, обезболить свиньи с внутримышечного Telazol, ксилазином и атропин (5 / 2-3 / 0,05 мг / кг соответственно), как указано в соответствующих руководящих принципов институциональных уходу за животными и использовать.
    4. Интубация и поместить свинью на ингаляции 1-2,5% изофлуран анестезии.
    5. Бритье шеи область брюшной свиньи и проводить процедуру в целом стерильных условиях.
    6. Имплантат 1 намагничивается и 1 не-намагниченной стент в правой коронарной артерии (RCA), используя стандартную технику катетеризации сердца.
      1. Catheterization животных должны выполняться квалифицированным интервенционной кардиолога. Доступ к правой сонной артерии с 9 французской оболочкой.
      2. Иглу целевой коронарной артерии и вводят йодированной контрастного вещества для получения изображения флюороскопические.
      3. Поставьте 0,014 дюйма стандартный проводник коронарной артерии в. Авансовые шар и стента с помощью этого проводник и развернуть стента в 3-3,5 мм диаметром судна.
    7. Закрывают кровоток в проксимальных RCA к имплантированных стентов с использованием избыточного проволоки баллона и доставить примерно 2х10 6 аутологичных КРВ меченного Spion суспендировали в 4 мл PBS через центральный катетер в течение 2 мин.
    8. Восстановление кровотока в RCA через 2 мин дополнительного окклюзии.
    9. Перевести животное в комнате восстановления и внимательно следить за животное, пока он не очнулся.
    10. Продолжайте вводить анти-тромбоцитов лечение (аспирин 325 мг и клопидогрела 75 мг) не создавать оперативно, пока жертвы.
  2. Стент эксплантов и гистология
    1. Усыпить животным через 7 дней после операции сначала обезболивающее животное, как описано ранее, а затем ввести внутривенно смертельную дозу фенобарбитала натрия (100 мг / кг), как за действующими нормами и правилами институциональных уходу и использованию животных.
    2. Хирургическим урожай стентированной артериальных сегментов. Исправление эксплантированной артерии в 10% формалине буфера в течение как минимум 30 мин. Оставьте образцы в буфере формалина для дальнейшего гистологического анализа.
    3. Аутсорсинг установленного образца к объектам, способных выполнять гистологию с металлических стентов. В этот обработки, образцы встраивать в метилметакрилата, поперечное сечение вида и анализировали гистологически при помощи технологии окраски Мэллори берлинской лазурью пятно на железных частиц.

Результаты

Итеративный конструкция стента на основании FEA (рис 1) показал, стент, который может обжима и расширения с главной деформации 20%, который меньше, чем 30% предельной деформации. Обжимной и тест расширение (Рисунок 2) не показали никаких признаков разрушения. Фотографии ?...

Обсуждение

Мы разработали магнитную стента, который может функционировать в качестве голой металлических стентов и может привлечь Spion меченных эндотелиальные клетки. В предыдущих исследованиях с участием магнитных стентов, исследователи использовали никель покрытием коммерческие стенты и кат...

Раскрытие информации

The authors declare that they have no competing financial interests.

Благодарности

The authors thank Tyra Witt, Cheri Mueske, Brant Newman and Dr. Peter J. Psaltis, MBBS, PhD for their valuable contributions. This study was financially supported by European Regional Development Fund – FNUSA-ICRC (No. CZ.1.05/1.100/02.0123), American Heart Association Scientist Development Grant (AHA #06-35185N), National Institutes of Health (T32HL007111) and The Grainger Innovation Fund – Grainger Foundation.

Материалы

NameCompanyCatalog NumberComments
2205 Stainless steelCarpenter Technology CorporationRound bar stock material
AbaqusDassault systemsSoftware
AtropinePrescription drug.
ClopidogrelCommercial name: Plavix. Prescription drug.
CM-DiILife TechnologiesV-22888Molecular Probes, Eugene, OR
Endothelial growth medium-2LonzaCC-3162
Hand Held Crimping toolBlockwise engineeringM1-RMC
Hydrochloric acid (HCl)Sigma AldrichMFCD00011324CAUTION: wear proptective equipment and handle under fume hood
Isoflurane anesthesiaPiramal Critical Care, Inc. 
Ethyl alcoholSigma AldrichMFCD00003568
NdFeB magnet 2" Dia x 1" thickAmazing magnetsD1000PAxially magnetized disc magnet with poles on flat faces
Over-The-Wire trifold balloonAny commercially available OTW trifold balloon can be used
Phosphate buffered salineLife Technologies10010-023Commonly known as PBS
Sodium Bicarbonate (NaHCO3)Sigma AldrichMFCD00003528
Sodium pentobarbitalZoetisCommercial Name: Sleepaway (26%), FatalPlus, Beuthanasi.  Controlled substance to be ordered only by licensed veternarian
SolidWorksDassault systemsSoftware
SpinTJ-020 micro sensorMicroMagneitcs Sensible SolutionsLong probe STJ-020 microsensor
SPIONMayo ClinicNanoparticles synthesized internally (Ref: Lee, S. J. et al. Nanoparticles of magnetic ferric oxides encapsulated with poly(D,L latide-co-glycolide) and their applications to magnetic resonance imaging contrast agent. J Magn Magn Mater 272, 2432-2433, doi:DOI 10.1016/j.jmmm.2003.12.416 (2004))
TelazolZoetisControlled substance to be ordered only by licensed veternarian
Trypsin EDTALife Technologies25200-056Gibco, Grand Island, NY
XylazineBayer Animal HealthCommercial name: Rompun. Controlled sunstance to be ordered only by a licensed veternarian

