JoVE Logo
АВТОРЫ
СВЯЖИТЕСЬ С НАМИ

Войдите в систему

Для просмотра этого контента требуется подписка на Jove Войдите в систему или начните бесплатную пробную версию.

В этой статье

  • Резюме
  • Аннотация
  • Введение
  • протокол
  • Результаты
  • Обсуждение
  • Раскрытие информации
  • Благодарности
  • Материалы
  • Ссылки
  • Перепечатки и разрешения

Резюме

Эта работа описывает надежный и простой метод для обнаружения и количественной оценки эндоканнабиноидов 2-arachidonoylglycerol (2-AG) в C. elegans. Аналитический деутерированный стандарт, который мы подготовили и использовали для количественной оценки 2-AG с помощью изотопного разбавления и жидкой хроматографии-электроспрей ионизации-тандемной масс-спектрометрии (LC-ESI-MS/MS).

Аннотация

Эта работа представляет собой метод подготовки аналитического стандарта для качественного и количественного анализа 2-арачидоилглицерола (2-AG) с помощью жидкой хроматографии-электроспрепи ионизации-тандемной масс-спектрометрии (LC-ESI-MS/MS). Эндоканнабиноиды являются консервированными липидными посредниками, которые регулируют несколько биологических процессов в различных организмах. В C. elegans, 2-AG было установлено, обладают различными ролями, в том числе модуляция dauer формирования и метаболизмхолестерина. В настоящем докладе описывается метод преодоления трудностей, связанных с затратами и стабильностью дейтерированных стандартов, необходимых для количественной оценки 2-АГ. Процедура синтеза стандарта проста и может быть выполнена в любой лаборатории, без необходимости проведения экспертизы органического синтеза или специального оборудования. Кроме того, описана модификация метода Фолч для извлечения пониженного стандарта из культуры C. elegans. Наконец, описан количественный и аналитический метод обнаружения 2-AG с использованием стабильного изотопно помеченного аналога 1-AG-d5, который обеспечивает надежные результаты в быстрохроматографическом беге. Процедура полезна для изучения нескольких ролей 2-AG в C. elegans, а также применима к другим исследованиям метаболитов в различных организмах.

Введение

Эндоканнабиноиды регулируют несколько биологических процессов в различных организмах и сохраняют липидных посредников1. Первыми обнаруженными и наиболее хорошо характерными эндоканнабиноидами являются анандамид (арачидонайлетоламид, АЕА) и 2-арачидойный глицерол (2-AG). Эндоканнабиноиды играют много важных ролей, в том числе тех, кто участвует в системах вознаграждения мозга, а также наркомании, памяти, настроения и метаболических процессов2. AEA и 2-AG синтезируются только тогда, когда это необходимо и имеют короткий срок службы, и они деградируют через перенастройку транспортного белка и гидролиз3.

Использование животных моделей, как Caenorhabditis elegans (C. elegans) стало важным для изучения большого разнообразия биологических процессов, включая апоптоз, сигнализация клеток, клеточный цикл, клеточная полярность, регуляция генов, метаболизм, старение, и определение пола4,5. Кроме того, C. elegans является отличной моделью для изучения физиологической роли полиненасыщенных жирных кислот (ПУФА). AEA был выявлен в C. elegans и уменьшается в соответствии с диетическим ограничением6. Этот дефицит продлевает срок службы нематод через механизм диетического ограничения, которые могут быть подавлены добавками с эндоканнабиноидом. Недавно было обнаружено, что 2-AG и AEA играют основополагающую роль в регулировании торговли холестерином в C. elegans7. Что еще более важно, было установлено, что добавки с экзогенными 2-AG может спасти dauer арест, который вызван нарушениями торговли холестерином в Niemann-Pick типа C1 C. elegans мутантов.

Чтобы лучше понять связь 2-AG с торговлей холестерином и другими биологическими процессами в нематоде (т.е. моноаминерской сигнализации, ноцицепции и передвижения), крайне важно изучить этот эндогенный метаболит и как это пострадавших при определенных экологических и диетических условиях8,9,10,11,12,13. Поэтому крайне важно разработать и оптимизировать метод обнаружения и количественной оценки эндогенных 2-AG в C. elegans, который прост в использовании для ученых различных областей, особенно тех, кто изучает поведение нематод в связи с этим эндоканнабиноид.

