Количественная оценка активных форм кислорода с использованием 2',7'-дихлорфлуоресцеина диацетатного зонда и проточной цитометрии в глиальных клетках Мюллера

Резюме

Здесь мы предлагаем систематизированный, доступный и воспроизводимый протокол для обнаружения клеточных активных форм кислорода (АФК) с использованием 2',7'-дихлорфлуоресцеина диацетатного зонда (DCFH-DA) в глиальных клетках Мюллера (MMC). Этот метод количественно оценивает общие клеточные уровни АФК с помощью проточного цитометра. Этот протокол очень прост в использовании, подходит и воспроизводим.

Аннотация

Окислительно-восстановительный баланс играет важную роль в поддержании клеточного гомеостаза. Увеличение генерации активных форм кислорода (АФК) способствует модификации белков, липидов и ДНК, что, в конечном итоге, может привести к изменению клеточной функции и гибели клеток. Поэтому клеткам полезно повышать свою антиоксидантную защиту в ответ на вредные оскорбления, либо активируя антиоксидантный путь, такой как Keap1 / Nrf2, либо улучшая окислительно-восстановительные поглотители (витамины A, C и E, β-каротин и полифенолы, среди прочих). Воспаление и окислительный стресс участвуют в патогенезе и прогрессировании ретинопатий, таких как диабетическая ретинопатия (ДР) и ретинопатия недоношенных (РН). Поскольку глиальные клетки Мюллера (MMC) играют ключевую роль в гомеостазе нервной ткани сетчатки, они считаются идеальной моделью для изучения этих клеточных защитных механизмов. В этом смысле количественная оценка уровней АФК с помощью воспроизводимого и простого метода имеет важное значение для оценки вклада путей или молекул, которые участвуют в механизме защиты антиоксидантных клеток. В этой статье мы приводим полное описание процедур, необходимых для измерения АФК с помощью зонда DCFH-DA и проточной цитометрии в МГК. Ключевые этапы обработки данных проточной цитометрии с помощью программного обеспечения приведены здесь, поэтому читатели смогут измерять уровни АФК (геометрические средства FITC) и анализировать флуоресцентные гистограммы. Эти инструменты очень полезны для оценки не только увеличения АФК после клеточного инсульта, но и для изучения антиоксидантного эффекта определенных молекул, которые могут обеспечить защитный эффект на клетки.

Введение

Нервная сетчатка представляет собой очень организованную ткань, которая представляет собой четко определенные нейронные слои. В них нейроны (ганглиозные, амакриновые, биполярные, горизонтальные и фоторецепторные клетки) взаимосвязаны друг с другом, а также с глиальными клетками Мюллера (MGC) и астроцитами, что приводит к адекватной фототрансдукции и обработке визуальной информации ^1,2. Известно, что MMC играют важную роль в поддержании гомеостаза сетчатки, потому что они пересекают весь отдел сетчатки и, таким образом, могут взаимодействовать со всеми типами клеток, которые модулируют несколько защитных процессов. Сообщалось, что MMC имеют несколько важных функций для поддержания и выживания нейронов сетчатки, включая гликолиз для обеспечения энергией нейронов, удаление нейронных отходов, рециркуляцию нейротрансмиттеров и высвобождение нейротрофических факторов, среди прочих ^3,4,5.

С другой стороны, воспаление, окислительный и нитрозативный стресс участвуют в патогенезе и прогрессировании многих заболеваний человека, включая ретинопатии ^{6,7,8,9,10,11}. Окислительно-восстановительный баланс в клетках зависит от жесткой регуляции уровней АФК. АФК постоянно вырабатываются в физиологических условиях в результате в основном аэробного дыхания. Основные члены семейства АФК включают реакционноспособные свободные радикалы, такие как супероксидный анион (O_2͘͘͘͘^•-), гидроксильные радикалы (^•OH), различные пероксиды (ROOR'), гидропероксиды (ROOH) и безрадикальный перекись водорода (_H2O₂)^12,13. В последние годы стало очевидно, что АФК играет важную сигнальную роль в клетках, контролируя основные процессы. МГК обладают сильной антиоксидантной защитой за счет активации транскрипционного ядерного фактора эритроид-2, связанного с фактором 2 (Nrf2) и последующей экспрессии антиоксидантных белков для устранения избыточной продукции АФК при патологических состояниях 14,15,16. Когда клетки теряют свой окислительно-восстановительный баланс из-за преувеличенной выработки АФК или дефектной способности удалять АФК, накопление окислительного стресса способствует вредным модификациям в белках, липидах и ДНК, что приводит к клеточному стрессу или смерти. Увеличение системы антиоксидантной защиты сетчатки улучшает разрешение и профилактику ретинопатий, таких как РН и РД 17,18,19,20,21,22,23,24. Поэтому измерение производства АФК в режиме реального времени является мощным и полезным инструментом.

