JoVE Logo

Войдите в систему

Для просмотра этого контента требуется подписка на Jove Войдите в систему или начните бесплатную пробную версию.

В этой статье

  • Резюме
  • Аннотация
  • Введение
  • протокол
  • Результаты
  • Обсуждение
  • Раскрытие информации
  • Благодарности
  • Материалы
  • Ссылки
  • Перепечатки и разрешения

Резюме

Здесь мы описываем новый метод выявления успешного установления общего кровообращения двух парабионтов через инъекцию caudal вен глюкозы, которая вызывает минимальный ущерб и не является фатальной для парабионтов.

Аннотация

Парабиоз является экспериментальным методом хирургического объединения двух параллельных животных вдоль продольной оси тела. Мы представляем протокол для обнаружения успешного установления химеризма крови в парабионтах путем инъекции caudal вен глюкозы. Были построены парабиотические мыши. Глюкоза вводилась в донорскую мышь через хвостовую вену, и колебания уровня глюкозы в крови измерялись у обеих мышей с помощью глюкометра крови в разное время. Наши результаты показали, что после инъекции глюкозы уровень глюкозы в крови у мышей-доноров резко повысился после 1 мин и медленно снизился после этого. Между тем, уровень глюкозы в крови мышей-реципиентов достиг 15 мин после инъекции. Аналогичные результаты были получены с Эванс синий, используется в качестве положительного контроля для глюкозы. Синхронные колебания уровня глюкозы в крови свидетельствуют о том, что кровоток между двумя мышами был успешно установлен.

Введение

Парабиоз является методом моделирования, в котором два живых организма соединяются хирургическим путем и развиваются как единая физиологическая система с общей системой кровообращения1. Такие модели широко используются для изучения физиологии, что объясняется тем преимуществом, что вещества, производимые одним человеком, могут действовать на обоих животных одновременно через общую систему кровообращения. С середины 1800-х годов, когда парабиотические эксперименты были впервые Пол Берт2, методы для построения парабиотических моделей стали стандартизированы. Однако простого и удобного метода проверки успешного создания кровного химеризма не хватает. Было сообщено, что перекрестный оборот может быть успешно оцененин интраперитонеально инъекционных 0,5% Эванс синий краситель в одном из парабионтов следуют измерения абсорбции Эванс синий в крови обоих парабионтов с микроплитой читателя3. Другой метод требует определенной породы мышей, которая содержит CD45.1-и CD45.2-помеченные моноциты в каждом парабионте. Клеточная цитометрия затем используется для определения химеризма крови путем измерения частоты двух маркеров в моноцитах из селезенки или крови4. Тем не менее, эти методы часто являются смертельными или громоздкими для животных, и безопасный и простой метод для быстрой и надежной проверки парабиотических моделей является весьма желательным. В этом исследовании мы создали новый метод для этой цели, который был проверен в мышиной модели парабиоза. Концентрация глюкозы в образцах крови, взятых из хвостовой вены, измеряется с помощью глюкометра, а модель изменений уровня глюкозы у мышей-доноров и реципиентов считается признаком циркуляции химеризма. Мы назвали этот метод «методом колебаний глюкозы». Применение этого метода проверки не ограничивается мышами, но может быть распространено на различные патологические модели, за исключением тех, с серьезнымдисрегрецией метаболизма глюкозы. Процедура проста, экономия времени и безопасна.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

протокол

Все процедуры, связанные с животными и их уходом, были одобрены Институциональным комитетом по уходу за животными и использованию Харбинского медицинского университета.

ПРИМЕЧАНИЕ: Инструменты и оборудование, необходимые для метода,перечислены в таблице материалов.

1. Подготовка материалов и животных

  1. Закажите C57BL/6 мышей мужского пола весом от 20 г-25 г у стандартного поставщика лабораторных животных.
  2. Дом мышей в цикле 12 ч света: 12 ч темноты при 24'26 C с ad libitum доступ к воде и пище.

