JoVE Logo
АВТОРЫ
СВЯЖИТЕСЬ С НАМИ

Войдите в систему

Для просмотра этого контента требуется подписка на Jove Войдите в систему или начните бесплатную пробную версию.

В этой статье

  • Резюме
  • Аннотация
  • Введение
  • протокол
  • Результаты
  • Обсуждение
  • Раскрытие информации
  • Благодарности
  • Материалы
  • Ссылки
  • Перепечатки и разрешения

Резюме

Это видео статье подробно простой в методологии естественных условиях , которые могут быть использованы для систематического и эффективного характеризуют компоненты сложных сигнальных путей и регуляторных сетей во многих беспозвоночных эмбрионов.

Аннотация

Remarkably few cell-to-cell signal transduction pathways are necessary during embryonic development to generate the large variety of cell types and tissues in the adult body form. Yet, each year more components of individual signaling pathways are discovered, and studies indicate that depending on the context there is significant cross-talk among most of these pathways. This complexity makes studying cell-to-cell signaling in any in vivo developmental model system a difficult task. In addition, efficient functional analyses are required to characterize molecules associated with signaling pathways identified from the large data sets generated by next generation differential screens. Here, we illustrate a straightforward method to efficiently identify components of signal transduction pathways governing cell fate and axis specification in sea urchin embryos. The genomic and morphological simplicity of embryos similar to those of the sea urchin make them powerful in vivo developmental models for understanding complex signaling interactions. The methodology described here can be used as a template for identifying novel signal transduction molecules in individual pathways as well as the interactions among the molecules in the various pathways in many other organisms.

Введение

Генные регуляторные сети (GRNs) и пути передачи сигналов устанавливают пространственную и временную экспрессию генов во время эмбрионального развития, которые используются для создания плана взрослого животного тела. Cell-к-клетке пути передачи сигналов являются важными компонентами этих регуляторных сетей, предоставляя средства, с помощью которых клетки взаимодействуют. Эти клеточные взаимодействия установить и уточнить экспрессию регуляторных генов и дифференцировки в и среди различных территорий во время эмбриогенеза 1, 2. Взаимодействие между секретируемых внеклеточных модуляторов (лиганды, антагонисты), рецепторов и ко-рецепторов контролируют деятельность путей передачи сигнала. Ассортимент внутриклеточных молекул трансдуцирует эти входы, приводящие к изменению экспрессии генов, деление, и / или формы клетки. В то время как многие из ключевых молекул, используемых при внеклеточных и внутриклеточных уровней в основных путей являютсяИзвестно, что это неполное знание обусловлено в значительной степени сложности отдельных сигнальных путей. Кроме того, различные сигнальные пути часто взаимодействуют друг с другом либо положительно , либо отрицательно на внеклеточный, внутриклеточный и транскрипционные уровни 3, 4, 5, 6. Важно отметить, что основные компоненты путей передачи сигнала являются высоко консервативными у всех видов многоклеточных, и, что примечательно, большинство основных сигнальных путей , часто выполняют сходные функции развития у многих видов при сравнении организмов от тесно связанной с фил , в частности , 7, 8, 9, 10, 11.

Изучение сигнализации в процессе развития является сложной задачей в любом организме, и тамнесколько серьезных проблем в изучении сигнальных путей в большинстве моделей вторичноротые (позвоночных, беспозвоночных хордовых, полухордовых и иглокожих): 1) У позвоночных существует большое число возможных лиганда и рецептора / со-модуляторов взаимодействий, внутриклеточные молекулы трансдукции, а также потенциальные взаимодействия между различными сигнальными путями из - за сложности генома 12, 13, 14; 2) Комплекс морфологии и морфогенетические движения у позвоночных часто делают его более трудным для интерпретации функциональных взаимодействий внутри и среди путей передачи сигнала; 3) Анализы в большинстве не-иглокожих видов беспозвоночных вторичноротые модели ограничены короткими окнами беременности, за исключением некоторых видов оболочников 15, 16.