В 2008 году Летхонен и его коллеги с помощью аналитических методов LC-MS удалось выявить 2-AG и AEA в C. elegans с помощью аналитических методов LC-MS14. В 2011 году им удалось расширить эту технику на другие эндоканнабиноиды15. Более поздние работы показали другие аналитические методы, которые были успешными в обнаружении и количественной оценке эндоканнабиноидов в C. elegans, в том числе масс-спектрометрии и GC-MS16,17,18, и он также сообщалось, что аналогичные аналитические методы могут быть расширены на другие модели19.

Ранее сообщалось аналитических методов, используемых для количественной оценки 2-AG в биологических образцов, как правило, включают в себя использование deuterated стандартов, которые приобретаются на коммерческой основе и требуют наличия для покупки20,21. Многие аналитические стандарты для LC-MS/MS количественной оценки эндоканнабиноидов коммерчески доступны у различных поставщиков. Тем не менее, они дорогие, чувствительны, и окисляются с течением времени, из-за наличия нескольких двойных облигаций. Наиболее распространенные версии этих стандартов основаны на окта-деютированной арахидоновой кислоты и подходят для количественной оценки с помощью изотопного разбавления LC-MS/MS14,22. Кроме того, большинство из этих стандартов заменяются в положении 2 глицерола, что делает их нестабильными в большинстве условий, поскольку они склонны к ацил-миграции19,23.

Для преодоления трудностей, связанных с затратами и стабильностью этих дейтерированных стандартов, представлен удобный и простой метод подготовки аналитического стандарта на основеглицерола-d 5. Последовательность для подготовки пента-деутерированный стандарт требует трехступенчатой процедуры, что приводит к стандартной 1-AG-D5, которая является стабильной и не подвергается ацил миграции (основной вопрос при направлении синтеза 2-monoacylglycerols).

Основная цель здесь заключается в том, чтобы показать простой и воспроизводимый метод для изучения 2-AG в C. elegans, в том числе синтез аналитического deuterated стандарта, подготовка и извлечение образцов нематод, и анализ LC-MS/MS (Рисунок 1 ). Эта синтетическая процедура достижима без сложных знаний органического синтеза или специального оборудования, что делает ее подходящей для ученых из разных областей, которые изучают поведение C. elegans под влиянием эндоканнабиноидов. Этот метод также может быть расширен по другим исследовательским моделям, что делает его полезным для различных целей. Стандарт, подготовленный, как сообщалось здесь, был применен для успешного разработки быстрого и надежного хроматографического метода, который позволяет эффективно обнаруживать и количественно 2-AG воспроизводимым образом.

протокол

1. 1-AG-d5 подготовка

ПРИМЕЧАНИЕ: Для получения 1-AG-D5 в качестве deuterated внутреннего стандарта для количественного анализов, следуйте протоколу, как описано ниже.