Существует несколько методов измерения продукции АФК или окислительного стресса в клетках. Среди них зонд 2',7'-дихлорфлуоресцеина диацетата (DCFH-DA) является одним из наиболее широко используемых методов прямой количественной оценки окислительно-восстановительного состояния клетки 25,26,27,28. Этот зонд является липофильным и нефлуоресцентным. Диффузия этого зонда через клеточную мембрану позволяет его расщепляться внутриклеточными эстеразами на двух эфирных связях, производя относительно полярный и непроницаемый клеточной мембраной продукт, 2',7'-дихлорфлуоресцеин (_H2DCF). Эта нефлуоресцентная молекула накапливается внутриклеточным путем, и последующее окисление АФК дает высокофлуоресцентный продукт DCF. Окисление зонда является продуктом действия нескольких типов АФК (пероксинитрит, гидроксильные радикалы, оксид азота или пероксиды), которые могут быть обнаружены с помощью проточной цитометрии или конфокальной микроскопии (эмиссия при 530 нм и возбуждение при 485 нм). Ограничение этого метода заключается в том, что супероксид и перекись водорода не сильно реагируют с H₂DCF^25,29. В этой статье мы используем зонд DCFH-DA для измерения и количественной оценки АФК с помощью проточной цитометрии. По этой причине мы индуцируем производство АФК, стимулируя MMC индуктором АФК, А или В, перед загрузкой ячеек флуоресцентным зондом. Кроме того, мы используем антиоксидантное соединение. Наконец, мы показываем репрезентативные и достоверные данные, полученные с помощью этого протокола.

протокол

ПРИМЕЧАНИЕ: Буферные композиции см. в таблице 1.

1. Подготовка клеточной культуры

ПРИМЕЧАНИЕ: Здесь описана культуральная подготовка клеток MIO-M1, спонтанно увековеченной глиальной клеточной линии Мюллера человека (Moorfield's/Institute of Ophthalmology- Müller 1). Всегда используйте правильную асептическую технику и работайте в ламинарной вытяжке.