эмбрионе морского ежа имеет несколько из указанных выше ограничений , и предлагает множество уникальных качеств для выполнения детального анализа путей передачи сигнала в естественных условиях. К ним относятся следующие: 1) Относительная простота морского ежа генома значительно уменьшает количество возможных лигандов, рецепторов / корецептором и внутриклеточной молекулы трансдукции взаимодействиях 17; 2) GRNs контролирующие спецификации и кучность стрельбы из зародышевых листков и основных эмбриональных осей хорошо установлены в морских ежей эмбрионов, помогая в понимании нормативного контекста клеток / территории приема сигналов 18, 19; 3) Многие пути передачи сигналов могут быть изучены между ранними спайности и гаструлы , когда эмбрионы состоят из одного многослойного эпителия, морфология которых легче анализировать; 4) Молекулы связаныd сигнальных путей в морских ежей легко манипулировать; 5) Многие морские ежи Gravid от 10 до 11 месяцев в год (например , Strongylocentrotus purpuratus и Lytechinus variegatus).

Здесь мы представляем метод системно и эффективно характеризуют компоненты сигнальных путей, которые определяют и модели территорий, в морских ежей эмбрионов, чтобы проиллюстрировать преимущества, которые несколько беспозвоночные модельные системы предлагают в изучении сложных молекулярных механизмов.

протокол

1. Стратегия Высокая пропускная способность Morpholino Design

  1. Идентифицировать ген (ы) интерес (например , ген подход кандидатов, цис-регуляторными анализ, Секвенирование РНК и / или протеомические дифференциальные экраны).
  2. Используйте геномную, транскриптомики и данные экспрессии генов , доступных на часто обновляемых веб - сайтов (например , SpBase http://www.echinobase.org 20 и С. purpuratus Геном поиска HTTP: ///urchin.nidcr.nih.gov/blast/index .html), чтобы определить, что пространственно-временной профиль экспрессии перекрывается с механизмом развития в вопросе. Если ни одно выражение данные не доступны, а затем генерировать КПЦР праймеры и / или антисмысловой на месте зонд , чтобы оценить характер экспрессии генов.
  3. После определения пространственной и временной характер экспрессии, получение ДНК-последовательность из геномного веб-сайтов.
    1. Для создания перевода блокировки морфолино олигонуклеотиды, получим последовательность ое 5 'ип переведенный область (5' UTR) непосредственно вверх по течению от инициирующий кодон из последовательности тегов выражается (EST) баз данных , доступных на SpBase или S. purpuratus Геном поиска сайтов. Если эта информация недоступна для интересующего гена, а затем выполнить 5 'RACE.
    2. Для того, чтобы разработать сращивания-блокировочные морфолино, поиск геномной последовательности , включая экзонов и интронов с помощью инструмента эшафот BLASTN в SpBase или S. purpuratus Геном инструмент поиска.
  4. Использование олигонуклеотид проектирования сайта http://oligodesign.gene-tools.com с целью разработки желаемой последовательности оснований 25 пара морфолиновое.
    1. Для поступательно-блокирующие морфолино, используют последовательность мРНК из 5'-3 'в качестве источника поступательной последовательности-мишени. Включить последовательность 5'-UTR (приблизительно 70 нуклеотидов выше от сайта инициации транскрипции) плюс 25 основы кодирующей области (вниз по течению от сайта инициации) с стартовым кодоном заметному Wiй скобка (ГПТ).
    2. Для сращивания блокировки морфолино, выберите интрон-экзон или граничную последовательность экзон-интрон и включают 50 оснований (25 оснований последовательности экзона и 25 оснований последовательности интронов) вокруг пограничных областей. Сканирование генома с последовательностью морфолино, чтобы проверить, что последовательность уникальна.

