JoVE Logo
АВТОРЫ
СВЯЖИТЕСЬ С НАМИ

Войдите в систему

Для просмотра этого контента требуется подписка на Jove Войдите в систему или начните бесплатную пробную версию.

В этой статье

  • Резюме
  • Аннотация
  • Введение
  • протокол
  • Результаты
  • Обсуждение
  • Раскрытие информации
  • Благодарности
  • Материалы
  • Ссылки
  • Перепечатки и разрешения

Резюме

Протокол, описанный здесь, описывает быстрый и эффективный метод измерения нейтрализующих антител против спайкового белка SARS-CoV-2 путем оценки способности реконвалесцентных образцов сыворотки ингибировать инфекцию усиленным зеленым флуоресцентным белком меченым вирусом везикулярного стоматита, псевдотипизированным с шиповым гликопротеином.

Аннотация

Поскольку пандемия COVID-19, вызванная тяжелым острым респираторным синдромом коронавируса 2 (SARS-CoV-2), продолжает развиваться, стало очевидно, что наличие нейтрализующих антител против вируса может обеспечить защиту от будущей инфекции. Таким образом, поскольку создание и трансляция эффективных вакцин против COVID-19 продолжается с беспрецедентной скоростью, разработка быстрых и эффективных методов измерения нейтрализующих антител против SARS-CoV-2 будет становиться все более важной для определения долгосрочной защиты от инфекции как для ранее инфицированных, так и для иммунизированных лиц. В этой статье описывается высокопроизводительный протокол с использованием вируса везикулярного стоматита (VSV), псевдотипизированного с шиповым белком SARS-CoV-2, для измерения наличия нейтрализующих антител в реконвалесцентной сыворотке у пациентов, которые недавно выздоровели от COVID-19. Использование реплицируемого псевдотипного вируса устраняет необходимость в объекте сдерживания уровня 3, необходимом для обработки SARS-CoV-2, что делает этот протокол доступным практически для любой лаборатории уровня сдерживания 2. Использование формата 96 скважин позволяет одновременно запускать множество образцов с коротким временем обработки 24 ч.

Введение

В декабре 2019 года был выявлен новый коронавирус, который мы теперь знаем как SARS-CoV-2, возбудитель коронавирусной болезни 2019 (COVID-19)1. SARS-CoV-2 — бетакоронавирус, принадлежащий к семейству Coronaviridae. Эти вирусы в оболочке содержат большой геном РНК с положительным смыслом и ответственны за респираторные и кишечные инфекции как у людей, так и уживотных2. По состоянию на май 2021 года во всем мире зарегистрировано более 157 миллионов случаев COVID-19 и более 3,2 миллиона смертей3. Разработка эффективной вакцины стала основной целью исследователей по всему миру, по крайней мере, 77 доклинических вакцин находятся в стадии исследования и 90 в настоящее время проходят клинические испытания4.

Коронавирусы кодируют четыре структурных белка, включая спайк-белок (S), нуклеокапсид (N), белок оболочки (E) и мембранный белок (M). Вступление SARS-CoV-2 требует взаимодействия рецептор-связывающего домена (RBD) S с рецептором хозяина, человеческим ангиотензинпревращающим ферментом 2 (hACE2) и последующим слиянием мембран после протеолитического расщепления клеточной сериновой протеазой хозяина, трансмембранной протеазой серином 2 (TMPRSS2)5,6,7,8,9,10 . Гуморальная иммунодоминальность S-белка SARS-CoV была ранее сообщена и теперь показана также для SARS-CoV-211,12,13. Действительно, нейтрализующие реакции антител против S были обнаружены у выздоравливающих сывороток пациентов с SARS-CoV через 24 месяца после заражения14,что подчеркивает их критическую роль в долгосрочном иммунном ответе. Белок S был идентифицирован как перспективная мишень для вакцин и, таким образом, стал ключевым компонентом большинства разрабатываемых вакцин15,16.