Ссылки

  1. Garg, S., Serruys, P. W. Coronary stents: current status. J Am Coll Cardiol. 56, 1-42 (2010).
  2. Austin, D., et al. Drug-eluting stents versus bare-metal stents for off-label indications: a propensity score-matched outcome study. Circ Cardiovasc Interv. 1 (1), 45-52 (2008).
  3. Polyak, B., et al. High field gradient targeting of magnetic nanoparticle-loaded endothelial cells to the surfaces of steel stents. P Natl Acad Sci USA. 105 (2), 698-703 (2008).
  4. Tassiopoulos, A. K., Greisler, H. P. Angiogenic mechanisms of endothelialization of cardiovascular implants: a review of recent investigative strategies. J Biomat Sci-Polym E. 11 (11), 1275-1284 (2000).
  5. Pislaru, S. V., et al. Magnetic forces enable rapid endothelialization of synthetic vascular grafts. Circulation. 114, I314-I318 (2006).
  6. Uthamaraj, S., et al. Design and validation of a novel ferromagnetic bare metal stent capable of capturing and retaining endothelial cells). Ann Biomed Eng. 42 (12), 2416-2424 (2014).
  7. Gulati, R., et al. Diverse origin and function of cells with endothelial phenotype obtained from adult human blood. Circ Res. 93 (11), 1023-1025 (2003).
  8. Lee, S. J., et al. Nanoparticles of magnetic ferric oxides encapsulated with poly(D,L latide-co-glycolide) and their applications to magnetic resonance imaging contrast agent. J Magn Magn Mater. 272 (3 Special Issue), 2432-2433 (2004).
  9. Lee, S. J., et al. Magnetic enhancement of iron oxide nanoparticles encapsulated with poly(D,L-latide-co-glycolide). Colloid Surface A. (1-3), 255-251 (1016).
  10. Forbes, Z. G., et al. Locally targeted drug delivery to magnetic stents for therapeutic applications. Computer Architectures for Machine Perception, 2003 IEEE International Workshop on. , 1-6 (2003).
  11. Rathel, T., et al. Magnetic Stents Retain Nanoparticle-Bound Antirestenotic Drugs Transported by Lipid Microbubbles. Pharm Res-Dordr. 29 (5), 1295-1307 (2012).
  12. Gunn, J., Cumberland, D. Stent coatings and local drug delivery - state of the art. Eur Heart J. 20 (23), 1693-1700 (1999).
  13. Lu, A., Jia, G., Gao, G., Wang, X. The effect of magnetic stent on coronary restenosis after percutaneous transluminal coronary angioplasty in dogs. Chin Med J (Engl. 114 (8), 821-823 (2001).
  14. Kempe, H., Kempe, M. The use of magnetite nanoparticles for implant-assisted magnetic drug targeting in thrombolytic therapy. Biomaterials. 31 (36), 9499-9510 (2010).
  15. Chorny, M., et al. Targeting stents with local delivery of paclitaxel-loaded magnetic nanoparticles using uniform fields. P Natl Acad Sci USA. 107 (18), 8346-8351 (2010).
  16. Polyak, B., Friedman, G. Magnetic targeting for site-specific drug delivery: applications and clinical potential. Expert Opin Drug Del. 6 (1), 53-70 (2009).
  17. Liu, J. Y., et al. Magnetic stent hyperthermia for esophageal cancer: an in vitro investigation in the ECA-109 cell line. Oncol Rep. 27 (3), 791-797 (2012).
  18. Gunn, J., Cumberland, D. Does stent design influence restenosis. Eur Heart J. 20 (14), 1009-1013 (1999).
  19. Aviles, M. O., et al. In vitro study of ferromagnetic stents for implant assisted-magnetic drug targeting. J Magn Magn Mater. 311 (1), 306-311 (2007).
  20. Mardinoglu, A., et al. Theoretical modelling of physiologically stretched vessel in magnetisable stent assisted magnetic drug targeting application. J Magn Magn Mater. 323 (3-4), 324-329 (2011).
  21. Liu, Z. Y., et al. Stress corrosion cracking of 2205 duplex stainless steel in H2S-CO2 environment. J Mater Sci. 44 (16), 4228-4234 (2009).
  22. Alverez-Armas, I., Degallaix-Moreuill, S. . Duplex stainless steels. , (2009).
  23. Tefft, B. J., et al. Magnetizable Duplex Steel Stents Enable Endothelial Cell Capture. Ieee T Magn. 49 (1), 463-466 (2013).
  24. Pelton, A. R., et al. Fatigue and durability of Nitinol stents. J Mech Behav Biomed Mater. 1 (2), 153-164 (2008).
  25. Knowles, M., et al. Finite element analysis of a balloon-expandable stent and superior mesenteric arterial wall interaction. J Vasc Surg. 60 (6), 1722-1723 (2014).
  26. Veeram Reddy, S. R., et al. A novel biodegradable stent applicable for use in congenital heart disease: bench testing and feasibility results in a rabbit model. Catheter Cardiovasc Interv. 83 (3), 448-456 (2014).
  27. Shellock, F. G. MR imaging of metallic implants and materials: a compilation of the literature. AJR Am J Roentgenol. 151 (4), 811-814 (1988).
  28. Lopic, N., et al. Quantitative determination of magnetic force on a coronary stent in MRI. J Magn Reson Imaging. 37 (2), 391-397 (2013).

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на использование текста или рисунков этого JoVE статьи

Запросить разрешение

Смотреть дополнительные статьи

1032 205

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Исследования

Образование

О JoVE

Авторские права © 2025 MyJoVE Corporation. Все права защищены