2. Микроинъекция морфолино Олигонуклеотиды

  1. Подготовьте 3 мМ исходные растворы морфолино олигонуклеотидов путем добавления 100 мкл нуклеазы без воды в пузырек морфолино 300 нмоль.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Не используйте DEPC очищенную воду для повторной суспензии, поскольку диэтилпирокарбонат может привести к повреждению морфолино.
  2. Для первой восстанавливающей спином вниз во флакон, содержащий раствор запас олигонуклеотида в течение 30 секунд на полной скорости (14 000 - 16 000 XG), кратко вихря, нагревают при 65 ° С в течение от 5 до 10 мин, кратко вихря, и держать морфолиновое запас в комнате температура в течение не менее 1 ч. Исходный раствор Morpholino s сохраняются от -20 ° С до + 4 ° С.
  3. Готовят инъекционный раствор, содержащий морфолино олигонуклеотиды в нужной концентрации. Этот раствор обычно содержит 20% глицерина или 125 мМ KCl в качестве носителя и 15% FITC-декстрана (флуоресцеинизотиоцианат декстран 10000 МВт 2,5 мг мкл исходного раствора /). FITC-декстран и другие флуоресцентные декстрана конъюгаты, которые обычно используются для идентификации инъецированные эмбрионы с помощью эпифлуоресцентной микроскопии. Растворы для инъекций Хранить при -20 ° C.
  4. Нагрейте раствор морфолино при 65 ° C в блоке тепла или водяной бане в течение по крайней мере 2 - 5 мин.
  5. Кратко закрутить решение морфолиновое в течение 30 секунд на полной скорости (14 000 - 16 000 XG), вихрь в течение 1 мин и центрифуге при полной скорости (14 000 - 16 000 XG) в течение не менее 10 мин.
  6. Загрузите иглы для инъекций с раствором морфолино. Для детального протокола микроинъекции смотрите Степичева и Song, 2014 21 и возгласами и Ettensohn, 2004"> 22.

3. Закрепление и В Ситу протоколе на 24 ч после оплодотворения (ФВЧ) в С. purpuratus Эмбрионы

Примечание: Этот протокол изменяется от Аренас-Мена и др. , 2000 23 и Сетхи и др. , 2014 24.

