JoVE Logo
АВТОРЫ
СВЯЖИТЕСЬ С НАМИ

Войдите в систему

Для просмотра этого контента требуется подписка на Jove Войдите в систему или начните бесплатную пробную версию.

В этой статье

  • Резюме
  • Аннотация
  • Введение
  • протокол
  • Результаты
  • Обсуждение
  • Раскрытие информации
  • Благодарности
  • Материалы
  • Ссылки
  • Перепечатки и разрешения

Резюме

В этом протоколе, клетке протеинкиназа A (PKA), bioeffector трансдукции сигнала сотовой, иммобилизованных на поверхности наночастиц, microinjected в цитозоль и активированную upconverted УФ света от ближней ИК-области спектра (NIR) облучения, вызывая вниз по течению стресс волокна дезинтеграции в цитозоль.

Аннотация

Upconversion наночастиц (UCNP)-опосредованной photoactivation представляет собой новый подход для удаленного управления bioeffectors с гораздо меньше Фототоксичность и глубокое проникновение в ткани. Однако существующие измерительные приборы на рынке не легко совместимы с приложением upconversion. Таким образом изменение коммерчески доступных инструмент имеет важное значение для этого исследования. В этой статье мы сначала проиллюстрировать изменения обычных fluorimeter и флуоресценции Микроскоп, чтобы сделать их совместимыми для фотонных upconversion экспериментов. Затем мы опишем синтез возле ИК-области спектра (NIR)-срабатывает клетке протеин киназы A каталитического субъединицы (PKA) иммобилизованных на UCNP комплекс. Сообщается также о параметры микроинъекции и НИР photoactivation процедур. После того, как клетке PKA-UCNP microinjected в REF52 фибробластов клетки, NIR облучения, который значительно превосходит обычные УФ облучения, эффективно вызывает PKA путь трансдукции сигнала в живых клетках. Кроме того положительной и отрицательной контроля эксперименты подтверждают, что PKA-индуцированной путь, ведущий к дезинтеграции стресс волокон специально инициируется NIR облучения. Таким образом использование белков модифицированных UCNP обеспечивает новаторский подход к удаленно контролировать свет модулированных клеточных экспериментов, в которых необходимо избегать прямого воздействия ультрафиолета.

Введение

Химически модифицированных белков, которые могут быть photoactivated (например, белки PKA клетке) были разработаны как новые поля в химической биологии неинвазивно манипулировать межклеточных биохимические процессы1,2 ,3. С помощью света, как стимул обеспечивает отличное разрешение пространственно-временных при активации эти клетке белков. Однако УФ света может привести к нежелательным морфологические изменения, апоптоз и повреждение ДНК клеток4,5. Таким образом последние события в дизайн photocaging групп сосредоточена на включение photocleavage на больше длины волны или два Фотон возбуждения для уменьшения Фототоксичность, а также увеличить проникновение глубокой ткани6,7. Арретирование групп, которые отвечают больше длины волны, позволяя нам выбрать подходящий uncaging волн (т.е., каналы) выборочно активировать bioeffectors, когда два или более арретирование группы являются настоящей7. Учитывая эти полезные функции, разработка новых групп photocaging красный свет является очень важной подготовительной работы в фотохимических методологий для биологических исследований, начиная от прощупывания механизмов реакций для контроля клеточной деятельности8. Тем не менее двух Фотон арретирование группа обычно слишком гидрофобные благодаря структуре плавленого ароматическое кольцо, и видимый свет арретирование группа обычно металлоорганические, с ароматическими лигандами. Это свойство гидрофобные/ароматические не подходит, когда bioeffector белков и ферментов, как он денатурирует активация сайт белка фермента и приводит к потере функции, даже если спряжение и фотолиз по-прежнему работают на химическом уровне2 ,9.

