Количественная оценка податливости и растяжимости нижней полой вены в модели овцы in vivo с помощью 3D-ангиографии

Резюме

Этот протокол позволяет проводить in vivo количественную оценку податливости и растяжимости вен с использованием катетеризации и 3D-ангиографии в качестве процедуры выживания, что позволяет использовать ее в различных потенциальных целях.

Аннотация

Синтетические сосудистые трансплантаты преодолевают некоторые проблемы, связанные с аллотрансплантатами, аутотрансплантатами и ксенотрансплантатами, но часто являются более жесткими и менее податливыми, чем нативный сосуд, в который они имплантируются. Соответствие соответствию нативному сосуду становится ключевым свойством для успеха трансплантата. Текущий золотой стандарт оценки соответствия судна требованиям включает в себя иссечение сосуда и двухосные механические испытания ex vivo . Мы разработали метод in vivo для оценки податливости и растяжимости вен, который лучше отражает естественную физиологию и учитывает влияние изменения давления, вызванного текущей кровью и любыми присутствующими морфологическими изменениями.

Этот метод разработан как процедура выживания, облегчающая продольные исследования и потенциально снижающая потребность в использовании животных. Наш метод включает в себя введение болюса с концентрацией физиологического раствора 20 мл/кг в венозную сосудистую сеть с последующим получением 3D-ангиограмм до и после болюса для наблюдения за изменениями, вызванными болюсом, одновременно с измерением внутрисосудистого давления в целевых областях. Затем мы можем измерить окружность и площадь поперечного сечения сосуда до и после болюса.

С помощью этих данных и внутрисосудистого давления мы можем рассчитать податливость и растяжимость с конкретными уравнениями. Этот метод был использован для сравнения податливости и растяжимости нижней полой вены у местных неоперированных овец с каналом овец, которым был имплантирован долгосрочный трансплантат из политетрафторэтилена (ПТФЭ). Было обнаружено, что нативный сосуд более податлив и растяжим, чем фторопластовый трансплантат во всех измеряемых местах. Мы приходим к выводу, что этот метод безопасно обеспечивает in vivo измерения податливости и растяжимости вен.

Введение

Пациенты с критическими аномалиями сердца нуждаются в реконструктивной хирургии. Большинство реконструктивных операций требуют использования протезных материалов, в том числе сосудистых трансплантатов. Потенциальными каналами для преодоления этого пространства являются синтетические или биологические материалы. Первоначально гомотрансплантаты использовались в качестве канала Фонтена, но с тех пор от них отказались из-за высокой частоты кальцификации и инцидентов острой фазы¹. В настоящее время используются синтетические сосудистые трансплантаты, полученные из неорганических полимеров. Остается проблема, заключающаяся в том, что эти трансплантаты менее податливы, чем нативный сосуд, в который они имплантированы, и имеют долгосрочные осложнения, такие как стеноз, окклюзия и кальцификация 1,2,3,4,5.

Структура синтетических сосудистых трансплантатов обеспечивает механическую прочность на разрыв, что приводит к их неизменно более низкой податливости по сравнению с нативной^{тканью2}. Сосудистая податливость, определяющая изменение объема сосуда при изменении давления, служит индикатором реакции сосуда на механические нагрузки. Разница между материалом трансплантата и свойствами нативного сосуда создает несоответствие податливости, которое, как было продемонстрировано, нарушает характер кровотока, что приводит к образованию зон рециркуляции и разделения потока 2,6,7,8,9. Это явление изменяет напряжение сдвига на эндотелиальной стенке и вызывает гиперплазию интимы 2,7,8,9. Такие ответы могут привести к осложнениям, связанным с трансплантатом, что потребует замены трансплантата или повторного вмешательства⁶.

Поскольку податливость сосудов играет ключевую роль в определении исходов трансплантата, точное измерение этого свойства имеет важное значение. В настоящее время золотым стандартом для измерения податливости сосудов являются трубчатые двухосные механические испытания ex vivo . Этот метод включает в себя иссечение исследуемого трансплантата или сосуда, его подключение к латексным трубкам и нагнетание давления для оценки поведения кольцевого напряжения-растяжения при различных давлениях. Податливость определяется путем сравнения давления с измерением внутреннего диаметра¹⁰. Однако методы ex vivo имеют некоторые недостатки. При оценке функциональности имплантированных графтов методом ex vivo необходимо жертвовать животными и эксплантировать графты, что делает невозможным проведение длительных обследований. Поэтому мы разработали протокол измерения соответствия in vivo .