  1. фиксация
    1. Добавьте несколько капель закрепителя (смотри ниже) в лунки, содержащие эмбрионы, осторожно перемешать с помощью пипетки, и дать им возможность осесть. Удалите раствор фиксаторный, а затем смешать эмбрионов с двумя дополнительными 180 мкл промывками закрепителя.
      Примечание: Важно тщательно перемешать эмбрионов во время мытья осторожно пипеткой вверх и вниз несколько раз. Несоблюдение этого правила может привести к снижению отношения сигнал-шум.
    2. Оставьте эмбрионов, чтобы зафиксировать во второй стирки фиксатором в течение 50 мин до 1 ч при комнатной температуре (RT) в 4% электронная микроскопия класса параформальдегида, состоящей из 10 мМ MOPS, рН 7,0, 0,1% твин-20, и искусственные seawateг (ASW). Сделать это решение каждый раз свежее для достижения наилучших результатов. Кроме того, для простоты и практичности эмбрионов зафиксированы в 96-луночные планшеты.
      1. Для получения 20 мл закрепляющего использованием 5 мл 16% параформальдегида, 15 мл ASW, 200 мкл 1 М MOPS рН 7,0, и 20 мкл Tween-20.
    3. Промыть 5 раз при комнатной температуре в 180 мкл MOPS промывочный буфер, состоящий из 0,1 М MOPS, рН 7,0, 0,5 М NaCl и 0,1% Tween-20 в течение не менее 5 мин или до эмбрионов падают на дно колодца. Опять же, важно тщательно перемешать эмбрионов в стиральный буфер, осторожно пипеткой вверх и вниз несколько раз. МОПС промывочный буфер может быть использован в течение 2-х дней при хранении при 4 ° С.
      1. Для 40 мл MOPS мыть использование буфера 4 мл 1 М MOPS рН 7,0, 4 мл 5 М NaCl, 32 мл дН 2 O и 40 мкл Tween-20.
      2. Фиксированные эмбрионы могут храниться при температуре 4 ° С в течение 2 -х дней.
        ПРИМЕЧАНИЕ: При хранении фиксированных эмбрионов дольше, а затем добавить 0,2% азида натрия в MOPS промывочный буфер для предотвращения роста бактерий.
  2. Pre-гибридизация
    1. Аспирата МОПС буфер для промывки и добавляют 180 мкл в соотношении 2: 1 MOPS промывочного буфера в буфере для гибридизации, смешайте эмбрионов в раствор осторожно пипеткой несколько раз, и инкубируют в течение по меньшей мере 20 мин при комнатной температуре. Гибридизация буфер состоит из 70% формамид, 0,1 М MOPS, рН 7,0, 0,5 М NaCl, 1 мг / мл БСА и 0,1% твина-20.
      1. Для получения 40 мл буфера гибридизации использованием 4 мл 1 М MOPS рН 7,0, 4 мл 5 М NaCl, 4 мл дН 2 O, 0,04 г БСА и 40 мкл Tween-20. Хорошо перемешать встряхиванием, добавьте 28 мл формамида, и вихрь снова.
    2. Удалите соотношении 2: 1 из МОПС моют и гибридизацию буферы и добавьте 180 мкл соотношении 1: 2 MOPS промывочного буфера в буфере для гибридизации, смешайте эмбрионы в раствор, и инкубируют в течение по меньшей мере 20 мин при комнатной температуре.
    3. До гибридизации с зондом осторожно перемешать эмбрионов в 100 - 150 мкл буфера гибридизации. Инкубируйте эмбрионов при 50 ° С в течение по меньшей мере 1час
      Примечание: Инкубация эмбрионов на ночь является приемлемым. Перед инкубацией, герметизации скважины с клейким листом, чтобы предотвратить испарение.
  3. гибридизация
    1. В отдельную пробирку добавляют 0,1 - 0,3 нг / мкл зонда и 500 мкг / мл дрожжевой тРНК в гибридизационного буфера, а затем вихрь осторожно, чтобы создать раствор зонда. Дрожжи тРНК к раствору добавляют зонд, чтобы уменьшить неспецифическое связывание антисмысловой зонда. Предварительный нагрев этот раствор до 50 ° С и аспирата гибридизационного буфера.