Хотя быстрое выявление нейтрализующих антител является критическим аспектом разработки вакцины, оно может также пролить свет на уровень инфицирования и сероэпидемиологический надзор в затронутых районах17. Компетентный к репликации VSV псевдотипизированный с гликопротеином SARS-CoV-2 S вместо гликопротеина VSV дикого типа для изучения инфекции SARS-CoV-2 в условиях биобезопасности уровня 2 был любезно пожертвован Уиланом и его коллегами18. VSV-экспрессирующий спайк (VSV-S) будет использоваться для определения нейтрализующего ответа антител против спайкового белка SARS-CoV-2. Поскольку VSV-S, используемый здесь, также экспрессирует усиленный зеленый флуоресцентный белок (eGFP), очаги eGFP могут быть обнаружены в течение 24 ч для количественной оценки инфекции, тогда как образование бляшек может занять от 48 до 72 ч. Здесь обобщен простой и эффективный протокол определения способности выздоравливающей сыворотки пациента нейтрализовать инфекцию VSV-S-eGFP. Этот метод также может быть легко адаптирован для опроса других потенциальных терапевтических средств, которые направлены на нарушение взаимодействия хозяина с вирусом белка SARS-CoV-2 S.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

протокол

1. Покрывающие клетки (День 1) для производства и количественной оценки псевдовируса SARS-CoV-2

  1. Подготовка к посеву тканей
    1. Теплый 1x фосфатно-буферный физиологический раствор Dulbecco (DPBS); Модифицированная орлиная среда (DMEM) от Dulbecco, содержащая 10% фетальной бычий сыворотки (FBS) и 1% пенициллина/ стрептомицина (необязательно); и 0,25% трипсин-этилендиаминтрубтеановой кислоты (ЭДТА) до 37 °C на водяной бане в течение приблизительно 15 мин.
    2. Продезинфицируйте вытяжку для культивирование тканей 70% этанолом и поместите посуду для культивирование тканей, пипетки Пастера и серологические пипетки в вытяжку для культивирование тканей по мере необходимости. Удалите PBS, DMEM и трипсин с водяной бани и продезинфицируйте 70% этанолом перед помещением в вытяжку для культивации тканей.
  2. Покрытие и обслуживание ячеек
    1. Выращивайте клетки Vero E6 в DMEM (содержащих 10% FBS) в колбах для культуры тканей T75 или 15 см тканевых культур в инкубаторе с 37 °C с 5% CO2. Прохождение клеток по мере необходимости, когда клетки на 80-90% сливаются.
    2. Промыть ячейки, добавив в каждую посуду по 1 мл 1x PBS и осторожно покачивая 4-5 раз; аспирировать PBS. Добавьте 3 мл трипсина-ЭДТА в каждое блюдо, покачайте пластину, чтобы вся поверхность была покрыта. Инкубируют клетки при 37 °C с 5% CO2 в течение приблизительно 5 мин или до тех пор, пока клетки не отделятся.
    3. Добавьте 7 мл DMEM (содержащего 10% FBS) для деактивации трипсина и повторно суспендируйте клетки, пипетируя вверх и вниз несколько раз. Раскрутите клетки, чтобы удалить трипсин с помощью настольную центрифугу при 500 × г в течение 5 мин, аспирировать жиму, не нарушая клеточную гранулу, и повторно суспендировать клетки в 10 мл DMEM (содержащего 10% FBS). Если клетки необходимы для будущих экспериментов, поместите 1 мл в новую посуду, содержащую 15 мл свежего DMEM (содержащего 10% FBS).
    4. Подсчитайте клетки с помощью автоматизированного счетчика клеток или гемоцитометра и добавьте приблизительно 1 ×10 7 клеток на каждую пластину 15 см и инкубируют при 37 °C с 5% CO2 до тех пор, пока они не будут 100% слитыми (1-2 дня).

2. Препарат для псевдовируса VSV-S-EGFP

  1. Инфекция
    1. Инфицировать клетки при кратности инфекции (MOI) 0,01 вирусом VSV-S-eGFP в 12 мл бессывороточного DMEM в течение 1 ч при 37 °C с 5% CO2, изредка раскачивая пластины. Замените инокуляту свежим DMEM (содержащим 2% FBS и 20 мМ HEPES, рН 7,7) и перейдите в инкубатор, установленный на 34 °C с 5% CO2.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Для распространения VSV-S-eGFP в клеточной культуре требуется температура 34 °C.
    2. Собирают клеточные супернатанты при наблюдении обширного цитопатической эффекта (КПЭ) и отслойки клеток, примерно через 48 ч после заражения. Используйте флуоресцентный микроскоп для визуализации обширной экспрессии eGFP инфицированными клетками, начиная с 24 ч после заражения.
  2. Коллекция
    1. Центрифугировать супернатанты с помощью настольная центрифуги в течение 5 мин при 1000 × г при 4 °C для удаления остатков клеток. Aliquot - супернатант, чтобы избежать многократных циклов замораживания-оттаивания, и хранить при -80 °C.