  1. Дифференциальная защита
    1. Чтобы защитить только первичные спирты, сначала добавьте 38 мг глицерола-d8 в 10 мл реакционную трубку с помощью пипетки Pasteur и добавьте магнитный мешалку.
    2. Добавьте 5 мл ангидроусового дихлорметана (DCM) с помощью шприца Гамильтона 5 мл, и заполните трубку сухим N2, чтобы создать инертную атмосферу.
    3. Приготовьте ванну с помощью мелкой колбы Dewar, наполненной дистиллированным этиловым ацетатом.
    4. Приспособите герметично закрытую реакционную трубку внутри ванны и охладите ее, медленно добавляя жидкость N2 в этиловый ацетат до тех пор, пока растворитель не замерзнет.
      ВНИМАНИЕ: жидкость сильно кипит при комнатной температуре (RT) и может вызвать сильные ожоги при контакте с глазами и кожей.
    5. Добавьте 54 мг ангидроуса коллайдина с помощью шприца Гамильтона.
      ВНИМАНИЕ: Столкновение является неустойчивым и имеет очень сильный и неприятный запах.
    6. Добавьте 70 мг терт-бутилметилзилхорид хлорида и размешайте весь раствор в течение 3 ч при -78 градусов по Цельсию на магнитном усилителе.
    7. После 3 ч, оставить реакцию теплой на RT и держать помешивая еще 12 ч.
    8. Добавьте 2 мл рассола, чтобы утолить реакцию.
    9. Извлеките раствор 3x с 2 мл дистиллированного дихлорметана с помощью отделяющей воронки, сохраняя органический экстракт каждый раз.
    10. Смешайте три органических экстракта и высушите их над сульфатом натрия.
    11. Испарите дихлорметан под пониженным давлением в вакуумном роторном испарителе тщательно, чтобы избежать платежеспособных проекций.
    12. Очистите сырую смесь по колонке хроматографии с помощью кремнезема гель в качестве стационарной фазы и 10% увеличения гексан / этил ацетат градиент, начиная со 100% гексан и заканчивая 100% этилацетат.
    13. Комбинат продукт-содержащих фракций и удалить растворитель под пониженным давлением в вакуумном роторном испарителе, чтобы получить чистый 1-O,3-O-Bis-(TBDMS) глицерол-d5 как бесцветная жидкость.
  2. Этерификации
    1. Добавьте 10 мг 1-O,3-O-bis (TBDMS)-glycerol-d5 (ранее синтезированный) в 10 мл реакционную трубку с помощью пипетки Pasteur и добавьте магнитный мешалку.
    2. Добавьте 2 мл ангидроусового дихлорметана с помощью шприца Гамильтона 5 мл и заполните трубку сухим N2, чтобы создать инертную атмосферу.
    3. Охладите раствор до 0 градусов с помощью ледяной ванны.
    4. Добавьте 36 мг арахидоновой кислоты с помощью многотомного регулируемого микропипетля и перемешайте.
    5. Добавить 15 мг 4-диметиламинопиридин и перемешать.
    6. Добавьте 15 мг N,N'-diisopropylcarbodiimide с помощью многотомного регулируемого микропипетля и перемешайте.
    7. Пусть смесь реагирует на 0 кс в течение 3 ч.
    8. После 3 ч, оставить реакцию теплой на RT и держать помешивая еще 12 ч.
    9. Добавьте 2 мл воды, чтобы утолить реакцию.
    10. Извлеките органический раствор 3x с 2 мл дистиллированного дихлорметана (DCM) с помощью отделяющей воронки.
    11. Поместите три органических экстракта в ту же трубку и высушите их над сульфатом натрия.
    12. Испарите дихлорметан под пониженным давлением в вакуумном роторном испарителе тщательно, чтобы избежать платежеспособных проекций.
    13. Очистите сырую смесь по колонке хроматографии с использованием кремнезема гель в качестве стационарной фазы и 10% увеличение гексан / этил ацетат градиент, начиная от 100% гексан и заканчивая 50% гексан / 50% этил ацетат.
    14. Объедините продуктосодержащие фракции и удалите растворитель под пониженным давлением в вакуумном роторном испарителе, чтобы получить чистый 1-O, 3-O-bis (TBDMS)-2-AG-d5 в виде желтоватой жидкости.
  3. Дезащита
    1. Добавьте 15 мг 1-O,3-O-bis (TBDMS)-2-AG-d5 (ранее синтезировался) в 10 мл реакционную трубку с помощью пипетки Pasteur и добавьте магнитный мешалку.
    2. Добавьте 2 мл ангидроусового THF с помощью шприца Гамильтона 5 мл и заполните трубку сухим N2, чтобы создать инертную атмосферу.
    3. Охладите раствор до 0 градусов с помощью ледяной ванны.
    4. Добавьте 150 л л dropwise 1 M тетрабутиламмония фторид решение в THF с помощью шприца Гамильтона.
    5. Пусть реакция теплой к RT и перемешать в течение 1 ч.
    6. После 1 ч добавьте 2 мл воды, чтобы утолить реакцию.
    7. Извлеките раствор 3x с 2 мл дистиллированного дихлорметана с помощью разделительной воронки.
    8. Смешайте три органических экстракта и высушите их над сульфатом натрия.
    9. Испаряйся дихлорметана под пониженным давлением в вакуумном роторном испарителе, чтобы получить чистый 1-AG-d5 в виде желтоватой жидкости.
  4. Мониторинг всех реакций с помощью тонкослойной хроматографии выполняется на кремнезема гель 60 F254 предварительно покрытием алюминиевых листов. Визуализируйте полосы под 254 нм ультрафиолетовой лампы после окрашивания этанолиальным раствором 4-анисалдегида.