    2. Смешать предварительно гибридизовали эмбрионов в 100 мкл раствора зонда, печать с клейким листом, и гибридизуются при 50 ° С в течение 2 -х до 7 дней в зависимости от зонда (The foxq2 зонд можно инкубировать в течение 2- х дней).
      Примечание: время инкубации будет меняться в зависимости от зонда. Некоторые гены, выраженные на низких уровнях требуют до 7-дневной инкубации. 96-луночные планшеты могут быть помещены в коробку влажности в качестве страховки от испарения, если на adhesАйв лист не может запечатать должным образом.
    3. Промыть 5 раз при 50 ° С с 180 мкл свежеприготовленных MOPS промывочный буфер в общей сложности 3 ч. Затем промыть 3 раза (15 мин) с 180 мкл MOPS промывочный буфер при комнатной температуре. Не забудьте смешать эмбрионов в Промывочный буфер каждый раз, осторожно пипеткой несколько раз.
  4. Антитело Инкубационный
    1. Аспирата МОПС буфер для промывки и смешайте эмбрионов в 180 мкл блокирующего буфера, содержащего 10% нормальной сывороткой Овец и 5 мг / мл БСА в MOPS буфере для промывки и инкубировать в течение не менее 45 мин при комнатной температуре или температуре 4 ° С в течение ночи.
    2. Удалить блокирующий буфер и затем смешать эмбрионы в блокирующем буфере, содержащем 1: 1500 разведение щелочной фосфатазы конъюгированных с анти-дигоксигенином антитела, разведенного в блокирующем буфере. Инкубируют в течение ночи при комнатной температуре в герметично закрытой пластиной, чтобы избежать испарения. ПРИМЕЧАНИЕ: Не оставляйте антитела на дольше, чем в течение ночи.
    3. Вымойте эмбрионов 6 раз (5 мин или до тех пор, пока падение эмбрионов) в MOPS промывочный буфер при комнатной температуре. Эмбрионы могутхраниться в течение ночи при температуре 4 ° С.
  5. В месте развития
    1. Промыть эмбрионы 3 раза (10 мин) при комнатной температуре с свежеприготовленный рН 9,5 буфера , состоящего из 0,1 М Трис , рН 9,5, 100 мМ NaCl, 50 мМ MgCl 2, 1 мМ Левамизол, и 0,1% твина-20.
      1. Для получения 20 мл рН 9,5 буфере использованием 2 мл 1 М Трис рН 9,5, 400 мкл 5 М NaCl, 1 мл 1 М MgCl 2, 20 мкл твин-20, 16.6 мл дН 2 O, и 0,0048 г левамизол.
    2. Инкубируйте эмбрионов при 37 ° С в буфере для окрашивания защищенном от света месте. Окрашивание буфер состоит из 10% диметилформамидом, 4,5 мкл / мл 4-Нитро тетразолия хлорида (НСТ), и 3,5 мкл / мл 5-бром-4-хлор-3-индолил-фосфат (BCIP) в свежеприготовленной рН 9,5 буфере ,
      1. Для получения 1 мл окрашивающего буфера используют 100 мкл диметилформамидом, 4,5 мкл NBT и 3,5 мкл BCIP.
    3. Остановить щелочную реакцию фосфатазы путем промывки 3 до 5 раз в MOPS промывочный буфер. Реакцию Wiтый foxq2 зонд обычно занимает от 30 минут до 1 часа. Некоторые зонды, возможно, потребуется инкубацию в течение ночи при комнатной температуре либо или 4 ° С.
    4. Смешайте эмбрионы в раствор 70% стирке швабры и 30% глицерина. Глицерин обеспечивает показатель преломления, необходимый для микроскопии. Эмбрионы могут храниться в этом растворе в течение нескольких недель. Уплотнение пластин с пластиковой парафина для предотвращения испарения.
  6. Подготовка слайдов и захват изображения
    1. Подготовить слайд путем размещения трех небольших полос двухсторонней ленты в треугольник с небольшими промежутками между полосами на слайд.
    2. Перенос эмбрионов в 70% стирке швабры и 30% раствора глицерина в центре треугольника и покрывают покровным стеклом.
    3. Печать покровное путем нанесения слоя лака для ногтей по краям покровного стекла.
    4. Захват изображений с использованием соединения светового микроскопа с объективом 20Х и подключенной камеры.