1. Подготовьте модифицированную среду Dulbecco Eagle's medium (DMEM) в комплекте. К ДМЭМ, содержащим 4,5 г/л D-глюкозы и 110 мг/л пирувата натрия, добавляют 10% термоинактивированного ФБС, 10 мМ 4-(2-гидроксиэтил)-1-пиперазинэтансульфоновая кислота (HEPES), 2 мМ L-глутамина и 50 ЕД/мл пенициллина/стрептомицина. Подготовьте свежую среду, в день клетки MIO-M1 будут разморожены.
2. Разморозьте замороженные клетки MIO-M1 на 1-й день.
   1. Для этого удалите криовиал, содержащий 5 х 10⁵ клеток MIO-M1 в FBS с 10% DMSO из хранилища жидкого азота и немедленно поместите его в водяную баню с температурой 37 °C.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Всегда носите маску для лица или защитные очки, так как криовиалы, хранящиеся в жидком азоте, представляют риск взрыва при размораживании.
   2. Быстро разморозьте клетки MIO-M1 (менее чем за 1 мин), нагревая флакон на водяной бане 37 °C, пока во флаконе не останется только небольшой кусочек льда.
   3. Протрите внешнюю сторону флакона 70% этанолом и переложите его в ламинарный вытяжку.
   4. Перенесите размороженные клетки из флакона во стерильную трубку объемом 15 мл, а затем добавьте 6 мл предварительно нагретой полной среды DMEM по каплям.
   5. Центрифугируйте клеточную суспензию приблизительно 600 х г в течение 5 мин. После центрифугирования будет визуализирован прозрачный супернатант и полная гранула. Выбросьте супернатант пипеткой, не нарушая гранулу клетки.
   6. Осторожно диссоциируют гранулу и повторно суспендируют клетки в 10 мл полной среды DMEM. Переложите эту клеточную суспензию в тканевую культуральную пластину диаметром 100 мм и инкубируйте пластину в течение приблизительно 2 дней при 37 °C, 5% CO₂.
3. Когда клетки MIO-M1 станут 80%-90% сливающимися на 4-й день, выполните следующие действия.
   1. Переложите пластину в ламинарный вытяжку из инкубатора. Осторожно удалите супернатант и промыть 2 раза 5 мл стерильного и предварительно подогретого ПБС. Аспирировать PBS.
   2. Дозируют 1 мл 0,5% раствора трипсина-ЭДТА и инкубируют при 37 °C в инкубаторе_CO2 в течение 3-5 мин для отделения клеток.
   3. Добавьте 7 мл полной среды DMEM, чтобы ингибировать действие трипсина. Дезагрегирование кластеризованных трипсинизированных MMC путем медленного пипетирования вверх и вниз (P1000). Соберите клеточную суспензию в пробирку объемом 15 мл.
   4. Центрифуга при 600 х г в течение 5 мин. Выбросьте супернатант. Осторожно повторно суспендируйте гранулу ячейки в 2 мл полной среды DMEM. Переложите 1 мл этой клеточной суспензии в пластину толщиной 100 мм, содержащую 9 мл предварительно нагретой полной DMEM-среды.
   5. Повторите действие с другой пластиной толщиной 100 мм. Инкубируйте пластину в течение примерно 1 дня при 37 °C в 5% CO₂ инкубаторе.
4. Когда обе пластины станут сливающимися на 80%-90% (на 6-й день), переложите пластину в ламинарный вытяжку. Выполните шаг 1.3. для получения ячейки гранулы.
5. Осторожно диссоциируют гранулу и повторно суспендируют клетки в 5 мл полной среды DMEM. Подсчитайте клетки MIO-M1 с помощью гемоцитометра (камера Нойбауэра) и раствора трипан синего цвета, выполнив следующие действия.
   1. Поместите стеклянную крышку на центральную зону камеры Нойбауэра. Поместите камеру на ровную поверхность (например, стол или верстак).
   2. Смешайте с клетками равный объем синего пятна трипана. Например, смешайте 60 мкл трипан-синего с 60 мкл клеток для разведения 1:2.
   3. Из этой смеси загрузите 10 мкл с микропипеткой в камеру Нойбауэра.
   4. Поместите загруженную камеру Нойбауэра на ступень микроскопа. Затем включите свет и отрегулируйте яркость.
   5. Переместите ступень микроскопа в оптимальное положение и отрегулируйте фокус до получения четкого изображения клеток.
   6. Подсчитайте ячейки внутри четырех квадратов (разделенных на 16), расположенных в углу гемоцитометра (объем: 0,1 мм³ в каждом).
   7. Рассчитайте концентрацию ячеек, используя приведенные ниже уравнения.
      Концентрация = (Количество ячеек x 10.000)/Количество квадратов
      Концентрация = (Количество ячеек x 10.000)/4
      Концентрация = Количество ячеек x 2500
      ПРИМЕЧАНИЕ: Если проводится разбавление клеток, полученная концентрация должна быть преобразована в первоначальную концентрацию до разбавления.
      Концентрация = (Количество ячеек x 2500 x 2) = (Количество ячеек x 5000 клеток/мл)
   8. Отрегулируйте клеточную суспензию до 1 x 10⁵ ячеек/мл в полной среде DMEM и пластину 2 мл этой клеточной суспензии в 6-луночную пластину (2 x 10⁵ ячеек/лунку). Аккуратно встряхните тарелку, чтобы равномерно распределить клетки. Инкубируйте 6-луночную плиту в течение ночи при 37 °C в инкубаторе с 5% CO₂.