UCNPs являются эффективным преобразователи, которые преобразуют свет возбуждения NIR УФ. Это уникальный и увлекательный свойство UCNPs предлагает реалистичные резолюций для решения проблем, связанных с photoactivation и вызвали контролируемого высвобождения малых молекул, включая фолиевой кислоты10, цисплатин производные11 ,12, сополимер везикулы13и полые частицы14ДНК/siRNA. Однако в меру наших знаний, при содействии UCNP photoactivation энзимов или протеинов не тестировалась так далеко. Потому что есть нет успешным примером использования красный свет или NIR фотоактивного фермент, мы были пробуждены для выполнения НИР срабатывает активации белка/фермента конструкции, состоящие из химически модифицированных клетках фермента комплексов с кремний покрытием, легированный лантаноиды UCNP15. В этом исследовании UCNP был проспряганное с быстро реагирующих киназы трансдукции сигнала в виде клетке PKA. PKA управляет синтеза гликогена и цитоскелета регулирование, которое реагирует на внешние раздражители через циклические аденозина фосфат (лагерь) регулирование в цитозоль16. Мы изучили возможности активации фермента в временных и пространственных формах в клеточном эксперимент после облучения НДК. Эта помощь UCNP photoactivation платформа является новой методологии photoactivate фермент, используя НИР и позволяет избежать нежелательного сигнала трансдукции ответ от клеток, вызванные обычным УФ облучения2,4.

Это очень трудно перемещать большие bioeffectors (например, белки) через клеточную мембрану для управления клеточную активность. Хотя лишенных подвижности частиц белка может быть легче перемещать через эндоцитоза в цитозоль, эндоцитоза могут быть повреждены или деградировали через от англ захвата и последующего лизосомальных деградации2,4. Даже если клетке белка до сих пор функционирует после транслокации мембраны, translocated суммы не могут быть достаточно, чтобы вызвать клеточный ответ2,17. В противоположность микроинъекции является прямым и количественный подход к доставить большие bioeffectors в цитоплазму клетки. Кроме того UCNP-прикол bioeffector требует upconverted свет, чтобы быть активированы. Таким образом оптическое приборостроение требует дальнейшего изменения измерения, визуализировать и использовать света upconversion. В этой работе будет подробно доставки клетке PKA-UCNP комплекса в ячейку с помощью микроинъекции и следующие основные изменения микроскопии и спектроскопии для NIR photoactivation.

протокол

Примечание: Протокол описывает подробный инструментария модификация для помогал upconversion photoactivation, синтетические процедуры для создания клетке PKA-UCNP, просвечивающей электронной микроскопии (ТЕА) из кремний покрытием UCNP и в клетке PKA-UCNP образцы, НДК и УФ установки фотолиз, подготовка клетки, микроинъекции PKA-UCNP, photoactivation исследование и стресс окрашивание волокна из REF52 клеток.

1. Fluorimeter установки для измерения спектра Upconversion

  1. установить 4 X объектив рядом с держатель кювет спектрометр флюоресценции, так что лазер ориентирован на середине кювета.
  2. Место перестраиваемый 0,5 - 8-W 980 нм лазерный диод 90° против объектива.
    Предупреждение: Оператор должен иметь лазерной безопасности знаний и носить очки Лазер NIR.
  3. Установить зеркало полного отражения в пересечении пути света объектив и лазера. Место черный анодированный металлической пластиной блокировать окна возбуждения спектроскопии и для защиты деталей интерьера.
  4. Место кювет раствора кремний покрытием UCNP (0,2 - 0,6 мг/мл) в держатель кювет, так, что яркий upconversion луча могут быть визуализированы и может использоваться для регулировки лучший свет выравнивание для установки зеркала.
  5. Спектроскопия переключиться в режим свечения с минимальное значение напряжения ПЛТ (приспособиться к выше параметра, если сигнал слишком слабый). Отрегулируйте зеркало лучшее выравнивание, где луч на середине кювет и PMT подбирает наиболее сильным сигналом.
  6. Измерения спектра upconversion, после выравнивания, с требуемой мощности. Используйте измеритель мощности теплового ворс для построения калибровочной кривой мощности лазерного против электрического текущего чтение на лазерный источник питания. Постоянно проверять производительность лазерной чтобы убедиться, что производительность находится в пределах калиброванные.