2. Подготовка стандартных складских и измерительных растворов

  1. Растворите 1 мг внутреннего стандарта 1-AG-d5 в 1 мл ACN и соните в течение 1 мин, чтобы получить стандартное стоковое решение объемом 1000 промилле.
  2. Чтобы подготовить раствор 1000 ppb, используемый для количественной оценки у червей, сначала подготовьте раствор 10 промилле: возьмите 10 л биржевого раствора с помощью шприца Гамильтона и разбавьте его до конечного объема 1 мл, добавив 990 л ACN.
  3. Возьмите 100 кЛ из раствора, произведенного в шаге 2.2 с использованием шприца Гамильтона, и разбавьте его до конечного объема 1 мл, добавив 900 л ACN для получения раствора 1000 ppb, используемого для количественной оценки.
  4. Соните в течение 1 мин между каждым шагом, чтобы обеспечить полную растворимизацию. Храните растворы при -78 градусов по Цельсию для поддержания концентрации и целостности стандартов. После использования стандартного раствора, поток некоторых азота до закрытия флакона для предотвращения окисления.

3. Рост и содержание C. elegans

ПРИМЕЧАНИЕ: Семя нематод среднего роста (NGM) агар пластины с E. coli OP50 и размножаться червей на этих пластинах.

  1. Смешайте 3 г NaCl с 17 г агара.
  2. Добавьте 2,5 г пептона, затем добавьте 975 мл H2O.
  3. Автоклав в течение 50 минут, затем охладите колбу до 55 градусов по Цельсию.
  4. Смешайте следующее: 1 мл 1 M CaCl2, 1 мл 1 M MgSO4, 25 мл 1 M KH2PO4 буфера (все из которых были ранее autoclaved), и 1 мл 5 мг / мл холестерина в этаноле.
  5. Сохраняя стерильную среду, распределяйте раствор NGM в 60 мм пластины Петри, заполняя пластины до двух третей их объема. Храните тарелки при 4 градусах по Цельсию.
  6. Полоса E. coli бактериальной культуры от -80 кС глицерол фонда на LB агар пластины. Пусть он растет на тарелке на ночь при 37 градусах Цельсия.
  7. Возьмите одну колонию, чтобы привить 100 мл жидкого LB на ночь при 37 градусах Цельсия с волнением.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Это не обязательно, чтобы проверить O.D., потому что этот штамм может достичь стационарной фазы в течение этого времени.
  8. Снимите хранящиеся пластины NGM, снимите крышки в ламинарном капоте и оставьте открытым, чтобы позволить испарение избыточной влаги из пластин.
  9. После того, как пластины высохнут, используйте пипетку Pasteur, чтобы добавить 100 зл и l OP50 E. coli к центру пластины, не распространяя.
  10. Оставьте газон OP50 E. coli, чтобы расти на ночь на RT или при 37 градусах по Цельсию в течение 8 ч.
  11. Добавьте желаемое число эмбрионов червей, полученных путем лечения гипохлоритом или "отбеливания" (раздел 4).
    ПРИМЕЧАНИЕ: Охладить пластины для RT до добавления червей.

4. Метод отбеливания для синхронизации культур C elegans

  1. Семена и куски червей на 6 см NGM пластин.
  2. Оставьте червей, растущих в течение 2-3 дней, чтобы получить достаточное количество яиц и gravid взрослых на тарелке.
  3. После того, как Есть достаточно яиц / взрослых, залить 5 мл M9 на тарелку.
  4. Перенесите червей в центрифугу мощностью 15 мл с помощью стеклянной пипетки.
  5. Centrifuge трубку в течение 2 мин на 2000 х г и гранулы червей.
  6. Всасывание большую часть M9, избегая нарушения гранул червя.
  7. Добавьте 3 мл отбеливания (2:1:1 соотношение NaOH:NaOCl:H2O).
  8. Перевернуть осторожно, чтобы смешать раствор в течение 5 минут или до тех пор, пока количество нетронутых взрослых червей уменьшается.
    ВНИМАНИЕ: Не отбеливайте более 5 мин.
  9. Центрифуга в течение 1 мин при 2000 х г и всасывание большую часть отбеливания раствора, не нарушая гранулы червя.
  10. Добавьте 15 мл M9 и хорошо перемешайте.
  11. Центрифуге снова при 2000 х г в течение 1 мин.
  12. Всасывание из большинства M9, не нарушая червя гранулы.
  13. Повторите шаги 4.10-4.12 один или два раза.
  14. Добавьте 5 мл свежего M9 и агитировать.
  15. Пусть яйца люк на ночь с нежным качания.