2. Парабиоз

  1. Анестезия мышей путем интраперитонеальной инъекции 20 г/л 2,2,2-трибромоэтанола в концентрации 0,1 мл/10 г. Подтвердите правильное обезболивание, о чем свидетельствует расслабление мышц, медленное и устойчивое дыхание, потеря рефлектора стимуляции кожи и исчезновение рефлектора роговицы.
  2. Нанесите офтальмологическую мазь с помощью наконечника, чтобы предотвратить сухость глаз.
  3. Выполните процедуру парабиоза, как ранее описано5.
    1. Поместите мышей в положение лежа. Тщательно побрить левую сторону одной мыши и правую сторону другой мыши, начиная примерно на 1 см выше локтя до 1 см ниже колена с электрической бритвой. Используйте крем для депилатория, чтобы полностью очистить мех на бритой коже.
    2. Протрите бритые участки с йодофоном. Поместите мышей на подогрев омытой подушечки, покрытую стерильной подушечкой.
    3. Создавайте продольные разрезы кожи, начиная с 0,5 см выше локтя до 0,5 см ниже коленного сустава, используя с помощью острых ножниц на бритой стороне каждого животного.
    4. Отсоедините кожу от подкожной фасции осторожно после разреза.
    5. Соедините олекранон и колено парабионта с 3-0 шов.
    6. Шов побрился на коже с непрерывным 5-0 швом.
  4. Вводят 0,5 мл 0,9% NaCl подкожно каждой мыши для предотвращения обезвоживания.
  5. Вводят трамадол (10 мг/25 г/день) к каждой мыши, чтобы облегчить боль.

3. Проверка циркуляции химеризма

  1. Метод колебаний глюкозы
    ПРИМЕЧАНИЕ: Проверьте успешное построение циркуляции химеризма между парабионтами с помощью метода колебаний глюкозы (без голодания) на 10-й день после операции на парабиозе.
    1. Анестезия парабионтов путем интраперитонеальной инъекции 20 г/л 2,2,2-трибромоэтанола для каждой мыши в концентрации 0,1 мл/10 г.
    2. Исправить донора мышей в венозной визуально-мыши хвост фиксатор.
    3. Натрите хвостовые вены на фланге хвоста одного из парабионтов ватным тампоном, пропитанным 70–75% алкоголя, чтобы очистить хвост и раскидывать кровеносные сосуды.
    4. Держите 1,0 мл шприца, содержащего глюкозу в правой руке и держать иглу параллельно вены (менее 15 " ).
    5. Вставьте иглу в положении примерно 2'4 см от кончика хвоста.
    6. Впрыските донору 100 кл. глюкозы (1,2 г/кг) в течение 10 с.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Термин донор относится к парабионт, который получает инъекцию глюкозы через хвост вены. Получателем является другой парабионт, который не получает глюкозу напрямую.
    7. Очистите носы с помощью йодофора. Отрежьте ножницами носовые части ног донора и реципиента и соберите каплю крови в разное время после инъекции глюкозы (1 мин, 5 мин, 10 мин, 15 мин, 20 мин, 30 мин, 40 мин, 50 мин и 60 мин). Удалите сгусток крови в каждом моменте сбора времени, чтобы избежать большего ущерба.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Объем собранной крови составил 10-25 ул для одного теста, и 90-225 ул в общей сложности.
    8. Капать кровь в центр глюкометра тест-полоски для обнаружения уровня глюкозы.
  2. Используйте синий counterstain Эвана в качестве положительного контроля3.
    1. Впрыските 200 л синего противозатоста Эвана в донорскую мышь.
    2. 2 ч спустя, эвтаназии парабионтов путем интраперитонеальной инъекции 20 г / l 2,2,2-трибромотанола для каждой мыши в концентрации 0,2 мл/10 г, и собирать кровь из обоих парабионтов путем пробива.
    3. Центрифуг и образцы крови на 916 х г в течение 15 мин.
    4. Соберите сыворотку от супернатанта.
    5. Разбавить сыворотку с 0,9% NaCl в 1:50.
    6. Измерьте абсорбцию разбавленных образцов сыворотки на уровне 620 нм с помощью спектрофотометра.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Результаты

У шести мышей-доноров уровень глюкозы в крови резко повысился до 26,5 мкм/л (173% при увеличении) в среднем на 1 мин после инъекции 100 кЛ глюкозы (1,2 г/кг) через хвостовую вену, а затем постепенно снижался до 13,3 мкм/л при 60 мин. У мышей-реципиентов уровень глюкозы в крови медленн?...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Обсуждение

Парабиоз относится к хирургической технике соединения двух живых животных для создания общей сосудистой системы экспериментальными средствами6,7,8. Преимущество этой модели заключается в том, что вещества, производимые одним человеко...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Раскрытие информации

Авторам нечего раскрывать.