2. Микроскоп Setup

Примечание: следующие установки работает для микроскопов, оснащена двухуровневой оптического пути. Если пользователь намеревается установить переключатель источника света возбуждения в задней порт сделать лазер НИР и металлогалогенные лампы разделяют тот же порт, Коллиматор в задней порту значительно будет блокировать НДК, потому что она призвана уменьшить Отопление образца. Пользователь должен сделать нелегкий выбор: сохранять коллиматором и страдают от очень низких upconversion эффективность, или удалить коллиматор и пожертвовать интенсивность возбуждения света для эпифлуоресцентного.

Примечание: визитка диаграмма, показывающая путь света схема для модифицированных spectrofluorometer, микроскопия upconversion люминесценции и NIR фотолиз режиме и эпифлуоресцентного и ультрафиолетового фотолиза режим и экспериментальной установки используется для этого эксперимента проиллюстрированы на рис. 2.

  1. Оборудовать флуоресцентным микроскопом с металлогалогенные света руководство, направлен в заднюю порт
    Примечание: В этом пути света верхнего уровня где есть башенкой Куба, Куба на одну позицию должен быть пустым для NIR, из легких path. нижнего уровня
  2. Установить перестраиваемый 0,5-8,0 W 980 нм лазерный диод в правой части порта с коллиматор стороне порт открыт.
    Примечание: Это увеличивает лазерного света место около 500 мкм в диаметре, когда используется 10 X объектив. Удаление этого коллиматор приводит микрометр диапазон света месте и делает непрактичным NIR клеток облучения. Это коллиматорные прозрачен NIR.
  3. Установить дихроичное зеркало (850-нм короткий перевал) и возбуждения фильтр (950 Нм Лонг перевал) в легких path. нижнего уровня
  4. Использовать UCNP решение для визуализации NIR света месте. Отрегулируйте положение лазерного центра НИР луч света в поле зрения для завершения выравнивания.

3. Подготовка и квалификация в клетке построить PKA-UCNP

  1. инкубировать рекомбинантных PKA (9 мкм) с 0,5 мм 2-nitrobenzylbromide (НББ) в останов буфера (20 мм трис-HCl, 100 мм NaCl и 10 мм MgCl 2; рН 8,5) для 1-2 ч при 25 ° C. Quench избыток НББ с 10 мм dthiothreitol (DTT) и затем dialyze против 4-(2-гидроксиэтилкрахмала) буфера пиперазина-1-ethanesulfonic кислота (HEPES) (10 мм, pH 7.5), чтобы удалить избыток реагентов и соли.
    Примечание: РН раствора арретирование опускается от 8,5 до 7,5 во время диализа с HEPES pH 7.5 для последующей иммобилизацией реакции.
  2. Смесь лантаноиды соли Y(CH3CO2) 3 гидрат (99.9%, 0.4527 g, 1.38 ммоль), Yb (CH 3 CO 2) 3 гидрат (99.9%, 0.2533 g, 0,60 ммоль) и ТМ (CH 3 CO 2) 3 гидрат (99.9%, 0,0168 g, 0,02 ммоль)-в octadecene (30 мл) и олеиновой кислоты (12 мл), Нагрейте смесь до 115 ° C в течение 30 мин и охладить их до 50 ° C. Далее, распустить реакционной смеси в метанольного раствора (20 мл) с 0,2 г (5,0 ммоль) NaOH гранул и 0.2964 g (8 ммоль) Фторид аммония в sonication на 15 мин увеличение температуры реакции до 300 ° C, чтобы получить ядро UCNP (β-NaYF 4 : 1,0% Tm 3 + / Yb 30% 3 +) наночастицы.
  3. Распустить ядро наночастиц (25 мг) с CO-520 (0,5 мл) в циклогексан (10 мл). Добавление аммиака (wt 30% v/v, 0,08 мл) и tetraethylorthosilicate (Теос, 0,04 мл) и применять постоянном перемешивании в течение 12 ч при комнатной температуре для получения кремния покрытием β-NaYF 4: 1.0%Tm 3 + /30%Yb 3 + основные наночастиц.
  4. Инкубировать PKA (6 нмоль) или клетке PKA (6 нмоль) с 15 UCNP (1 мг) в HEPES буфера (10 мм, pH 7.5) при 4 ° C 3 h для иммобилизации PKA на кремний покрытием UCNP через электростатических взаимодействий.
  5. Фильтр смесь, с помощью фильтра PVDF (0,45 мкм), центрифуги на 17.000 g x 10 мин при температуре 4 ° C и redisperse гранулы в HEPES (50 мкл, 10 мм, pH 7.5) содержащий 0.1% белковый стабилизатор для получения очищенного PKA-UCNP комплекс. Центрифуга на 17.000 g x 10 мин при температуре 4 ° C и собирать супернатант для assay Брадфорд в 1,5 мл.
  6. Анализа неограниченных PKA в надосадке спас от шаг 3.5 с assay Брадфорд обратно-рассчитать уровень замещения PKA на UCNP частицы, которые обычно имеют уровень замещения ~ 4,5 нмоль PKA на мг частицы.
    Примечание: Assay Брадфорд раскрывает сильным синим цветом на гранулы, которая предполагает высокий уровень и стабильного белка иммобилизации без десорбции, в то время как супернатанта часть клетке PKA-UCNP решение показывает цвет похож на HEPES буфера ( Рисунок 4 c-4e).