5. Подготовка образца червя

  1. Пусть n2 эмбрионов, полученных в процессе отбеливания люк ночь в буфере M9 (5 мл в 15 мл центрифуги трубки) при 20 градусов по Цельсию.
  2. Урожай синхронизированных L1s путем центрифугации трубки в течение 2 мин на 2000 х г.
  3. Вымойте червей с m9 буфер 1x, а затем количественно количество живых червей L1.
  4. Семя примерно 10 000 червей в ngM пластины (10 см в диаметре) с 1 мл OP50 E. coli (ранее сушеные).
  5. Инкубировать пластины в течение 48 ч при 20 градусах Цельсия, пока черви не достигнут стадии L4.
  6. Урожай червей с помощью холодного буфера M9 в 15 мл центрифуги трубки, мыть их 1x, а затем передать их в 1,5 мл трубки.
  7. Пеллети червей центрифугированием при 2000 х г в течение 1 мин, устраняйте большую часть супернатанта, погружайте трубки в жидкий азот и храните при -80 градусов по Цельсию.

6. Добыча липидов

  1. Оттепели примерно 100 л замороженных гранул червя, принадлежащих N2 на льду, добавить 1,3 мл метанола и сотнифицировать образец в течение 4 мин.
  2. Добавьте 2,6 мл хлороформа и 1,3 мл 0,5 м KCl/0,08 М Н H3PO4 к окончательному соотношению 1:2:1, 1000 ppb внутреннего стандарта 1-AG-d5и бутиляционного гидрокситолуола в качестве антиоксидантного агента при конечной концентрации 50 мкг/мл.
  3. Vortex образцы для 1 мин и соники в ультразвуковой водяной бане в течение 15 минут на льду.
  4. Vortex образцы 2x в течение 1 мин и центрифуга в течение 10 мин на 2000 х г, чтобы вызвать фазовое разделение.
  5. Соберите нижнюю фазу и соберите ее в чистую трубку, высушите ее под азотом и приостановите твердые остатки в 100 КЛ ACN.

7. Эндоканнабиноидный анализ HPLC-MS/MS

  1. Используйте жидкую хроматографию в сочетании с масс-спектрометром МАСС ESI тройной квадрупольный для обнаружения и количественной оценки 2-AG из образцов нематод.
  2. Используйте следующее соотношение для обратной фазы HPLC: от 0,0-0,5 мин H2O:ACN (40:60), 0,5-6,5 мин H2O:ACN (40:60) до (25:75), 6 .5-7.5 мин H2O:ACN (25:75), 7.5-8.0 мин H2O:ACN (25:75) до (40:60), 8.0-12.0 мин H2O: ACN (40:60).
  3. Поддерживайте температуру колонки при температуре 40 градусов по Цельсию и установите температуру лотка автосэмпера до 10 градусов по Цельсию.
  4. Установите следующие условия ионизации: режим положительно-ионного; сушки газа (N2) температура 300 градусов по Цельсию; скорость сушки газа - 10 л/мин; давление небулайзера No 10 УА; и крышка. напряжение 4 кВ.
  5. Для обнаружения аналита используйте МРМ со следующими переходами: 379,2 м/с до 289,2 м/с для 2-АГ; и от 384,2 м/с до 289,2 м/с для 1-АГ-д5.

8. Кваннабиноидная количественная оценка у червей

  1. Используйте deuterated внутренний стандарт 1-AG-d5 и вычислите пиковые соотношения площади анализировать к внутреннему стандарту.
  2. Используйте следующие переходы: 384,2 м/з до 287,2 м/с для 2-АГ; и 379,2 м/с до 287,2 м/с для 1-AG-d5.
  3. Рассчитайте концентрацию эндогенных 2-AG, сравнивая пиковые соотношения площади deuterated стандарта, используя значение концентрации стандарта.

Результаты

Изотопно помеченный аналог был успешно синтезированиз коммерчески доступных d 8-глицерол и арахидоновая кислота с помощью 3-ступенчатого синтетического метода(Рисунок 2, Рисунок 3). Эти шаги являются простыми и не требуют сложного ...