Наша группа специализируется на разработке тканеинженерных сосудистых трансплантатов (TEVG) для использования в хирургии Фонтена для улучшения врожденного порока сердца и синдрома гипоплазии левых отделов сердца (HLHS). Последние разработки в области хирургии врожденных пороков сердца улучшили послеоперационные результаты, что привело к увеличению продолжительности жизни. Это делает долгосрочные свойства и успех имплантированного сосудистого канала все более важными. В настоящее время не существует животной модели СГЛОС, поэтому мы оцениваем наши трансплантаты в ускоренной модели интерпозиционного трансплантата нижней полой вены крупного животного (IVC). Хотя эта модель не пытается создать течение циркуляции Фонтена, она эффективно повторяет уникальные гемодинамические условия. Недавнее использование нами этого протокола in vivo продемонстрировало значительные различия в податливости трансплантата между нашим TEVG и обычными трансплантатами из расширенного политетрафторэтилена (ПТФЭ)¹¹. Поскольку это предыдущее исследование не было сосредоточено на методологии, мы провели дополнительные эксперименты, подробно описывающие этот новый метод in vivo .

Мы имплантировали синтетический трансплантат, который в настоящее время служит стандартом лечения, состоящий из расширенного политетрафторэтилена (ПТФЭ), у исследуемых животных из Дорсета и сравнили его с нативным НПВ у хирургически наивных контрольных животных. Данный протокол был выполнен на группе ПТФЭ через 5-7 лет после имплантации кондуита ПТФЭ и неоперированных контрольных животных различного возраста. Таким образом, в последующих разделах, описывающих протокол и репрезентативные результаты, мы будем иногда ссылаться на интересующую область, как, например, середину области трансплантата (мидграфта) интерпозиционного трансплантата IVC.

Этот протокол позволяет нам анализировать in vivo соответствие трубопровода из ПТФЭ, о котором известно, что он не соответствует требованиям в долгосрочной перспективе, с нативной жилой. Мы решили сравнить клинический стандартный материал, ПТФЭ, с нативной неоперированной веной. Мы выбрали долгосрочный временной момент, потому что известно, что трубопровод из ПТФЭ остается несоответствующим требованиям и склонен к образованию накипи, что еще больше снижает его соответствие¹¹. Мы решили проводить все сравнения in vivo, поскольку системные гемодинамические изменения точно отражаются в измерениях, полученных с помощью методов in vivo. В результате этого сравнения мы обнаружили, что этот протокол способен подтвердить несоответствие ПТФЭ и получить измерения податливости вен in vivo безопасным и воспроизводимым способом. Этот метод был успешно реализован в опубликованном исследовании, чтобы продемонстрировать статистически значимые различия между кондуитами ПТФЭ и тканеинженерными сосудистыми трансплантатами (TEVG) in vivo¹¹.

Общая цель этого протокола заключается в расчете податливости и растяжимости грудного НПВ в модели крупного животного овцы с использованием измерений in vivo в рамках процедуры выживания. С этой целью мы визуализировали и измерили изменения окружности и площади поперечного сечения грудного НПВ в сосудистый болюс. Мы одновременно измерили внутрисосудистое изменение давления и использовали эти измерения для расчета податливости и растяжимости. Использование 3D-ангиографии дает нам множество преимуществ, в том числе возможность корректировать вид изображения после захвата, чтобы гарантировать, что наши измерения проводятся от поперечного сечения вены, а также позволяет нам измерять несколько мест вдоль сосуда. Тремя областями, представляющими интерес в этом исследовании, были область мидграфта, а также два смежных участка анастомоза трансплантата из ПТФЭ и сопоставимые участки в нативной НПВ. Проведение экспериментов in vivo дает преимущества в оценке функциональности трансплантатов в пределах фактического потока крови и в окружении тканей и органов. Считается, что измерения, полученные с помощью этого метода, отражают фактическую функциональность трансплантатов в живом организме.