4. Характеристика

Примечание: пробирного протеинкиназы используется для количественного определения удельной активности пируваткиназой. Короче говоря фосфорилирование пептид, который связан с пируваткиназой и лактатдегидрогеназа, приводит окисление НАДН. Формирования последнего контролируется путем измерения уменьшение поглощения NADH на 340 Нм.

  1. Определить деятельность PKA и PKA-UCNP в 60 мкл суммарный объем пробы смеси, содержащей 4-morpholinepropanesulfonic кислота (МОПЫ, 100 мм, pH 7.5), KCl (100 мм), phosphoenolpyruvate (ОПТОСОЗ, 1 мм), аденозин трифосфата (АТФ, 1 мм), β - Никотинамидадениндинуклеотид, уменьшена форма (NADH, 0,8 мм), хлорид магния (MgCl 2, 1 мм), kemptide (0,4 мм) и пирувата смесь киназы/лактат дегидрогеназа (30/40 единицы PK/ЛДГ).
  2. Мера уменьшение поглощения NADH со временем после добавления раствора (2 мкл) PKA смеси assay. Рассчитать наклон линии непосредственно отражает активность протеинкиназы измеряемого.
  3. Измерения активности PKA-UCNP 15 и общая деятельность, которая должна быть хорошо подобраны с продуктом умножения родной PKA-конкретной деятельности и расчетной величины PKA с покрытием поверхности.

5. Фотолиз установки

  1. МЭСЮр, все силы света источников с помощью датчика тепловой ворс и рассчитать плотность мощности (PD = мощность (W) / район (2 см)) 18 основанные на площади пятна света.
  2. Выполнять в экстракорпорального ультрафиолетового фотолиза эксперименты в коммерческой системе с 365 нм светодиодные (200 МВт/см 2) 15.
  3. Photoactivation для УФ на микроскопа, освещают PKA-UCNP решение с возбуждением света, отфильтрованных по коммерческой куб 15.
    Примечание: Плотность мощности является ~ 15 МВт/см 2, без фокусировки объектива.
  4. Для в пробирке photoactivation NIR на микроскопа, освещают PKA-UCNP решения с помощью 980 нм лазер с заказной upconversion фильтр/зеркало параметры установлены на пути света нижнего уровня, дихроичное зеркало (850 нм короткий перевал), и возбуждения фильтр (950 Нм Лонг пасс).
    Примечание: Плотность выходной мощности, 5 Вт/см 2 до 4 X объектив упором. Удельная мощность оценивается в ~ 68 Вт/см 2 после 4 X объектив упором.