Обсуждение

Эндоканнабиноиды являются классом липидов, которые были вовлечены в регулирование формирования dauer в C. elegans7. В частности, синтез полиненасыщенных жирных кислот (ПУФА) имеет важное значение для торговли холестерином и репродуктивного развития червей. Здесь показано, ч...

Раскрытие информации

Авторы не заявляют о конфликте интересов.

Благодарности

Эта работа была поддержана исследовательским грантом Национального агенсии Промсвязьбанка Кьентифика и Текнологика (ANPCyT, PICT 2014-3693). J.F.d.L., G.P. и B.H.C. являются стипендиатами CONICET. D.d.M. и G.R.L. являются членами исследовательской карьеры CONICET. Мы благодарны Гонсало Ламберто (INMET) за анализ LC-MS/MS и полезное обсуждение. Видеосъемка и редактирование было сделано Рамиро Ортега и Мария Соледад Касасола из Direccion де Comunicacion де ла Сьенсия, Факультет Сиенсия Политика у Relaciones Internacionales, Университет Национальный Росарио в Росарио, Аргентина.

Материалы

NameCompanyCatalog NumberComments
4-dimethylaminopyridineSigma-Aldrich107700reagent grade, 99%
antioxidant BHTSigma-AldrichW21805
Arachidonic acidSigma-Aldrich10931
Glycerol-d8Sigma-Aldrich447498
Mass detector Triple QuadrupoleThermo ScientificTSQ Quantum Access Max
N,N’-diisopropylcarbodiimideSigma-AldrichD125407
NMR spectrometerBrukerAvance II 300 MHz
reversed-phase HPLC columnThermo Fisher25003-052130C18 Hypersil-GOLD (50 x 2.1 mm)
tert-Butyldimethylsilyl chlorideSigma-Aldrich190500reagent grade, 97%
tetrabutylammonium fluorideSigma-Aldrich2161431.0M in THF
UHPLC SystemThermo ScientificUltimate 3000 RSLC Dionex
worm strain N2 BristolCaenorhabditis Genetics Center (CGC)