Протокол разделен на шесть основных разделов, включая предпроцедурную подготовку овец, катетеризацию, сбор исходных данных до болюса, сбор данных исследования, восстановление животных и анализ данных. В разделе, посвященном подготовке животных, мы обсуждаем седацию, инициацию анестезии и размещение оборудования для мониторинга, используемого во время процедуры катетеризации. Во втором разделе мы объясняем процесс установки двух оболочек катетера, необходимых для сбора данных. В соответствии с этим протоколом оба тубуса помещаются в правую внутреннюю яремную вену (IJV), чтобы позволить ввести в сосуд два многодорожечных катетера. Один из них будет расположен в интересующей области для регистрации изменения давления, а другой будет размещен ниже в вене для введения контрастного вещества. После установки катетеров для сравнения берется базовый предболюсный 3D-ангиограф. Сбор данных исследования начинается с подготовки болюса физиологического раствора в системе мешков под давлением для введения, обеспечения болюса физиологического раствора с регистрацией внутрисосудистого давления и снятия постболюсного 3D-ангиографа. Затем мы опишем процесс, облегчающий восстановление овец после протокола. Наконец, мы обсудим метод получения правильных изображений и поперечных измерений для анализа и статистического сравнения.

протокол

Протокол исследования был одобрен Комитетом по уходу за животными и их использованию Национальной детской больницы Исследовательского института Эбигейл Векснер (AR22-0004). Все животные получили гуманный уход в соответствии с Руководством по уходу за лабораторными животными и их использованию, опубликованным Национальными институтами здравоохранения.

1. Подготовка животных

1. За 1 неделю до катетеризации ветеринарная бригада проведет осмотр овец, включая физический осмотр и анализ жизненно важных показателей, чтобы убедиться, что животное может безопасно получать анестезию.
2. Голодайте на животном в течение ночи или за 12 часов до процедуры, чтобы ограничить риск аспирации содержимого желудка при индукции анестезии.
3. Нажмите кнопку включения на панели управления , чтобы включить С-дугу и систему 3D-ангиографии (рис. 1A). Дождитесь полной загрузки системы.
   ПРИМЕЧАНИЕ: Убедитесь, что рентгеноскопия приостановлена до тех пор, пока она не будет готова к получению изображения, и что весь персонал носит защитный провод.
4. Приготовьте гепаринизированный физиологический раствор для использования в процедуре путем добавления 1 мл гепарина (концентрация 1000 единиц USP/мл) к 1000 мл 0,9% физиологического раствора.
5. Выбрейте левую сторону шеи и протрите спиртом. Вводите седативный эффект путем инъекции комбинации кетамина (4 мг/кг), буторфанола (0,1 мг/кг) и диазепама (0,5 мг/кг) в левую яремную вену.
6. Положите овцу под действием седативных препаратов на больничную койку и положите ее в лежачее положение на грудине для интубации. Интубируйте с помощью эндотрахеальной трубки (ЭТ) диаметром 9-14 мм, в зависимости от размера овцы, надавливая на язык и надгортанник с помощью ларингоскопа и вводя трубку ЭТ в трахею.
7. Расположите овцу в правильном боковом положении. Подключите трубку ET к аппарату искусственной вентиляции легких и проводите механическую вентиляцию со 100% кислородом со скоростью 1-3 л/мин.
8. Поддерживайте анестезию с помощью 1-3% ингаляционного изофлурана. Установите частоту дыхания на уровне 15-30 вдохов/мин и конечный дыхательный объем на уровне 8-10 мл/кг.
9. Установите стандартное оборудование для мониторинга, в том числе манжету для измерения артериального давления на правую переднюю ногу, ушной зажим для контроля насыщения кислородом на правом ухе, датчик температуры в пищевод и монитор концевого приливного_CO2 на трубке ET. Сбрейте шерсть с хвостовой стороны каждого копыта между прибылыми когтями и пяткой. Установите узлы электрокардиограммы (ЭКГ) и закрепите узлы ЭКГ лентой.
10. Смажьте оба глаза, нанеся офтальмологическую мазь, и вставьте орогастральный зонд, чтобы обеспечить эвакуацию газов и пищи.
11. Установите внутривенную капельницу в левом IJV, чтобы обеспечить введение пропофола для инфузии с постоянной скоростью (CRI) (20-40 мг∙^кг-1∙^ч-1), поддерживающих жидкостей (10 мл∙^кг-1∙^ч-1) и болюсного введения физиологического раствора.
12. Расположите овцу в левом боковом положении лежа. Побрейте правую сторону шеи, чтобы получить доступ к месту катетеризации (рисунок 2A). Промокните область скрабом с хлоргексидином и спиртом.
13. Отключитесь от оборудования для мониторинга и аппарата искусственной вентиляции легких и переместите овец на лабораторный стол для катетеризации. Опять же, расположите животное в левом боковом лежачем положении (рисунок 3А).
14. Снова подключите аппарат искусственной вентиляции легких и оборудование для мониторинга (провода ЭКГ, датчик температуры, манжету для измерения артериального давления, пульсоксиметр).
15. Поддерживайте анестезию во время процедуры, вводя ингаляционный изофлуран 1-3% со 100%_О2 и/или пропофол CRI (20-40 мг∙^кг-1∙^ч-1).
    ПРИМЕЧАНИЕ: Оцените уровень анестезии, измеряя движения животного, реакцию на болевые раздражители, частоту дыхания, пульс и артериальное давление. При необходимости внесите коррективы в седацию, например, используя болюс пропофола в дозе 5-10 мл для индуцирования более глубокой плоскости анестезии.
16. Измерьте ширину овцы в области сердца с помощью больших штангенциркулей. Разделите ширину на 2, чтобы установить датчик давления.
17. Асептически очистите место операции и задрапируйте его стерильным способом (рис. 2B,C).