3. Титрование псевдовируса VSV-S-eGFP

  1. Серийное разведение для определения титра вируса
    1. Пластинчатые ячейки Vero E6 на 6-скважинных пластинах при плотности посева 6 × 105 клеток на скважину в DMEM (с 10% FBS) и инкубируют в течение ночи при 37 °C с 5% CO2.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Также можно использовать ячейки Vero, которые чрезмерно экспрессируют TMPRSS2 и hACE2.
    2. Установите 10-кратную серию последовательного разведения вируса VSV-S-eGFP в dmEM без холодной сыворотки, поместив 900 мкл среды в семь микроцентрифужных пробирок. Этикетные тубы от 1 до 7. Добавьте 100 мкл вирусного запаса в первую трубку и кратковременно вихрь. Перенос 100 мкл разбавленного вируса из пробирки 1 в пробирку 2 и кратковременно вихрь; продолжать до трубки 7.
    3. Аспирировать среду из всех скважин 6-скважинной пластины, содержащей ячейки Vero E6, и заменить 500 мкл разбавлениями от 10-2 до 10-7. Инкубировать пластины в течение 45 мин при 37 °C с 5% CO2,осторожно раскачивая каждые 15 мин.
    4. Аспирировать инокуляту и заменить наложением, содержащим 1:1 смесь 2x DMEM и 6% карбоксиметилцеллюлозы (CMC), конечную концентрацию 3% CMC, дополненную 10% FBS; инкубировать при 34 °C с 5% CO2 в течение 48 ч.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Предварительно разогрейте накладную смесь на водяной бане при 37 °C в течение 15 минут на этапе заражения. Вместо КМЦ можно использовать смесь 1:1 из 1% агарозы с 2x DMEM, дополненной 10% FBS. Для наложения с агарозой кипятят 1% агарозу (в dH2O) и смешивают с холодным 2x DMEM. Убедитесь, что смесь имеет подходящую температуру перед добавлением в монослой ячейки (приблизительно 37-40 °C). Если для наложения используется агароза, клетки должны быть зафиксированы путем инкубации в 2 мл метанола: уксусной кислоты 3: 1 в течение не менее одного часа до окрашивания.
  2. Окрашивание и расчет вирусного титра
    1. Визуализируйте бляшки путем окрашивания кристаллическим фиолетовым или прямой визуализации eGFP под флуоресцентным микроскопом.
    2. Чтобы окрасить пластины, аспирировать накладку, промыть один раз PBS, затем добавить в каждую скважину 2 мл 0,1% кристаллической фиалки (в 80% метанола и dH2O). Поместите на пластину коромысла примерно на 20 мин при комнатной температуре перед окрашиванием. Удалите кристалл фиолетового цвета и осторожно вымойте каждую скважину дважды, используя dH2O или PBS.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Этапы промывки и окрашивания следует выполнять осторожно, медленно пипетируя в сторону каждой скважины, чтобы монослой ячейки оставался нетронутым на протяжении всей процедуры.
    3. Дайте пластинам высохнуть не менее 1 ч, прежде чем считать бляшки. Убедитесь, что количество бляшек получено из колодцев, содержащих от 20 до 200 бляшек. Чтобы рассчитать титр вируса в бляшеобразующих единицах (ПФУ) на мл, умножьте коэффициент разбавления подсчитанный объем инфекции скважины и разделите это число от бляшек, присутствующих в соответствующей скважине.
      figure-protocol-6456

4. Покрытие клеток (День 1) для измерения нейтрализации псевдовируса SARS-CoV-2 коммерчески доступными антителами и выздоравливающей сывороткой пациента

  1. Подготовка к посеву тканей
    1. Подготовьте вытяжку для культивирование среды и тканей, как описано в разделе 1. Кроме того, подготовить необходимое количество 96 плит скважин для размещения не менее 2 реплик на образец (т.е. 1 пластина на 6 образцов); добавьте дополнительные реплики, если это разрешено образцом тома.
  2. Покрытие и обслуживание ячеек
    1. Выращивайте и поддерживайте клетки Vero E6, как описано в разделе 1. Готовят по меньшей мере 10 мл клеточной суспензии на 96-ю скважинную пластину в концентрации 2 ×10 5 клеток на мл (пластина 1,5 ×10 5 клеток на мл для анализов, выполненных через 48 ч, если это необходимо). Добавьте 100 мкл клеточной суспензии в каждую скважину 96-скважинной пластины с помощью многоканальной пипетки и инкубировать в течение 24 ч при 37 °C с 5% CO2.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Хорошо перемешайте клеточную суспензию и аккуратно покачайте каждую пластину во всех направлениях, чтобы обеспечить равномерное распределение ячеек.