Результаты

В эмбрионе морского ежа мы показали , что 3 -х различных Wnt сигнальных ветвей (Wnt / β-катенин, Wnt / JNK и Wnt / PKC) 4, 25 взаимодействуют с образованием Wnt сигнальной сети , которая управляет передне-задней (AP) кучность. Одним из наиболее важных следст?...

Обсуждение

Методология, представленная здесь приведен пример, который иллюстрирует силу использования эмбрионов с меньшим количеством геномной и морфологической сложности, чем позвоночных животных, чтобы понять сигнальные пути трансдукции и GRNs, регулирующие фундаментальные механизмы развити...

Раскрытие информации

The authors have nothing to disclose.

Благодарности

We would like to thank Dr. Robert Angerer for his careful reading and editing of the manuscript. NIH R15HD088272-01 as well as the Office of Research and Development, and Department of Biological Sciences at Mississippi State University provided support for this project to RCR.

Материалы

NameCompanyCatalog NumberComments
Translational-blocking morpholino and/or splice-blocking morpholinoGene Tools LLCCustomizedMore information at www.gene-tools.com
GlycerolInvitrogen15514-011
FITC (dextran fluorescein isothiocyanate)Invitrogen, Life TechnologiesD1821Make 25 mg/mL stock solution
Paraformaldehyde 16% solution EM GradeElectron Microscopy Sciences15710
MOPSSigma AldrichM1254-250G
Tween-20Sigma Aldrich23336-0010
FormamideSigma Aldrich47671-1L-F
Yeast tRNAInvitrogen15401-029
Normal Goat SerumSigma AldrichG9023-10mL
Alkaline Phosphatase-conjugated anti-digoxigenin antibodyRoche11 093 274 910
Tetramisole hydrochloride (levamisole)Sigma AldrichL9756-5G
Tris Base UltraPureResearch Products Internationall Corp56-40-6
Sodium ChlorideFisher ScientificBP358-10
Magnesium chlorideSigma Aldrich7786-30-3
BCIP (5-Bromo-4-Chloro-3-indolyl-phosphateRoche11 383 221 001
4 Nitro blue tetrazolium chloride (NBT)Roche11 383 213 001
Dimethyl FormamideSigma AldrichD4551-500mL
Potassium ChlorideSigma AldrichP9541-5KG
Sodium BicarbonateSigma AldrichS5761-500G
Magnesium SulfateSigma AldrichM7506-2KG
Calcium ChlorideSigma AldrichC1016-500G