2. Катетеризация

1. Переместите С-образную стрелку из положения стоянки на грудь овцы и при необходимости поднимите стол. Нажмите кнопки 7 и 3 на панели управления, а затем удерживайте кнопку «Пуск », чтобы использовать предварительно запрограммированные настройки для автоматического позиционирования стола и С-дуги с левой стороны стола (рис. 1A).
2. Доступ к нужному IJV осуществляется с помощью иглы для микропрокола 21 G и шприца Luer Slip объемом 10 куб. см; доступ к IJV в краниальном/каудальном направлении через кожу, оттягивая поршень шприца. Убедитесь, что кровь отсасывается, чтобы подтвердить, что игла находится в сосуде (рисунок 2А, В).
3. Осторожно отсоедините шприц, удерживая иглу неподвижно.
4. Вставьте направляющую проволоки из нержавеющей стали (SS) диаметром 0,018 дюйма через иглу в сосуд примерно наполовину. Извлеките иглу из-за проволоки из нержавеющей стали.
5. Поместите 5-французский (Fr) расширитель на проволоку из нержавеющей стали и поместите его в сосуд. Снимите внутреннюю часть расширителя и провод из нержавеющей стали. Проведите проводник диаметром 0,038 дюйма через расширитель в сосуд примерно наполовину и снимите расширитель.
6. С помощью скальпеля с 11 лезвиями разрежьте кожу над веной, где входит проволока. Подайте оболочку 9-Fr через направляющую проволоку внутрь сосуда. Снимите внутреннюю часть оболочки и направляющую проволоку.
7. Подтвердите правильность установки тубуса, аспирировав кровь, а затем промойте тубус гепаринизированным физиологическим раствором.
8. Повторите шаги 2.2-2.7 так, чтобы в правой IJV было два оболочки 9-Fr.
9. Введите 150 ЕД/кг гепарина через внутривенное введение для предотвращения свертывания.
10. Используйте ножную педаль, чтобы начать рентгеноскопию (рисунок 1B). Введите правый катетер Джадкинса (JR) через тубус, следуя за грудным НПВ через диафрагму в брюшную НПВ.
11. Проденьте проволоку Розена через катетер JR до тех пор, пока она не достигнет абдоминального IVC и кончик не выйдет из катетера JR. Удерживая провод Розена на месте, осторожно извлеките катетер JR.
12. Повторите шаги 2.10-2.11 со вторым чехлом.
13. Наденьте катетер 7-Fr Multitrack на каждый провод Розена.
14. Под контролем рентгеноскопии поместите один многоканальный ангиографический катетер в брюшную полость IVC для введения контрастного вещества.
15. С помощью рентгеноскопии поместите еще один многоканальный ангиографический катетер в конкретную область интереса (например, в центр трансплантата) для измерения давления (рис. 2C).