6. Сотовый пробоподготовки и микроинъекции PKA-UCNP комплексы

  1. Предварительный фильтр образцы через 0.45 мкм фильтр после PKA иммобилизации (шаг 3.5).
  2. Инкубировать клетки в 10% плода бычьим сывороточным (ФБС), содержащие L-15 Средний период микроинъекции для управления стабильным рН за пределами инкубатора.
    Примечание: для подтверждения завершения микроинъекции, совместно внедрить родной PKA-UCNP, клетке PKA-UCNP или Пегилированный UCNP (7,5 мг/мл) 15 с 5 (6)-carboxytetramethylrhodamine (ТАМРА) (10 мкм) в ячейки.
  3. Регулировка концентрации частиц PKA-UCNP, таким образом, что после микроинъекции, цитозольной концентрация составляет 1-3 мкм PKA - физиологическая концентрация диапазон для PKA в ячейке, в предположении, что объем впрыска составляет 1/10 клеточных тома .
  4. Выполнять микроинъекции в клетки (шаг 6.2) с помощью microinjector устройства в сочетании с гидравлическим микроманипулятор одной оси ( рис. 3).
  5. Использования цифровой манометр для контроля давления, применяемых в microinjector находится в рабочем диапазоне (~ 50-200 гПа) и уплотнение клапана дозатор в камере заказной давление для обеспечения компенсации давления для микроинъекции. Тянуть обратно иглой с помощью съемника.
  6. Поддерживать давление впрыска между 50 и 75 гПа, время впрыска 200-300 мс и компенсации давления на 15 гПа для предотвращения обратного потока питательной среды в иглы действием капиллярных.
  7. Изучить отверстия кончик иглы для обеспечения, что они имеют наружный диаметр между 1,3 и 1,5 мкм, которые могут быть подтверждены путем принятия изображений с помощью 40 x объектив.
  8. Мыть ячейки с 2 мл L-15 среды, содержащие 10% FBS после микроинъекции. Соблюдать сотовой флуоресценции изображений от 5 (6) - carboxytetramethyl - родамин (ТАМРА) для подтверждения завершения микроинъекции.

7. Photoactivation в клетке PKA-UCNP с помощью УФ или NIR свет в живущих клетках

photoactivation
  1. для УФ после PKA-UCNP микроинъекции, растут REF52 клеток на блюде 3,5 мкм, разместить их на микроскопа и облучить их с УФ-излучением, отфильтрованных по куб на 3 мин без фокусировки объектива.
    Примечание: REF52 клетки были сохранены в среде DMEM, содержащие 10% FBS при 37 ° C в 5% CO 2 инкубатора и клетки были subcultured когда confluency достигла 90% каждые 2-3 дня.
  2. Photoactivation для NIR после PKA-UCNP микроинъекции, освещают клетки на 980 нм лазер из настроек фильтра/зеркало нижнего уровня, как описано в шаге 5.4.
    Примечание: Плотность мощности 5 Вт/см 2 до 10 X объектив упором и оценивается в 300 Вт/см 2 после 10 x объектив упором. Upconversion является процессом, который требует высокой Фотон плотности, особенно когда требуется больше сдвиг anti-Stoke. Следовательно, сосредоточив внимание необходима во время photoactivation.
  3. , Когда требуется больше света месте (650 мкм x 520 мкм), излучают эти клетки с НДК, сосредоточено 10 x объектив с коллиматором 15 мин разрешить для интервала темный 5 мин после облучения каждого 5-мин, чтобы избежать Отопление.
    Примечание: При высоких пространственным разрешением (субцеллюлярные света месте) необходимо использовать 40 X объектив с точечным, установленных в выход конце света руководства для создания субцеллюлярные измерения света месте (5 мкм x 4 мкм). В данном случае, 1 s облучения является достаточно для NIR photoactivation из-за высокого потока фотонов.
  4. После УФ или NIR фотолиз, позволяют клеткам восстанавливаться в 5% CO 2 инкубатора при 37 ° C 1 ч в полной среды для создания клеточных реакций. Впоследствии, исправить их в 1 мл 4% параформальдегида/фосфат амортизированное saline (PBS) за 20 мин до дальнейшего окрашивания.
    Предупреждение: Параформальдегида высоко токсичен; Избегайте контакта с кожей, глазами или слизистых оболочек. Избегать вдыхания порошка во время измерения и подготовка.