Ссылки

  1. Erwin, D. H., Davidson, E. H. The evolution of hierarchical gene regulatory networks. Nature reviews. Genetics. 10, 141-148 (2009).
  2. Peter, I. S., Davidson, E. H. Evolution of gene regulatory networks controlling body plan development. Cell. 144, 970-985 (2011).
  3. Borggrefe, T., et al. The Notch intracellular domain integrates signals from Wnt, Hedgehog, TGFbeta/BMP and hypoxia pathways. Biochimica et biophysica acta. 1863, 303-313 (2016).
  4. Range, R. C., Angerer, R. C., Angerer, L. M. Integration of canonical and noncanonical Wnt signaling pathways patterns the neuroectoderm along the anterior-posterior axis of sea urchin embryos. PLoS Biol. 11, e1001467 (2013).
  5. Cleary, M. A., van Osch, G. J., Brama, P. A., Hellingman, C. A., Narcisi, R. FGF, TGFbeta and Wnt crosstalk: embryonic to in vitro cartilage development from mesenchymal stem cells. Journal of tissue engineering and regenerative medicine. 9, 332-342 (2015).
  6. Lapraz, F., et al. RTK and TGF-beta signaling pathways genes in the sea urchin genome. Dev Biol. 300, 132-152 (2006).
  7. Pires-daSilva, A., Sommer, R. J. The evolution of signalling pathways in animal development. Nature reviews. Genetics. 4, 39-49 (2003).
  8. Sethi, A. J., Wikramanayake, R. M., Angerer, R. C., Range, R. C., Angerer, L. M. Sequential signaling crosstalk regulates endomesoderm segregation in sea urchin embryos. Science. 335, 590-593 (2012).
  9. Range, R. Specification and positioning of the anterior neuroectoderm in deuterostome embryos. Genesis. 52, 222-234 (2014).
  10. Petersen, C. P., Reddien, P. W. Wnt signaling and the polarity of the primary body axis. Cell. 139, 1056-1068 (2009).
  11. Lapraz, F., Haillot, E., Lepage, T. A deuterostome origin of the Spemann organiser suggested by Nodal and ADMPs functions in Echinoderms. Nature communications. 6, 8434 (2015).
  12. Kikuchi, A., Yamamoto, H., Sato, A. Selective activation mechanisms of Wnt signaling pathways. Trends in cell biology. 19, 119-129 (2009).
  13. Hogan, B. L. Bone morphogenetic proteins: multifunctional regulators of vertebrate development. Genes Dev. 10, 1580-1594 (1996).
  14. Houart, C., et al. Establishment of the telencephalon during gastrulation by local antagonism of Wnt signaling. Neuron. 35, 255-265 (2002).
  15. Bertrand, S., Escriva, H. Evolutionary crossroads in developmental biology: amphioxus. Development. 138, 4819-4830 (2011).
  16. Rottinger, E., Lowe, C. J. Evolutionary crossroads in developmental biology: hemichordates. Development. 139, 2463-2475 (2012).
  17. Genome Sequencing Sea Urchin, C., et al. The genome of the sea urchin Strongylocentrotus purpuratus. Science. 314, 941-952 (2006).
  18. Ben-Tabou de-Leon, S., Su, Y. H., Lin, K. T., Li, E., Davidson, E. H. Gene regulatory control in the sea urchin aboral ectoderm: spatial initiation, signaling inputs, and cell fate lockdown. Dev Biol. 374, 245-254 (2013).
  19. Saudemont, A., et al. Ancestral regulatory circuits governing ectoderm patterning downstream of Nodal and BMP2/4 revealed by gene regulatory network analysis in an echinoderm. PLoS Genet. 6, e1001259 (2010).
  20. Cameron, R. A., Samanta, M., Yuan, A., He, D., Davidson, E. SpBase: the sea urchin genome database and web site. Nucleic Acids Res. 37, D750-D754 (2009).
  21. Stepicheva, N. A., Song, J. L. High throughput microinjections of sea urchin zygotes. Journal of visualized experiments : JoVE. , e50841 (2014).
  22. Cheers, M. S., Ettensohn, C. A. Rapid microinjection of fertilized eggs. Methods in cell biology. 74, 287-310 (2004).
  23. Arenas-Mena, C., Cameron, A. R., Davidson, E. H. Spatial expression of Hox cluster genes in the ontogeny of a sea urchin. Development. , 4631-4643 (2000).
  24. Sethi, A. J., Angerer, R. C., Angerer, L. M. Multicolor labeling in developmental gene regulatory network analysis. Methods in molecular biology. , 249-262 (2014).
  25. Wikramanayake, A. H., Huang, L., Klein, W. H. beta-Catenin is essential for patterning the maternally specified animal-vegetal axis in the sea urchin embryo. Proc Natl Acad Sci U S A. 95, 9343 (1998).
  26. Yaguchi, S., Yaguchi, J., Angerer, R. C., Angerer, L. M. A Wnt-FoxQ2-nodal pathway links primary and secondary axis specification in sea urchin embryos. Dev Cell. 14, 97-107 (2008).
  27. Molina, M. D., de Croze, N., Haillot, E., Lepage, T. Nodal: master and commander of the dorsal-ventral and left-right axes in the sea urchin embryo. Curr Opin Genet Dev. 23, 445-453 (2013).
  28. Range, R. C., Glenn, T. D., Miranda, E., McClay, D. R. LvNumb works synergistically with Notch signaling to specify non-skeletal mesoderm cells in the sea urchin embryo. Development. 135, 2445-2454 (2008).
  29. Range, R., et al. Cis-regulatory analysis of nodal and maternal control of dorsal-ventral axis formation by Univin, a TGF-beta related to Vg1. Development. 134, 3649-3664 (2007).
  30. Warner, J. F., Miranda, E. L., McClay, D. R. Contribution of hedgehog signaling to the establishment of left-right asymmetry in the sea urchin. Dev Biol. 411, 314-324 (2016).
  31. Rottinger, E., et al. FGF signals guide migration of mesenchymal cells, control skeletal morphogenesis [corrected] and regulate gastrulation during sea urchin development. Development. 135, 353-365 (2008).
  32. Warner, J. F., McCarthy, A. M., Morris, R. L., McClay, D. R. Hedgehog signaling requires motile cilia in the sea urchin. Mol Biol Evol. 31, 18-22 (2014).
  33. Technau, U., Steele, R. E. Evolutionary crossroads in developmental biology. Cnidaria. Development. 138, 1447-1458 (2011).
  34. Yaguchi, J., Takeda, N., Inaba, K., Yaguchi, S. Cooperative Wnt-Nodal Signals Regulate the Patterning of Anterior Neuroectoderm. PLoS Genet. 12, e1006001 (2016).
  35. Duboc, V., Rottinger, E., Besnardeau, L., Lepage, T. Nodal and BMP2/4 signaling organizes the oral-aboral axis of the sea urchin embryo. Dev Cell. 6, 397-410 (2004).
  36. Bradham, C. A., et al. Chordin is required for neural but not axial development in sea urchin embryos. Dev Biol. 328, 221-233 (2009).
  37. Su, Y. H. Gene regulatory networks for ectoderm specification in sea urchin embryos. Biochimica et biophysica acta. 1789, 261-267 (2009).
  38. Lin, C. Y., Su, Y. H. Genome editing in sea urchin embryos by using a CRISPR/Cas9 system. Dev Biol. 409, 420-428 (2016).

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на использование текста или рисунков этого JoVE статьи

Запросить разрешение

Смотреть дополнительные статьи

120Wnt

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Конфиденциальность

Условия эксплуатации

Политика

СВЯЖИТЕСЬ С НАМИ

РЕКОМЕНДОВАТЬ БИБЛИОТЕКЕ

НОВОСТИ JoVE

Исследования

Образование

АВТОРЫ

Библиотекарь

О JoVE

Авторские права © 2025 MyJoVE Corporation. Все права защищены