Рисунок 1: Панель управления. (A) Панель управления системой 3D-ангиографии (B) Ножные педали для рентгеноскопии Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

Рисунок 2: Катетеризация животных. (A) Ключевое хирургическое место, подготовленное к катетеризации. (Б) Техника визуализации правой внутренней яремной вены (черные стрелки). (C) Два многодорожечных ангиографических катетера помещаются через правую внутреннюю яремную вену (синяя стрелка: измерение давления в трансплантате; красная стрелка: введение контраста в брюшную НПВ; белая стрелка: жесткие провода). Сокращение: IVC = нижняя полая вена. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этой цифры.

3. Сбор предварительной информации

1. Подключите мультидорожечную дорожку, центрированную в интересующей области, к преобразователю давления с помощью трехпозиционного запорного крана. Открыв запорный кран для мультигусеничного устройства, оттяните его назад с помощью шприца объемом 10 мл до тех пор, пока не будут удалены пузырьки воздуха и не будет видна кровь.
2. Перевернув шприц объемом 10 мл вверх дном, верните кровь овце с осторожностью, чтобы не вытолкнуть воздух обратно в мультигусеницу. Промойте мультидорожечку гепаринизированным физиологическим раствором.
3. Переверните запорный кран в выключенное положение на шприце так, чтобы датчик давления и мультигусеничный кран были открыты друг для друга.
4. Подготовьте инъектор контрастного вещества, добавив контрастное вещество. Минимальный объем для 3D ангиограммы составляет 60 мл, а общий контраст не может превышать 5 мл/кг или 250 мл.
5. Подсоедините инжектор контрастного вещества к многодорожечному НПВ, центрированному в брюшной полости. С помощью контрастного инжектора медленно поворачивайте ручку против часовой стрелки, чтобы вытянуть пузырьки воздуха из мультидорожечника, пока не станет видно кровь. Поверните ручку по часовой стрелке, чтобы медленно продвигать контраст вперед в мультидорожечную ленту.
6. Используйте рентгеноскопию, чтобы подтвердить, когда контраст достиг кончика мультидорожек.
7. Возьмите общий контраст, используемый для 3D-ангиограммы, и разделите на 5, чтобы получить мл/с. Установите подъем скорости на 0 и 600 фунтов на квадратный дюйм.
8. Установите С-дугу в запрограммированный режим, нажав кнопку « Программа» в правой верхней части экрана и кнопку 3D DSA 110 8'' (3D-ангиография с SID 110 см и Field View на 8 дюймов).
9. Отодвиньте все предметы и людей подальше от передней или боковой части стола. Запустите программу C-Arm, нажав кнопку под номером 3 на панели управления. Расположите целевую область (например, мидграфт) в центре плоскости x-y (рисунок 3A-C).
10. Перейдите ко второй программе, нажав кнопку под номером 4 на панели управления. Отрегулируйте высоту стола соответствующим образом, чтобы центрировать интересующую область.
11. Нажмите кнопку под номером 5 и сделайте тестовое изображение.
12. Предварительно проверьте диапазон движений С-дуги, нажав кнопку «Подтвердить условия» | Начало (Рисунок 3D,E).
13. Попросите анестезиолога провести вентиляцию легких и сделать 3D ротационную ангиограмму с введением контраста, запустив программу средней педалью захвата. Одновременно измеряйте и записывайте среднее давление в целевом регионе.

Рисунок 3: Положение С-дуги и диапазон движения. (A) Положение овцы в начале процедуры (B) Первое положение для программы 3D-ангиограммы (C) С-рука перемещена по оси xy (D) С-рука перемещена по оси Z (E) С-рука завершает тестовое вращение с полным диапазоном движений. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этой цифры.