5. Разведения антител или сыворотки и инфекции (День 2)

ПРИМЕЧАНИЕ: Этот протокол может быть применен для измерения нейтрализации VSV-S-eGFP как коммерчески доступными антителами, так и сывороткой пациента, а также сывороткой, собранной у животных для доклинических исследований разработки вакцины. *Обратите внимание на дополнительные шаги, перечисленные при обработке образцов сыворотки пациента / животного.

  1. Серия последовательного разбавления
    1. Перед разбавливанием образцов сыворотки нагревайте каждый образец на водяной бане с температурой 56 °C в течение 30 мин для инактивации комплемента. Обеспечить необходимые меры предосторожности при обращении с образцами пациентов; открывайте контейнеры для образцов только в вытяжке для культивирование тканей и обеспечьте нанос средств индивидуальной защиты соответствующего уровня защиты уровня 2.
    2. Установите серию разбавления в пустую 96-скважинную пластину (пластина 1).
    3. Начинают все разведения в ряде А 96-колодезной пластины в 80 мкл. * Для образцов пациентов начинают серию разведения с 1 из 10, помещая 8 мкл сыворотки в 72 мкл DMEM без сыворотки (с 1% пенициллина/стрептомицина).
      ПРИМЕЧАНИЕ: Концентрация нейтрализующих антител будет зависеть от активности, прогнозируемой производителем. Для нейтрализующего антитела SARS-CoV-2 Spike, используемого здесь (см. Таблицу материалов),начните с 5 мкг/мл, чтобы наблюдать, по крайней мере, 50% нейтрализацию.
    4. Добавьте 40 мкл бессывороточного DMEM (с 1% пенициллина/стрептомицина) в ряды B-G и 80 мкл в ряд H. Не добавляйте вирус в строку H, так как он служит в качестве элемента управления только для клеток.
    5. Используя 12-скважинную многоканальную пипетку, смешайте и перенесите 40 мкл разбавленной сыворотки или антитела из ряда A в ряд B. Перемешайте и повторите до ряда F, отбросьте 40 мкл из ряда F. Не добавляйте сыворотку в строку G, поскольку она представляет собой контрольную строку, в которую вложен только вирус.
  2. Заражение и наложение
    1. Подготовьте соответствующий объем разбавленного VSV-S-eGFP для обработки каждой скважины при MOI 0,05 (или 2000 pfu). (При завершении этого расчета имейте в виду, что только 60 мкл из общего объема в 80 мкл будут перемещены в клетки; поэтому обязательно умножьте объем вируса на 1,33, чтобы сохранить 2000 pfu).
      ПРИМЕЧАНИЕ: Поскольку VSV-S-eGFP чувствителен к температуре, убедитесь, что вирусные запасы остаются на льду, когда они не используются, и избегайте многократных циклов замораживания-оттаивания, поскольку титры будут отличаться после повторного замораживания.
    2. Добавьте 40 мкл разбавленного вируса в каждую скважину рядами от А до G пластины 1 и перемешайте путем пипетки вверх и вниз 4-5 раз. Инкубировать пластину в течение 1 ч при 37 °C с 5% CO2.
    3. Извлеките пластину, содержащую клетки, из инкубатора (пластина 2) и осторожно аспирировать жимы из всех колодцев. Переложить 60 мкл смеси антитела/вируса с пластины 1 на пластину 2 и инкубировать в течение 1 ч при 37 °C с 5% CO2,раскачивая пластину каждые 20 мин.
    4. Засыпать каждую скважину 140 мкл наложения, содержащего КМЦ в ДМЭМ, для конечной концентрации 3% КМЦ (с 10% ФБС и 1% пенициллина/стрептомицина). Поместите пластину 2 в инкубатор при 34 °C с 5% CO2 примерно за 24 ч перед визуализацией.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Предварительно разогрейте накладную смесь на водяной бане при 37 °C в течение 15 минут на этапе заражения.