2. Условия анализа и контроль

1. Включите следующие экспериментальные элементы управления для каждого эксперимента:
   1. Управление автофлуоресценцией (ячейки без зонда DCFH-DA, управление настройкой параметров проточного цитометра).
   2. Базальный контроль (нестимулированные клетки).
   3. Положительный контроль (клетки, обработанные индуктором АФК, А или В).
   4. Отрицательный контроль (клетки, обработанные антиоксидантным соединением)
   5. Образец (клетки, обработанные антиоксидантным соединением и индуктором АФК, А или В).

3. Выполнение анализа

ПРИМЕЧАНИЕ: Анализ проводится на 7 день. Всегда используйте правильную асептическую технику и работайте в ламинарной вытяжке, если не указано иное.

1. Готовят с низким содержанием сывороточного DMEM. Добавка DMEM, содержащая 4,5 г/л D-глюкозы и 110 мг/л пирувата натрия с 0,5% термоинактивированным FBS,10 мМ HEPES, 2 мМ L-глутамина и 50 ЕД/мл пенициллина/стрептомицина. Приготовьте свежую среду в день, когда MIO-M1 будет обработан.
2. Перенесите 6-луночную плиту (слияние 60%-70%) на ламинарный проточной вытяжке из инкубатора. Аспирируйте супернатант и промывайте клетки в 1 раз PBS. Добавьте 2 мл низкого сывороточного DMEM на лунку и инкубируйте 6-луночную пластину в течение 2 ч при 37 °C, 5% CO₂. Это делается для того, чтобы уморить клетки голодом.
3. После голодания сыворотки обрабатывают клетки антиоксидантным соединением в течение 6 ч.
   1. Аспирировать супернатант и добавить 2 мл разбавленного вещества к следующим состояниям: отрицательный контроль (клетки, обработанные антиоксидантным соединением) и образец (клетки, обработанные антиоксидантным соединением и индуктором АФК, А или В).
   2. Инкубировать плиту из 6 скважин в течение 6 ч при 37 °C, 5% CO₂.
      ПРИМЕЧАНИЕ: При использовании другого антиоксидантного соединения или ингибитора АФК стандартизируйте оптимальное время и концентрацию для стимулов.
4. После 6 ч инкубации обрабатывают клетки индуктором АФК, А или В, в течение 30 мин.
   1. Добавьте стимулы к следующим состояниям: положительный контроль (клетки, обработанные индуктором АФК, А или В) и пробные колодцы (клетки, обработанные антиоксидантным соединением и индуктором АФК, А или В).
      ПРИМЕЧАНИЕ: Держите запасы растворов на льду.
   2. Инкубировать 6-луночную плиту в течение 30 мин при 37 °C, 5% CO₂.
      ПРИМЕЧАНИЕ: При использовании другого индуктора АФК правильно стандартизируйте оптимальное время и концентрацию для стимулов.
5. Загрузите ячейки с помощью зонда DCFH-DA.
   1. Аспирируйте супернатант и промывайте клетки в 6-луночной пластине 3x с PBS, чтобы удалить все раздражители.
   2. Выключите свет ламинарного проточного капюшона и работайте в темноте. Приготовьте разбавление 1:1000 5 мМ раствора зонда DCFH-DA для получения конечной концентрации 5 мкМ DCFH-DA в DMEM без фенол-красного цвета в пробирке 15 мл.
   3. Осторожно перемешайте с помощью вихря и добавьте 1 мл этого раствора в следующие скважины: базальный контроль (нестимулированные клетки), положительный контроль (клетки, обработанные индуктором АФК), отрицательный контроль (клетки, обработанные антиоксидантным соединением) и пробные колодцы (клетки, обработанные антиоксидантным соединением и индуктором АФК, А или В).
   4. Добавьте 1 мл DMEM без фенольного красного цвета в контрольные ячейки автофлуоресценции.
   5. Инкубировать 6-луночную плиту в течение 30 мин при 37 °C, 5% CO₂.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Зонд светочувствительный. Выбросьте весь неиспользованный раствор зонда.

4. Подготовка клеток к проточной цитометрии

1. Через 6 ч держите тарелку на льду. Начиная с этого шага, нет необходимости использовать правильную асептическую технику и работать в ламинарной вытяжке.
2. Промыть ячейки 3 раза 2 мл холодного ПБС на лунку. Добавьте 0,5 мл буфера холодного отсоединения в каждую скважину. Соберите клетки, аккуратно пипетируя вверх и вниз с помощью пипетки P1000.
3. Собирают их в меченые пробирки по 1,5 мл и центрифугу при 600 х г в течение 5 мин при 4 °C.
   ПРИМЕЧАНИЕ: При сборе клеток избегайте образования пузырьков, установив пипетку P1000 на 0,4 мл. Начиная с этого шага, работайте быстро.
4. Когда центрифугирование закончится, положите на лед меченые трубки объемом 1,5 мл с ячейками. Осторожно отбросьте надосадочный материал и осторожно диссоциируйте гранулу клетки постукиванием.
5. Добавьте 1 мл буфера FACS в каждую маркированную трубку объемом 1,5 мл для промывки клеток. При необходимости используют вихрь при его наименьшей интенсивности для полной диссоциации клеточной гранулы. Центрифугируйте их при 600 х г в течение 5 мин при 4 °C. Повторите эти шаги еще в 2 раза. (Всего три стирки).
6. Когда последняя промывка заканчивается, маркируют 5 мл полистирольных трубок круглого дна (проточные цитометрические трубки) для всех экспериментальных условий (см. этап 2.).
7. Когда центрифугирование закончится, повторно суспендируйте гранулы ячейки в 200 мкл буфера FACS. Осторожно диссоциируют гранулу в каждой трубке объемом 1,5 мл с помощью вихря. Переложить на маркированные трубки круглого дна объемом 5 мл. Держите трубки на льду до тех пор, пока они не будут проанализированы на проточном цитометре.

5. Сбор данных в проточном цитометре

1. Используя программное обеспечение для проточной цитометрии, создайте новый эксперимент. Для этого в строке меню перейдите в раздел Эксперимент и нажмите Новый эксперимент (Ctrl+E).
2. Кроме того, в строке меню перейдите в раздел Вид и щелкните следующие параметры: Панель инструментов, Строка состояния, Браузер, Цитометр, Инспектор, Лист, Панель мониторинга получения и Двухконферентный редактор , чтобы увидеть эти окна в рабочей области.
3. Слева от программного обеспечения щелкните Specimen_001 . Откроется список трубок (Tube_001, Tube_002 и т.д.). Чтобы пометить трубки для элементов управления и различных экспериментальных условий, дважды щелкните Tube_001, Tube_002 и т. д. и переименуйте их (см. шаг 2.).
4. Выберите каналы/параметры для анализа (FSC, SSC, FITC и APC или любой другой фторхром, чтобы увидеть квадрант) в первой трубке из настроек цитометра эксперимента.
5. Щелкните значок Текущий указатель трубки , чтобы выбрать трубку, и значок изменится на зеленый. Поместите трубку «управления автофлуоресценцией» на рычаг аспиратора, осторожно перемещая основание только влево.
   1. Чтобы запустить образец "Элемент управления автофлуоресценцией", перейдите в окно Панель мониторинга сбора и щелкните Получить данные. Откройте точечный график для FSC (по оси X) и SSC (по оси Y).
   2. Быстро отрегулируйте прямое и боковое напряжение рассеяния, чтобы события отображались на графике. В окне Панель мониторинга приобретения нажмите кнопку Остановить получение. В данном эксперименте использовались следующие настройки напряжения: FSC – 200 В, SSC – 423 В.
6. Чтобы установить напряжение FITC, запустите «положительный контроль (клетки, обработанные индуктором АФК, A или B)». Отрегулируйте напряжение так, чтобы все события отображались на гистограмме FITC. В этом случае используют напряжение 280 В. В окне Панель мониторинга приобретения нажмите кнопку Остановить получение.
7. Снова поместите трубку «управления автофлуоресценцией» на рычаг аспиратора. В окне Панель мониторинга сбора щелкните Получить данные, затем Записать данные и выберите требуемые условия остановки (например, 50 000 событий). Нарисуйте ворота вокруг интересующих клеток, исключив мертвые клетки и мусор.
   ПРИМЕЧАНИЕ: Они наблюдаются как гораздо меньшие события, чем основная клеточная популяция, и появляются в левом нижнем углу графика.
8. Когда сбор закончится, снимите трубку с рычага аспиратора. Оборудование будет мыться само. В окне Панель мониторинга приобретения щелкните Next Tube и запустите базальный элемент управления (нестимулированные ячейки). Щелкните Получить данные, а затем Записать данные.
   1. Из начального затвора (затвора, который исключает мертвые ячейки и мусор) создайте еще один точечный график FITC (по оси X) против APC (по оси Y). Нарисуйте затвор квадранта и отрегулируйте координаты, чтобы визуализировать события в левом нижнем квадранте графика FITC против APC.
9. Для записи следующих образцов извлеките трубку и нажмите кнопку Следующая трубка > Получить данные > Запись данных.
   ПРИМЕЧАНИЕ: Проточный цитометр, используемый здесь (см. Таблицу материалов), регистрирует максимум 1 x 10⁶ событий на трубку.
10. Когда запись всех трубок закончится, экспортируйте данные на диск D. Для этого щелкните Файл > Экспорт > файлы FCS > Выберите версию 3.0 или 3.1.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Хотя сбор данных с помощью одного программного обеспечения (см. Таблицу материалов) подробно описан в этом протоколе, может быть использовано любое другое программное обеспечение для проточной цитометрии. Параметры сбора (FSC, SSC и FITC) могут быть установлены таким же образом для получения результатов.

6. Анализ полученных данных

1. Откройте программное обеспечение и добавьте образцы с помощью кнопки действия Добавить образцы ; он расположен на панели задач или в группе навигации.
   1. Нажмите кнопку Добавить образцы.
   2. С помощью файлового обозревателя перейдите в папку Experimental.
   3. Выберите экспериментальную папку и нажмите кнопку Выбрать.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Файлы образцов загружаются как часть группы "Все образцы" в рабочую область.
2. Дважды щелкните первый образец в рабочей области: Управление автофлуоресценцией.
   ПРИМЕЧАНИЕ: Это действие открывает окно Графика, отображающее события вдоль параметров прямого рассеяния (FSC-A по оси X) и бокового рассеяния (SSC-A по оси Y).
3. Нарисуйте полигональные ворота, чтобы изолировать интересующие клетки, исключив мертвые клетки и мусор.
   1. Щелкните инструмент «Полигональные ворота ».
   2. Щелкните внутри участка, чтобы составить ворота полигона. Сделайте столько сторон, сколько необходимо.
   3. Дважды щелкните в последней точке, чтобы закрыть полигон и создать нужные ворота.
   4. Укажите имя шлюза, например "Ячейки MIO-M1", и нажмите ok.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Появится новое окно графика, отображающее только события MIO-M1 без мертвых клеток и мусора.
   5. Повторите со всеми образцами для анализа.
4. Измените график на гистограмму. Для этого щелкните метку параметра оси X и выберите FITC-A. Щелкните метку параметра оси Y и выберите Гистограмма. Это изменяет график на одномерную гистограмму.
5. Добавьте статистику с помощью окна Добавить статистику.
   1. Ниже графика гистограммы нажмите добавить статистику. Программа откроет новое окно статистики.
   2. В левой части нового окна выберите статистику Геометрическое Среднее.
   3. Выберите ячейки популяции MIO-M 1.
   4. Из списка доступных параметров выберите FIT-C.
   5. Нажмите кнопку Добавить , чтобы применить их к анализу.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Это создает новую статистику "геометрическое среднее: FITC" в дереве выборки, и их значения отображаются в вашей рабочей области.
6. Поместите эти геометрические средние значения в статистическую программу и проанализируйте.
7. Щелкните значок L , чтобы открыть редактор макетов; этот значок находится на вкладке Меню в рабочей области. Расположите окно рабочей области и редактор макета рядом.
   ПРИМЕЧАНИЕ: Редактор макетов представляет собой отдельное окно рабочей области с инструментами для отображения нескольких графиков и статистики в простом графическом отчете. Это может быть экспортировано с файлом расширения, который вы предпочитаете, например, PDF или JPG, среди прочих.
   1. Из дерева захвата образца в окне Рабочая область перетащите популяцию ячеек MIO-M 1 в редактор макета.
   2. Убедитесь, что график гистограммы, содержащий события в шлюзе, отображается в редакторе макетов. Дополнительная основная информация будет подробно описана в текстовом поле ниже.
   3. Перетащите все образцы, чтобы сравнить их на одном графике. Программа будет перекрывать их.
   4. Щелкните правой кнопкой мыши график гистограммы и выберите Свойства. Программа откроет новое окно Определение графа. Это окно имеет четыре вкладки (Аннотация, Шрифты, Легенда и Указать). Перейдите на вкладку Указать и измените ось Y с Автоматической на Модальную. Нажмите кнопку Применить.
   5. Щелкните образец правой кнопкой мыши и измените раскраску, стиль линии, вес линии и т. д., чтобы персонализировать график.
   6. Чтобы экспортировать изображение, перейдите на вкладку Файл и сразу после этого выберите Сохранить изображение в группе Документ. Выберите предпочтительный тип файла изображения (например, PDF).
      ПРИМЕЧАНИЕ: Откроется диалоговое окно сохранения с предложением выбрать место сохранения. Нажмите кнопку Сохранить.
8. Сохраните анализ в виде файла рабочей области (WSP-файла).
   1. В левом верхнем углу щелкните значок Анализ цитометрии и выберите Сохранить как.
   2. Выберите Сохранить как рабочую область (WSP), чтобы сохранить документ с данными и анализом.
   3. Введите имя файла рабочей области.
   4. Нажмите кнопку Сохранить.