4. Введение болюса физиологического раствора и сбор данных

1. Подготовьте 20 мл/кг 0,9% физиологического раствора.
2. Чтобы приготовить болюсный мешок под давлением, добавьте мешок объемом 1 000 мл с 0,9% физиологическим раствором в мешок под давлением. При необходимости используйте второй аппарат для достижения общего вводимого объема.
3. Сжимайте колбу накачивания до тех пор, пока манометр не поднимется в зеленую зону, непосредственно перед красной линией (давление 250-300 мм рт.ст.). Промойте солевой раствор через линию и удалите пузырьки воздуха.
4. Подсоедините солевой мешок под давлением к оболочке 9-Fr и поддерживайте давление 250-300 мм рт.ст., чтобы поддерживать постоянную скорость болюса. Дайте ему течь до тех пор, пока овца не получит болюс, эквивалентный 20 мл/кг, или пока среднее давление не достигнет 15 мм рт.ст.
5. Пока болюс течет, ежеминутно записывайте внутрисосудистое давление в целевой области.
6. Подготовьте С-дугу к проведению второй 3D-ротационной ангиографии, повторив шаги 3.9-3.12. Как только болюс закончится, прежде чем давление начнет падать, проведите вторую 3D-ангиографию и одновременное измерение внутрисосудистого давления, начав, как описано в шаге 3.13.

5. Восстановление

1. После завершения визуализации верните С-дугу обратно в запрограммированное парковочное положение, введя цифру 77 и удерживая кнопку «Пуск », пока С-дуга не займет свое положение.
2. Снимите катетеры для многодорожечной ангиографии и провода Розена.
3. Снимите оба тубуса, оказывая прямое давление на места введения пластырем гемостаза в течение не менее 7 минут, чтобы остановить кровотечение.
4. Оберните стерильный рулон марли вокруг пластырей и горлышка так, чтобы обертывание было надежно и сохраняло давление, но не слишком туго, чтобы не перекрыть кровообращение или не затруднить дыхание.
5. Выключите анестетики (изофлуран и/или пропофол CRI).
6. Поддерживайте овец на аппарате искусственной вентиляции легких со 100% содержанием_O2 до тех пор, пока они не начнут дышать самостоятельно.
   ПРИМЕЧАНИЕ: Признаки того, что овца просыпается, включают движение, моргание, реакцию на болезненные раздражители, тонус челюсти или попытки жевать, а также дыхание без помощи аппарата искусственной вентиляции легких.
7. Как только овца сможет дышать самостоятельно, проведите экстубацию (удалите трубку) и удалите орогастральный зонд.
8. Снимите все оборудование для мониторинга и переложите овец на больничную койку. Переместите его обратно в жилую комнату.
9. Помогите овце оставаться в положении лежа на грудине или при попытке встать, пока овца не сможет самостоятельно удерживать равновесие. Не дайте им врезаться в стены.
10. Как только они достаточно проснутся, дайте небольшое количество сена или зерна.

6. Анализ данных

1. Экспортируйте исходные необработанные данные 3D-ангиографии из программы для визуализации ангиографии в формат файла DICOM.
2. Запустите программу просмотра DICOM. Перетащите файл 3D-ангиографии в окно просмотра, чтобы открыть его (рисунок 4A).
3. В программном обеспечении для просмотра DICOM выберите инструмент 3D MPR (Multi-Planar Reconstruction) для создания 3D-реконструированного вида данных ангиографии. Это позволит представить три различных 2D-вида с трех различных углов: осевой, сагиттальной (рисунок 4B) и корональной (рисунок 4C) плоскостях.
4. Отрегулируйте расположение и ориентацию целевой области в сагиттальной и корональной плоскостях для достижения желаемого вертикального положения, поместив целевую область в центр и вращая направление опорных линий на каждой плоскости с помощью ручного инструмента (рис. 4D).
5. С помощью инструмента «Карандаш» в средстве просмотра DICOM обведите контур стенки сосуда в осевом виде целевой области (рис. 4E). Программное обеспечение автоматически рассчитывает и показывает как площадь, так и периметр (окружность) области в центре осевого вида.
6. Используйте уравнение (1) для расчета податливости, где A — площадь поперечного сечения (^см2), а P — давление (мм рт.ст.):
   (1)
7. Используйте уравнение (2) для вычисления растяжимости, где C — длина окружности (см), а P — давление (мм рт. ст.):
   (2)

Рисунок 4: Анализ данных в DICOM-просмотрщике. (А) Исходные данные 3D ангиограммы, загруженные в DICOM-просмотрщик. (Б) Сагиттальный срез трансплантата. (В) Коронковый отдел. (D) Истинное поперечное сечение визуализируется после регулировки угла на сагиттальном и корональном срезах. (E) Инструмент «Карандаш» используется для очерчивания целевого сосуда для измерения длины окружности и площади поперечного сечения. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этой цифры.