6. Визуализация и количественная оценка (День 3)

  1. Изображения пластин с использованием автоматизированного флуоресцентного томообразователь (с использованием фильтра изотиоцианата флуоресцеина (FITC) или альтернативного фильтра с длиной волны возбуждения 488 нм). Количественная оценка вирусной инфекции путем создания протокола, который автоматически идентифицирует и подсчитывает отдельные очаги eGFP. Если функция автоматического подсчета недоступна, используйте программное обеспечение ImageJ для количественной оценки количества очагов eGFP.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Результаты

В этом протоколе описан быстрый и эффективный метод обнаружения нейтрализующих антител против белка SARS-CoV-2 S путем ингибирования псевдовирусной инфекции VSV-S-eGFP (количественно определяемой по потере обнаруженных очагов eGFP). Схематическое представление протокола показано на

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Обсуждение

Метод, описанный здесь, может быть адаптирован к различным лабораторным средам и ресурсам по мере необходимости. Важно отметить, что основным ограничением этого протокола является необходимость защиты пространства уровня 2 и вытяжки культуры тканей. Применение реплицируемого РНК-вир?...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Раскрытие информации

Авторы не имеют конкурирующих финансовых интересов, связанных с этой публикацией.

Благодарности

Мы хотели бы поблагодарить лабораторию Уилана за щедрое предоставление вируса VSV-S-eGFP, используемого в этом протоколе (описанного в Case et al. 2020). Мы также благодарим докторов Билла Кэмерона и Ютапорна Коуэна (и команду) за сбор образцов крови пациента (идентификатор протокола REB 20200371-01H). Авторы раскрывают получение следующей финансовой поддержки для исследования, авторства и / или публикации этой статьи: Эта работа была профинансирована щедрой поддержкой Фонда больницы Оттавы и грантом от Канадских институтов исследований в области здравоохранения (#448323) и быстрым грантом от фонда Thistledown для науки о COVID-19 C.S.I. T.R.J. финансируется стипендией для выпускников Онтарио и кластерной стипендией Mitacs. JP финансируется кластерной стипендией Mitacs. T.A. финансируется CIHR Banting Fellowship. Мы также хотели бы поблагодарить всех людей, которые приняли участие и сдали свои образцы крови для этого исследования.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Материалы

NameCompanyCatalog NumberComments
0.25% trypsin-EDTA (Gibco)Fisher scientificLS25200114
ArrayScan VTI HCSThermo Fisher ScientificAutomated fluorescent imager
carboxymethyl celluloseSigmaC5678
Dulbecco's modified Eagle's medium (Gibco)Fisher scientific10-013-CV
Dulbecco's modified Eagle's medium (Powder) (Gibco)Thermo Fisher Scientific12-800-017
Dulbecco’s Phosphate-Buffered Saline (DPBS)Fisher scientific21-031-CV
HEPESFisher scientificBP-310-500
IgG Isotype Control (mouse)Thermo Fisher Scientific31903
Penicillin/streptomycinThermo Fisher Scientific15070063
SARS-CoV-2 (2019-nCoV) Spike Neutralizing Antibody, Mouse MabSinoBiological40592-MM57
Vero E6 cellsATCC CRL-1586