8. Визуализация стресс волокна дезинтеграции вызванных NIR Photoactivation

  1. после фиксации, используют Alexa 594-Фаллоидин (5 мкл 6,6 мкм Стоковый раствор для 200 мкл PBS для пятнать; Инкубируйте 25 мин при комнатной температуре) пятно и Визуализируйте напряжение волокон. Визуализировать изображения Alexa 594-Фаллоидин (Ex 581 Нм/Em 609 Нм) с помощью фильтра набора.
  2. Инкубации клеток для 5 минут в 4 ', 6-diamidino-2-phenylindole (DAPI) при комнатной температуре. После окрашивания, стирать образцы с PBS и отдельно принимать люминесцентные изображения стресс волокон и ядер.

Результаты

Дизайн конструкции клетке фермент UCNP показано на рисунке 1. PKA фермента сначала реагирует с 2-nitrobenzyl бромид для создания неактивного клетке PKA, и он был затем электростатически лишенных подвижности на поверхности UCNP. UCNPs излучают свет upconverted и следователь...

Обсуждение

Ранее Hofmann и coworkers обнаружил, что драматические морфологические изменения наблюдались в REF52 клетках после микроинъекции бесплатно PKA19. В другом исследовании Лоуренс группа продемонстрировала, что клетке PKA может быть активирована в естественных условиях, ведущих к мор...

Раскрытие информации

Авторы заявляют, что они не имеют никаких финансовых интересов.

Благодарности

Мы благодарим Nano науки и технологии программы Синика и Министерство науки и технологий Тайваня за финансирование (101-2113-M-001-001-MY2; 103-2113-M-001-028-MY2).

Материалы

NameCompanyCatalog NumberComments
Reagent
Tris(hydroxymethyl)aminomethaneSigma154563
Magnesium chloride hexahydrateSigmaM9272
MOPSSigmaM1254
HEPESSigmaH4034
Sodium chloride Sigma31434
Potassium chlorideSigma12636
Yttrium acetate hydrateSigma326046Y(C2H3CO2)3 · xH2O
Thulium(III) acetate hydrateAlfa Aesar14582Tm(CH3CO2)3 · xH2O
Ytterbium(III) acetate tetrahydrateSigma326011Yb(C2H3O2)3 · 4H2O
1-OctadeceneSigmaO806
Oleic acidSigma364525
Methanol macron304168
Sodium hydroxideSigma30620
Ammonium fluorideJ.T.Baker69804
IGEPAL CO-520Sigma238643
CyclohexaneJ.T.Baker920601
Ammonium hydroxide (28% - 30%)J.T.Baker972101Ammonia
Tetraethyl orthosilicate (TEOS)Sigma8658
DL-Dithiothreitol (DTT)SigmaD0632
N-hydroxymaleimide (NHM)Sigma226351PKA activity blocking reagent
Prionex protein stabilizer solution from hog collagenSigma81662Protein stabilizer solution
2-nitrobenzyl bromide (NBB)Sigma107794PKA caging reagent
8-(4-Chlorophenylthio)adenosine 3′,5′-cyclic monophosphate sodium saltSigmaC39128-CPT-cAMP
Pyruvate Kinase/Lactic Dehydrogenase enzymes from rabbit muscleSigmaP0294PK/LDH
Adenosine 5'-triphosphate disodiumSigmaA2387ATP
β-NADH reduced from dipotassiumSigmaN4505
PhosphoenolpyruvateSigmaP7127PEP
Coomassie Protein Assay Reagent, 950 mLThermo Scientific23200Bradford assay reagent
cAMP-dependent protein kinasePromegaV5161PKA activity control
pET15b-PKACAT plasmidAddgene#14921
pKaede-MC1 plasmidCoralHueAM-V0012
Phosphate buffered saline (PBS), pH 7.4Thermo Scientific10010023
DMEM, high glucose, pyruvateGibco12800-017Cell culture medium
Leibovitz L-15 MediumBiological Industries01-115-1ACell culture medium
Fetal Bovine SerumBiological Industries04-001-1A
ParaformaldehydeACROS416785000
DAPIInvitrogenD1306Nucleus staining dye
Alexa 594-phalloidinInvitrogenA12381F-actin staining dye
5(6)-Carboxytetramethylrhodamine Novabiochem8.51030.9999
Pierce Coomassie (Bradford) Protein Assay KitThermo Scientific23200
CelluSep T4 Tubings/Nominal filter rating MWCO 12,000 - 14,000 DaMembrane Filtration Products, Inc.1430-33Dialysis membrane
Millex-HV Syringe Filter Unit, 0.45 µm, PVDF, 13 mm, gamma sterilizedEMD MiliporeSLHVX13NL
Equipment
Dynamic Light Scattering/Zetapotential Zetasizer nano-ZSMalvernM104
Transmission Electron MicroscopeJEOLJEM-1400
Fluorescence SpectrophotometerAgilent Technologies10075200Cary Eclipse 
UV-Vis SpectrophotometerAgilent Technologies10068900Cary 50 
Fluorescence MicroscopeOlympusIX-71
950 nm longpass filter ThorlabsFEL0950
850 nm dichroic mirror shortpassChromaNC265609
RT3 color CCD systemSPOTRT2520
Fluorescence IlluminationPRIORLumen 200
980 nm Infra-red diode laserCNIMDL-N-980-8W
UV LED Spot Light SourceUVATAUVATA-UPS412With a UPH-056-365 nm LED at 200 mW/cm2
Thermal pile sensorOPHIR12A-V1-ROHS
Picospritzer IIIParker Hannifin052-0500-900Intracellular Microinjection Dispense Systems
PC-10 Needle pullerNarishigePC-10
MANOMETER Digital pressure gaugeLutronPM-9100
One-axis Oil Hydraulic MicromanipulatorNarishigeMMO-220A
Heraeus Fresco 17 Centrifuge, RefrigeratedThermo Scientific75002421

Ссылки

  1. Brieke, C., Rohrbach, F., Gottschalk, A., Mayer, G., Heckel, A. Light-Controlled Tools. Angew Chem Int Ed. 51 (34), 8446-8476 (2012).
  2. Lee, H. M., Larson, D. R., Lawrence, D. S. Illuminating the Chemistry of Life: Design, Synthesis, and Applications of "Caged" and Related Photoresponsive Compounds. ACS Chem Biol. 4 (6), 409-427 (2009).
  3. Pavlovic, I., et al. Cellular Delivery and Photochemical Release of a Caged Inositol-pyrophosphate Induces PH-domain Translocation in Cellulo. Nature Commun. 7, 10622-10629 (2016).
  4. Priestman, M. A., Sun, L. A., Lawrence, D. S. Dual Wavelength Photoactivation of cAMP- and cGMP-Dependent Protein Kinase Signaling Pathways. ACS Chem Biol. 6 (4), 377-384 (2011).
  5. Amatrudo, J. M., Olson, J. P., Lur, G., Chiu, C. Q., Higley, M. J., Ellis-Davies, G. C. R. Wavelength-Selective One- and Two-Photon Uncaging of GABA. ACS Chem Neurosci. 5 (1), 64-70 (2014).
  6. Warther, D., et al. Two-Photon Uncaging: New Prospects in Neuroscience and Cellular Biology. Bioorg Med Chem. 18 (22), 7753-7758 (2010).
  7. Priestman, M. A., Shell, T. A., Sun, L., Lee, H. M., Lawrence, D. S. Merging of Confocal and Caging Technologies: Selective Three-Color Communication with Profluorescent Reporters. Angew Chem. Int Ed. 51 (31), 7684-7687 (2012).
  8. Hansen, M. J., Velema, W. A., Lerch, M. M., Szymanski, W., Feringa, B. L. Wavelength-selective cleavage of photoprotecting groups: strategies and applications in dynamic systems. Chem Soc Rev. 44 (11), 3358-3377 (2015).
  9. Klán, P., et al. Photoremovable Protecting Groups in Chemistry and Biology: Reaction Mechanisms and Efficacy. Chem Rev. 113 (1), 119-191 (2013).
  10. Chien, Y. H., et al. Near-Infrared Light Photocontrolled Targeting, Bioimaging, and Chemotherapy with Caged Upconversion Nanoparticles in Vitro and in Vivo. ACS Nano. 7 (10), 8516-8528 (2013).
  11. Min, Y. Z., Li, J. M., Liu, F., Yeow, E. K. L., Xing, B. G. Near-Infrared Light-Mediated Photoactivation of a Platinum Antitumor Prodrug and Simultaneous Cellular Apoptosis Imaging by Upconversion-Luminescent Nanoparticles. Angew Chem Int Ed. 53 (4), 1012-1016 (2014).
  12. Yang, Y. M., Liu, F., Liu, X. G., Xing, B. G. NIR Light Controlled Photorelease of siRNA and Its Targeted Intracellular Delivery Based on Upconversion Nanoparticles. Nanoscale. 5 (1), 231-238 (2013).
  13. Wu, T. Q., Barker, M., Arafeh, K. M., Boyer, J. C., Carling, C. J., Branda, N. R. A UV-Blocking Polymer Shell Prevents One-Photon Photoreactions while Allowing Multi-Photon Processes in Encapsulated Upconverting Nanoparticles. Angew Chem Int Ed. 52 (42), 11106-11109 (2013).