Результаты

Мы успешно провели эту процедуру с более чем 25 овцами. Важно отметить, что не было случаев заболеваемости и смертности, связанных с этой процедурой. У всех овец наблюдалось неосложненное восстановление. Эти репрезентативные результаты были получены от трех овец, которым были имплантир?...

Обсуждение

Податливость и растяжимость являются ключевыми свойствами для функции кровеносных сосудов, служащими индикаторами потенциальных осложнений и вмешательств. Точная количественная оценка и сравнение изменений этих параметров важны для оценки эффективности трансплантата. Наш метод ...

Материалы

Name	Company	Catalog Number	Comments
0.035" x 260 cm Rosen Curved Wire Guide	Cook Medical	G01253	Guide for holding placement swapping caths (Multi-track, IVUS, etc)
0.035"x 150 cm Glidewire	Terumo	GR3507	Guide for JR cath
0.9% Sodium Chloride Saline	Baxter Healthcare Corporation	NCH pharmacy	For diluting norepinpherine, pressure monitoring
10.0 Endotracheal tube	Coviden	86117	To secure airway
16 G IV catheter	BD	382259	To administer fluids and anesthetic drugs
22 G IV catheter	BD	381423	For invasive blood pressure
5Fr x .35" JR2.5	Cook Medical	G05035	Guide for rosen wire
70% isopropyl alcohol	Aspen Vet	11795782	Topical cleaning solution
7Fr x 100 cm Multi-track	B. Braun	615001	Collecting pressure, Administering contrast to specific intravascular location
9Fr Introducer sheath	Terumo	RSS901	Access catheter through skin into vessel for wires to pass through
ACT cartridge	Abbot Diagnostics	03P86-25	Activated Clotting Time
Angiographic syringe w/ filling spike	Guerbet	900103S	For contrast injector
Bag decanter	Advance Medical Designs, LLC	10-102	Punctures saline bag to pour and fill sterile bowl with saline
Butorphanol	Zoetis	NCH pharmacy	Sedation drug: Concentration 10 mg/mL, Dosage 0.1 mg/kg
Cath Research Pack	Cardinal Health	SAN33RTCH6	Cath pack with misc. supplies
Cetacaine	Cetylite	220	Topical anesthetic spray
Chloraprep	BD	930825	Topical cleaning solution
Chlorhexidine 2% solution	Vedco INC	VINV-CLOR-SOLN	Topical cleaning solution
Conform stretch bandage	Coviden	2232	Neck wrap to prevent bleeding
Connection tubing	Deroyal	77-301713	Connects t-port to fluid/drug lines
Diazepam	Hospira Pharmaceuticals	NCH pharmacy	Sedation drug: Concentration 5 mg/mL, Dosage 0.5 mg/kg
EKG monitoring dots	3M	2570
Fluid administration set	Alaris	2420-0007
Fluid warming set	Carefusion	50056
Hemcon Patch	Tricol Biomedical	1102	Patch for hemostasis
Heparin	Hospira, Inc	NCH pharmacy	Angicoagulant: 1,000 USP units/mL
Infinix-i INFX-8000C	Toshiba Medical Systems	2B308-124EN*E	Interventional angiography system
Invasive pressure transducer	Medline	23DBB538	For invasive blood pressure
Isoflurane	Baxter Healthcare Corporation	NCH pharmacy	Anesthetic used in prep room
Ketamine	Hospira Pharmaceuticals	NCH pharmacy	Sedation drug: Concentration 100 mg/mL, Dosage 4 mg/kg
Lubricating Jelly	MedLine	MDS0322273Z	ET tube lubricant
Micropuncture Introducer Set	Cook Medical	G47945	Access through skin into vessel
Needle & syringes	Cardinal Health	309604	For sedation
Norepinpherine Bitartrate Injection, USP	Baxter Healthcare Corporation	NCH pharmacy	1 mg/mL
Optiray 320	Liebel-Flarsheim Company, LLC	NCH pharmacy	Contrast
Optixcare	Aventix	OPX-4252	Corneal lubricant
OsiriX MD	Pixmeo SARL	-	DICOM Viewer and Analysis software
Pressure infusor bag	Carefusion	64-10029	To maintain invasive blood pressure
Propofol	Fresenius Kabi	NCH pharmacy	Anesthetic drug: Concentration 10 mg/mL, