Для просмотра этого контента требуется подписка на Jove Войдите в систему или начните бесплатную пробную версию.
Method Article
* Эти авторы внесли равный вклад
Микрокомпьютерная томография (мкКТ) — это неразрушающий метод визуализации, который играет важную роль в оценке структуры костной ткани в доклинических исследованиях, однако до сих пор нет единого мнения о процедурах μКТ для анализа костной мозоли. В этом исследовании представлен пошаговый протокол μКТ, который позволяет контролировать заживление перелома.
Микрокомпьютерная томография (мкКТ) является наиболее распространенным методом визуализации для характеристики трехмерной (3D) морфологии кости и новообразованной кости во время заживления переломов в трансляционных научных исследованиях. Исследования заживления переломов длинных костей у грызунов обычно включают вторичное заживление и образование минерализованной мозоли. Форма образовавшейся мозоли и плотность новообразованной кости могут существенно различаться в зависимости от времени и лечения. В то время как стандартные методики количественной оценки параметров интактной кортикальной и трабекулярной кости широко используются и встроены в коммерчески доступное программное обеспечение, существует отсутствие консенсуса по процедурам анализа заживающей мозоли. Целью данной работы является описание стандартизированного протокола, который количественно оценивает объемную долю костной ткани и минеральную плотность каллуса в заживающей мозоли. Протокол описывает различные параметры, которые следует учитывать во время визуализации и анализа, включая выравнивание образца во время визуализации, размер интересующего объема и количество срезов, которые оконтуриваются для определения каллуса.
Микрокомпьютерная томография (мкКТ) широко используется в доклинических исследованиях костей, обеспечивая неинвазивные изображения с высоким разрешением для оценки микроструктуры костей 1,2,3,4,5. МикроКТ включает в себя большое количество рентгеновских изображений, полученных с вращающегося образца или с помощью вращающегося источника рентгеновского излучения и детектора. Алгоритмы используются для реконструкции объемных 3D-данных в виде стопки срезов изображения. Клиническая КТ является золотым стандартом для 3D-визуализации костей человека, а μКТ является широко используемым методом оценки эффективности заживления костей у экспериментальных животных 1,2,3,4,6,7. Минерализованная кость имеет отличный контраст для рентгена, в то время как мягкие ткани имеют относительно слабый контраст, если не используется контрастное вещество. При оценке заживления перелома микроКТ генерирует изображения, которые предоставляют подробную информацию о 3D-структуре и плотности минерализованной каллуса. Компьютерная томография in vivo также может быть использована для продольной оценки заживления перелома во времени.
Количественная оценка интактной кортикальной и трабекулярной кости с помощью микроКТ в целом хорошо известна и стандартизирована8. Несмотря на то, что в доклинических исследованиях используются различные методики количественной оценки для анализа заживления переломов 9,10,11, подробный протокол анализа изображений мкКТ для количественного определения каллуса еще не опубликован. Поэтому целью данного исследования является предоставление подробного пошагового протокола для микроКТ-визуализации и анализа костной мозоли.
Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.
Следующий протокол был разработан для характеристики длиннокостной мозоли, полученной от усыпленных мышей. Тем не менее, большинство этапов могут быть применены к крысам, а также использованы для сканирования сломанных костей in vivo . Протокол описывает конкретную систему микроКТ и конкретное программное обеспечение для обработки, анализа и визуализации изображений (см. Таблицу материалов), однако методология в целом применима и к другим сканерам и программному обеспечению. Протокол был одобрен Комитетом по уходу за животными и их использованию Медицинского колледжа Университета штата Пенсильвания. Мышами, использованными в этом исследовании, были 16-недельные самцы мышей C57BL/6J (средний вес 31,45 ± 3,2 г).
1. Заготовка и консервация тканей
ПРИМЕЧАНИЕ: Используйте подходящую модель мышиного перелома. Для данного исследования использовалась модель среднедиафизарного открытого перелома большеберцовой кости в соответствии со стандартным протоколом, описанным в12,13.
2. Сканирование микрокомпьютерной томографии
Рисунок 1: Структура настраиваемого сканирующего приспособления. (A) Изображения сканирующего приспособления (вверху), показывающие шесть слотов для образцов и фантом HA (внизу). (B) Изображения, показывающие образец длинной кости (вверху) и фантом HA (внизу), помещенные в специальные слоты. (C) Изображения, показывающие сканирующее приспособление, помещенное в шприц диаметром 20 мм. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы увидеть увеличенную версию этого рисунка.