Благодарности

Эта работа была поддержана Национальным фондом науки о природе Китая (81570399 и 817737335), Национальной ключевой программой исследований и разработок Китая - Научно-исследовательским проектом модернизации традиционной китайской медицины (2017YFC1702003) и Хэй Лонг Цзян Выдающийся молодежный научный фонд (JC2017020).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Материалы

NameCompanyCatalog NumberComments
curved forcepsJZ surgical Instruments, ChinaJ31340
fine scissorsJZ surgical Instruments, ChinaWA1030
needle forcepJZ surgical Instruments, China60017961
2.5 mL syringesAgilent, USA5182-9642
TribromoethanoSigma-Aldrich, USAT48402-5G
penicillinSolarbio, ChinaIP0150
tramadolYijishiye, ChinaYJT712520
glucometerRoche Diabetes Care, IndianaAccu-Chek Active test strips
Evan's blue CounterstainSolarbio, ChinaG1810
depilatory creamNair, USALL9161
Warming Blanket (Heating pad)Kent Scientific Corp, USATP-22G
Electrical shaverCodos, ChinaCP-5000
3-0,5-0
surgical suture
Shanghai Medical Suture Needle Factory, ChinaSYZ 3-0#, SYZ 5-0#

Ссылки

  1. Baruch, K., et al. Aging-induced type I interferon response at the choroid plexus negatively affects brain function. Science. 346 (6205), 89-93 (2014).
  2. Zhang, Y., et al. Positional cloning of the mouse obese gene and its human homologue. Nature. 372 (6505), 425-432 (1994).
  3. Torres, M., et al. Parabiotic model for differentiating local and systemic effects of continuous and intermittent hypoxia. Journal of Applied Physiology (1985). 118 (1), 42-47 (2015).
  4. Loffredo, F. S., et al. Growth differentiation factor 11 is a circulating factor that reverses age-related cardiac hypertrophy. Cell. 153 (4), 828-839 (2013).
  5. Kamran, P., et al. Parabiosis in mice: a detailed protocol. Journal of Visualized Experiments. (80), e50556(2013).
  6. Conboy, M. J., Conboy, I. M., Rando, T. A. Heterochronic parabiosis: historical perspective and methodological considerations for studies of aging and longevity. Aging Cell. 12 (3), 525-530 (2013).
  7. Eggel, A., Wyss-Coray, T. A revival of parabiosis in biomedical research. Swiss Medical Weekly. 144, w13914(2014).
  8. Brack, A. S. Ageing of the heart reversed by youthful systemic factors! EMBO Journal. 32 (16), 2189-2190 (2013).
  9. Wu, J. M., et al. Circulating cells contribute to cardiomyocyte regeneration after injury. Circulation Research. 116 (4), 633-641 (2015).
  10. Kaiser, J. 'Rejuvenation factor' in blood turns back the clock in old mice. Science. 344 (6184), 570-571 (2014).
  11. Rando, T. A., Finkel, T. Cardiac aging and rejuvenation--a sense of humors? New England Journal of Medicine. 369 (6), 575-576 (2013).
  12. Heidt, T., et al. Differential contribution of monocytes to heart macrophages in steady-state and after myocardial infarction. Circulation Research. 115 (2), 284-295 (2014).
  13. McPherron, A. C. Through thick and thin: a circulating growth factor inhibits age-related cardiac hypertrophy. Circulation Research. 113 (5), 487-491 (2013).
  14. Villeda, S. A., et al. Young blood reverses age-related impairments in cognitive function and synaptic plasticity in mice. Nature Medicine. 20 (6), 659-663 (2014).
  15. Katsimpardi, L., et al. Vascular and neurogenic rejuvenation of the aging mouse brain by young systemic factors. Science. 344 (6184), 630-634 (2014).
  16. Starzl, T. E., et al. The lost chord: microchimerism and allograft survival. Immunology Today. 17 (12), 577-584 (1996).
  17. Coleman, D. L. A historical perspective on leptin. Nature Medicine. 16 (10), 1097-1099 (2010).
  18. Salpeter, S. J., et al. Systemic regulation of the age-related decline of pancreatic beta-cell replication. Diabetes. 62 (8), 2843-2848 (2013).
  19. Sheldon, R. D., et al. Gestational exercise protects adult male offspring from high-fat diet-induced hepatic steatosis. Journal of Hepatology. 64 (1), 171-178 (2016).
  20. Martineau, M. G., et al. The metabolic profile of intrahepatic cholestasis of pregnancy is associated with impaired glucose tolerance, dyslipidemia, and increased fetal growth. Diabetes Care. 38 (2), 243-248 (2015).
  21. Wang, F., Liu, Y., Yuan, J., Yang, W., Mo, Z. Compound C Protects Mice from HFD-Induced Obesity and Nonalcoholic Fatty Liver Disease. International Journal of Endocrinology. 2019, 3206587(2019).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на использование текста или рисунков этого JoVE статьи

Запросить разрешение

Смотреть дополнительные статьи

156

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Исследования

Образование

О JoVE

Авторские права © 2025 MyJoVE Corporation. Все права защищены