Ссылки

  1. McPartland, J. M., Matias, I., Di Marzo, V., Glass, M. Evolutionary origins of the endocannabinoid system. Gene. 370, 64-74 (2006).
  2. Le Foll, B., Goldberg, S. R. Cannabinoid CB1 receptor antagonists as promising new medications for drug dependence. Journal of Pharmacology and Experimental Therapeutics. 312 (3), 875-883 (2005).
  3. Pesce, M., Esposito, G., Sarnelli, G. Endocannabinoids in the treatment of gastrointestinal inflammation and symptoms. Current Opinion in Pharmacology. 43, 81-86 (2018).
  4. Hulme, S. E., Whitesides, G. M. Chemistry and the worm: Caenorhabditis elegans as a platform for integrating chemical and biological research. Angewandte Chemie International Edition. 50 (21), 4774-4807 (2011).
  5. Aitlhadj, L., Stürzenbaum, S. R. Caenorhabditis elegans in regenerative medicine: a simple model for a complex discipline. Drug Discovery Today. 19 (6), 730-734 (2014).
  6. Lucanic, M., et al. N-acylethanolamine signalling mediates the effect of diet on lifespan in Caenorhabditis elegans. Nature. 473 (7346), 226-229 (2011).
  7. Galles, C., et al. Endocannabinoids in Caenorhabditis elegans are essential for the mobilization of cholesterol from internal reserves. Scientific Reports. 8 (1), 6398 (2018).
  8. Kurihara, J., et al. 2-Arachidonoylglycerol and Anandamide Oppositely Modulate Norepinephrine Release from the Rat Heart Sympathetic Nerves. The Japanese Journal of Pharmacology. 87 (1), 93-96 (2001).
  9. Harris, G., et al. Dissecting the Serotonergic Food Signal Stimulating Sensory-Mediated Aversive Behavior in C. elegans. PLoS ONE. 6 (7), e21897 (2011).
  10. Pastuhov, S. I., Matsumoto, K., Hisamoto, N. Endocannabinoid signaling regulates regenerative axon navigation in Caenorhabditis elegans via the GPCRs NPR-19 and NPR-32. Genes to Cells. 21 (7), 696-705 (2016).
  11. Oakes, M. D., Law, W. J., Clark, T. Cannabinoids Activate Monoaminergic Signaling to Modulate Key C. elegans Behaviors. Journal of Neuroscience. 37 (11), 2859-2869 (2017).
  12. Sofia, R. D., Nalepa, S. D., Harakal, J. J., Vassar, H. B. Anti-edema and analgesic properties of Δ9-tetrahydrocannabinol (THC). Journal of Pharmacology and Experimental Therapeutics. 186 (3), 646-655 (1973).
  13. Mills, H., et al. Monoamines and neuropeptides interact to inhibit aversive behaviour in Caenorhabditis elegans. The EMBO Journal. 31 (3), 667-678 (2012).
  14. Lehtonen, M., Reisner, K., Auriola, S., Wong, G., Callaway, J. C. Mass-spectrometric identification of anandamide and 2-arachidonoylglycerol in nematodes. Chemistry & Biodiversity. 5 (11), 2431-2441 (2008).
  15. Lehtonen, M., et al. Determination of endocannabinoids in nematodes and human brain tissue by liquid chromatography electrospray ionization tandem mass spectrometry. Journal of Chromatography B: Analytical Technologies in the Biomedical and Life Sciences. 879 (11-12), 677-694 (2011).
  16. Aarnio, V., et al. Caenorhabditis Elegans Mutants Predict Regulation of Fatty Acids and Endocannabinoids by the CYP-35A Gene Family. Frontiers in Pharmacology. 2 (12), 12 (2011).
  17. Annibal, A., Karalay, &. #. 2. 1. 4. ;., Latza, C., Antebi, A. A novel EI-GC/MS method for the accurate quantification of anti-aging compound oleoylethanolamine in C. elegans. Analytical Methods. 10 (22), 2551-2559 (2018).
  18. Oakes, M., Law, W. J., Komuniecki, R. Cannabinoids Stimulate the TRP Channel-Dependent Release of Both Serotonin and Dopamine to Modulate Behavior in C. elegans. The Journal of Neuroscience. 39 (21), 4142-4152 (2019).
  19. Batugedara, H. M., et al. Helminth-Derived Endocannabinoids That Have Effects on Host Immunity Are Generated during Infection. Infection and Immunity. 86 (11), e00441 (2018).
  20. Zhang, M. Y., et al. Simultaneous determination of 2-arachidonoylglycerol, 1-arachidonoylglycerol and arachidonic acid in mouse brain tissue using liquid chromatography/tandem mass spectrometry. Journal of Mass Spectrometry. 45 (2), 167-177 (2010).
  21. Zoerner, A. A., et al. Simultaneous UPLC-MS/MS quantification of the endocannabinoids 2-arachidonoyl glycerol (2AG), 1-arachidonoyl glycerol (1AG), and anandamide in human plasma: Minimization of matrix-effects, 2AG/1AG isomerization and degradation by toluene solvent extraction. Journal of Chromatography B. 883-884, 161-171 (2012).
  22. Ivanov, I., Borchert, P., Hinz, B. A simple method for simultaneous determination of N-arachidonoylethanolamine, N-oleoylethanolamine, N-palmitoylethanolamine and 2-arachidonoylglycerol in human cells. Analytical and Bioanalytical Chemistry. 407 (6), 1781-1787 (2015).
  23. Keereetaweep, J., Chapman, K. D. Lipidomic Analysis of Endocannabinoid Signaling: Targeted Metabolite Identification and Quantification. Neural Plasticity. , (2016).
  24. Folch, J., Lees, M., Sloane Stanley, G. H. A simple method for the isolation and purification of total lipides from animal tissues. Journal of Biological Chemistry. 226 (1), 497-509 (1957).
  25. Zoerner, A. A., et al. Quantification of endocannabinoids in biological systems by chromatography and mass spectrometry: a comprehensive review from an analytical and biological perspective. Biochimica et Biophysica Acta. 1811 (11), 706-723 (2011).

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на использование текста или рисунков этого JoVE статьи

Запросить разрешение

Смотреть дополнительные статьи

151C elegansdeuterated2 AGdauerMAGsHPLC MS MS

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Конфиденциальность

Условия эксплуатации

Политика

СВЯЖИТЕСЬ С НАМИ

РЕКОМЕНДОВАТЬ БИБЛИОТЕКЕ

НОВОСТИ JoVE

Исследования

Образование

АВТОРЫ

Библиотекарь

О JoVE

Авторские права © 2025 MyJoVE Corporation. Все права защищены