Ссылки

  1. Hu, B., Guo, H., Zhou, P., Shi, Z. L. Characteristics of SARS-CoV-2 and COVID-19. Nature Reviews Microbiology. 19 (3), 141-154 (2021).
  2. Burrell, C. J., Howard, C. R., Murphy, F. A. Coronaviruses. Fenner and White's Medical Virlogy. , 437-446 (2017).
  3. COVID-19 Map. Johns Hopkins Coronavirus Resource Center. , Available from: https://coronavirus.jhu.edu/map.html (2021).
  4. Zimmer, C., Corum, J., Wee, S. L. Covid-19 vaccine tracker. The New York Times. , Available from: https://www.nytimes.com/interactive/2020/science/coronavirus-vaccine-tracker.html (2021).
  5. Hoffmann, M., et al. SARS-CoV-2 cell entry depends on ACE2 and TMPRSS2 and is blocked by a clinically proven protease inhibitor. Cell. 181 (2), 271-280 (2020).
  6. Letko, M., Marzi, A., Munster, V. Functional assessment of cell entry and receptor usage for SARS-CoV-2 and other lineage B betacoronaviruses. Nature Microbiology. 5, 562-569 (2020).
  7. Azad, T., et al. Nanoluciferase complementation-based bioreporter reveals the importance of N-linked glycosylation of SARS-CoV-2 Spike for viral entry. Molecular Therapy. , (2021).
  8. Brown, E. E. F., et al. Characterization of critical determinants of ACE2-SARS CoV-2 RBD interaction. International Journal of Molecular Sciences. 22 (5), 2268(2021).
  9. Azad, T., et al. SARS-CoV-2 S1 NanoBiT: a Nanoluciferase complementation-based biosensor to rapidly probe SARS-CoV-2 receptor recognition. Biosensors and Bioelectronics. 180, 113122(2021).
  10. Azad, T., et al. Implications for SARS-CoV-2 vaccine design: Fusion of Spike glycoprotein transmembrane domain to receptor-binding domain induces trimerization. Membranes. 10 (9), 215(2020).
  11. Cao, Z., et al. Potent and persistent antibody responses against the receptor-binding domain of SARS-CoV spike protein in recovered patients. Virology Journal. 7, 299(2010).
  12. To, K. K. W. Temporal profiles of viral load in posterior oropharyngeal saliva samples and serum antibody responses during infection by SARS-CoV-2: an observational cohort study. The Lancet Infectious Diseases. 20 (5), 565-574 (2020).
  13. Gao, Q., et al. Development of an inactivated vaccine candidate for SARS-CoV-2. Science. 369 (6499), 77-81 (2020).
  14. Liu, W., et al. Two-year prospective study of the humoral immune response of patients with severe acute respiratory syndrome. Journal of Infectious Diseases. 193 (6), 792-795 (2006).
  15. Dong, Y., et al. A systematic review of SARS-CoV-2 vaccine candidates. Signal Transduction and Targeted Therapy. 5 (1), 237(2020).
  16. Amanat, F., Krammer, F. SARS-CoV-2 vaccines: Status report. Immunity. 52 (4), 583-589 (2020).
  17. Amanat, F., et al. A serological assay to detect SARS-CoV-2 seroconversion in humans. Nature Medicine. 26 (7), 1033-1036 (2020).
  18. Case, J. B., et al. Neutralizing antibody and soluble ACE2 inhibition of a replication-competent VSV-SARS-CoV-2 and a clinical isolate of SARS-CoV-2. Cell Host and Microbe. 28 (3), 475-485 (2020).
  19. Garcia-Beltran, W. F., et al. Journal Pre-proof COVID-19 neutralizing antibodies predict disease severity and survival. Cell. 184 (2), 476-488 (2020).
  20. Zeng, C., et al. Neutralizing antibody against SARS-CoV-2 spike in COVID-19 patients, health care workers, and convalescent plasma donors. JCI insight. 5 (22), (2020).
  21. Whitman, J. D., et al. Evaluation of SARS-CoV-2 serology assays reveals a range of test performance. Nature Biotechnology. 38 (10), 1174-1183 (2020).
  22. Ainsworth, M., et al. Performance characteristics of five immunoassays for SARS-CoV-2: a head-to-head benchmark comparison. The Lancet Infectious Diseases. 20 (12), 1390-1400 (2020).
  23. Sharifkashani, S., et al. Angiotensin-converting enzyme 2 (ACE2) receptor and SARS-CoV-2: Potential therapeutic targeting. European Journal of Pharmacology. 884, 173455(2020).
  24. Burki, T. Understanding variants of SARS-CoV-2. The Lancet. 397 (10273), 462(2021).
  25. Jayamohan, H., et al. SARS-CoV-2 pandemic: a review of molecular diagnostic tools including sample collection and commercial response with associated advantages and limitations. Analytical and Bioanalytical Chemistry. 413 (1), 49-71 (2020).
  26. Nie, J., et al. Quantification of SARS-CoV-2 neutralizing antibody by a pseudotyped virus-based assay. Nature Protocols. 15 (11), 3699-3715 (2020).
  27. Crawford, K. H. D., et al. Protocol and reagents for pseudotyping lentiviral particles with SARS-CoV-2 spike protein for neutralization assays. Viruses. 12 (5), 513(2020).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на использование текста или рисунков этого JoVE статьи

Запросить разрешение

Смотреть дополнительные статьи

172SARS CoV 2COVID 19

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Конфиденциальность

Условия эксплуатации

Политика

СВЯЖИТЕСЬ С НАМИ

РЕКОМЕНДОВАТЬ БИБЛИОТЕКЕ

НОВОСТИ JoVE

Исследования

Образование

АВТОРЫ

Библиотекарь

О JoVE

Авторские права © 2025 MyJoVE Corporation. Все права защищены