3. Сегментация изображений
ПРИМЕЧАНИЕ: Изображения в формате RAW автоматически восстанавливаются в соответствии с данными последовательности изображений.
Рисунок 2: Сегментация изображения. (A) Изображение, показывающее шесть образцов в рамках одного сканирования. (B) Обрезка изображения для изоляции отдельных образцов. (C) Цифровое выравнивание для исправления смещения продольной оси (желтая пунктирная линия). (D) Определение ВОИ и плоскости центра мозоли. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы увидеть увеличенную версию этого рисунка.
4. Анализ изображений
Рисунок 3: Сегментация наружной границы каллуса. (А) Контур внешней границы каллуса (красная линия). (B) Контуры на срезах, взятых поперек VOI (красные срезы). (C) 3D-метка каллуса, созданная путем интерполяции (красный объем). (D) Поперечный срез каллусной метки, показанной на рисунке C (включая кортикальную кость). Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы увидеть увеличенную версию этого рисунка.
Рисунок 4: Сегментация кортикальной кости. (А) Контур надкостничной поверхности коры (зеленая линия). (B) Контуры на срезах, взятых поперек VOI (зеленые срезы). (C) 3D-метка кортикальной кости (содержащая костномозговую полость; зеленая) и мозоль (красная), созданная из интерполированных меток надкостничной коры и мозоли. (D) Поперечный срез мозоли (красный) и кортикальной кости (содержащей интрамедуллярную полость; зеленый). Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы увидеть увеличенную версию этого рисунка.
Рисунок 5: Преобразование единиц измерения шкалы серого в BMD. (A) Контуры цилиндра HA на первом и последнем срезах (красные кружки). (B) 3D-интерполированные цилиндры HA (слева) и поперечные сечения (справа). Коричневый: самая высокая плотность ГК; синий: вторая по величине плотность ГК; фиолетовый: третья по величине плотность ГК; зеленый: четвертая по величине плотность HA. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы увидеть увеличенную версию этого рисунка.
Рисунок 6: Сегментация минерализованной каллусной поверхности . (A) Минерализованная мозоль (≥250 мгГА/куб. см) показана синим цветом, остальная часть мозоли (<250 мгГА/куб. см) показана красным цветом, а пространство, соответствующее исходной кости, показано зеленым цветом. (B) 3D-вид каждой изолированной этикетки. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы увидеть увеличенную версию этого рисунка.
Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.
Для мониторинга костеобразования во время заживления переломов у взрослых самцов мышей C75BL/6J индуцировали открытый перелом большеберцовой кости средней диафизарной формы. Перелом был стабилизирован с помощью интрамедуллярного гвоздя, установленной модели вторичного заживления
Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.
Целью данного исследования является описание подробного протокола микроКТ-анализа с целью точного количественного определения 3D-минерализованной каллусной структуры, которая часто является основополагающей в исследованиях заживления костей и переломов. Протокол использует соврем...
Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.
У авторов нет конфликта интересов, который можно было бы раскрыть.
Эта работа была поддержана Национальными институтами здравоохранения (NIH) R01 DK121327 для R.A.E и R01 AR071968 для F.K.
Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.
Name | Company | Catalog Number | Comments |
10% neutral buffered formalin | Fisher chemical | SF100-20 | Used for bone tissue fixation |
Avizo | Thermo Scientific | Image processing and analysis software | |
Hydroxyapatite phantom | Micro-CT HA D4.5, QRM | QRM-70128 | |
Image Processing Language | Scanco | Used to convert raw images to DICOM images | |
Micro-Mosquito Straight Hemostatic Forceps | Medline | Used to remove the intramedullary pin | |
Microsoft Excel | Microsoft | Spreadsheet software | |
Scanco mCT system (vivaCT 40) | Scanco | Used for µCT imaging |
Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.
Запросить разрешение на использование текста или рисунков этого JoVE статьи
Запросить разрешениеThis article has been published
Video Coming Soon
Авторские права © 2025 MyJoVE Corporation. Все права защищены