Результаты

Как описано в разделе протокола, мы показали репрезентативные и количественные данные, демонстрирующие обнаружение продуцирования АФК с помощью флуоресцентного зонда DCFH-DA из клеток MIO-M1, стимулируемых индуктором АФК, А или В. Как и ожидалось, мы наблюдали изменения флуоресценции FITC в н?...

Обсуждение

Некоторые патологические состояния, такие как рак, воспалительные заболевания, ишемия / реперфузия, ишемическая болезнь сердца, диабет и ретинопатии, а также физиологические ситуации, такие как старение, приводят к перепроизводству АФК ^{6,7,8,9,10,11}

Материалы

Name	Company	Catalog Number	Comments
2′,7′-DCFH-DA	Sigma	35845-1G
4-(2-hydroxyethyl)-1-piperazineethanesulfonic acid (HEPES)	Gibco by life technologies	15630-080
BD FACSCanto II flow cytometer	BD Biosciences	FACSCanto
BD FACSDiva software	BD Biosciences
Cell Culture Dishes 100x20 mm	Cell Star- Greiner Bio-One	664 160
Centrifuge	Thermo	Sorvall legend micro 17 R
Centrifuge Tubes (15 ml)	BIOFIL	CFT011150
Centrifuge Tubes (50 ml)	BIOFIL	CFT011500
Cryovial	CRYO.S - Greiner Bio-One	126263
Dimethyl Sulfoxide	Sigma-Aldrich	W387520-1KG
Disodium-hydrogen-phosphate heptahydrate	Merck	106575
DMEM without phenol red	Gibco by life technologies	31053-028
Dulbecco’s modified Eagle’s medium (DMEM)	Gibco by life technologies	11995065
Ethylenediamine Tetraacetic Acid (EDTA), Disodium Salt, Dihydrate	Merck	324503
Fetal Bovine Serum	Internegocios
FlowJo v10 Software	BD Biosciences
Glucose	Merck	108337
hemocytometer, Neubauer chamber	BOECO,Germany
Laminar flow hood	ESCO	AC2-6E8
L-glutamine (GlutaMAX)	Gibco by life technologies	A12860-01
MitoSOX Red	Invitrogen	M36008
Penicillin/Streptomycin	Gibco by life technologies	15140-122
Potassium Chloride	Merck	104936
Potassium-dihydrogen phosphate	Merck	4878
Round polystyrene tubes 5 ml (flow cytometry tubes)	Falcon - Corning	BD-352008
Sodium Azide	Merck	822335
Sodium Chloride	Merck	106404
Sodium Hydroxide	Merck	106462
SPINWIN Micro Centrifuge Tube 1.5 ml	Tarson	500010-N
Tissue Culture Plate 6 well	BIOFIL	TCP011006
Trypan Blue	Merck	111732
Trypsin-EDTA 0.5% 10X	Gibco by life technologies	15400-054
Vortex Mixer	Labnet International, Inc.