  14. Zhou, L., Chen, Z. W., Dong, K., Yin, M. L., Ren, J. S., Qu, X. G. DNA-mediated Construction of Hollow Upconversion Nanoparticles for Protein Harvesting and Near-Infrared Light Triggered Release. Adv Mater. 26 (15), 2424-2430 (2014).
  15. Gao, H. -. D., et al. Construction of a Near-Infrared-Activatable Enzyme Platform To Remotely Trigger Intracellular Signal Transduction Using an Upconversion Nanoparticle. ACS Nano. 9 (7), 7041-7051 (2015).
  16. Wehbi, V. L., Taskén, K. Molecular Mechanisms for cAMP-Mediated Immunoregulation in T cells - Role of Anchored Protein Kinase A Signaling Units. Front Immunol. 7, (2016).
  17. Pitchiaya, S., Heinicke, L. A., Custer, T. C., Walter, N. G. Single Molecule Fluorescence Approaches Shed Light on Intracellular RNAs. Chem Rev. 114 (6), 3224-3265 (2014).
  18. Gao, D., Tian, D., Zhang, X., Gao, W. Simultaneous Quasi-one dimensional Propagationand Tuning of Upconversion Luminescence Through Waveguide Effect. Scientific Rep. 6, 22433-22442 (2016).
  19. Roger, P. P., Rickaert, F., Huez, G., Authelet, M., Hofmann, F., Dumont, J. E. Microinjection of catalytic subunit of cyclic AMP-dependent protein kinases triggers acute morphological changes in thyroid epithelial cells. FEBS Lett. 232 (2), 409-413 (1988).
  20. Curley, K., Lawrence, D. S. Photoactivation of a Signal Transduction Pathway in Living Cells. J Am Chem Soc. 120 (33), 8573-8574 (1998).
  21. Carling, C. J., Nourmohammadian, F., Boyer, J. C., Branda, N. R. Remote-control Photorelease of Caged Compounds Using Near-infrared Light and Upconverting Nanoparticles. Angew Chem Int Ed. 49 (22), 3782-3785 (2010).
  22. Garcia, J. V., et al. NIR-triggered Release of Caged Nitric Oxide Using Upconverting Nanostructured Materials. Small. 8 (24), 3800-3805 (2012).
  23. Liu, G., Zhou, L. Z., Su, Y., Dong, C. M. An NIR-responsive and sugar-targeted polypeptide composite nanomedicine for intracellular cancer therapy. Chem Commun. 50 (83), 12538-12541 (2014).

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на использование текста или рисунков этого JoVE статьи

Запросить разрешение

Смотреть дополнительные статьи

126CagedAupconversionphotoactivation

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Конфиденциальность

Условия эксплуатации

Политика

СВЯЖИТЕСЬ С НАМИ

РЕКОМЕНДОВАТЬ БИБЛИОТЕКЕ

НОВОСТИ JoVE

Исследования

Образование

АВТОРЫ

Библиотекарь

О JoVE

Авторские права © 2025 MyJoVE Corporation. Все права защищены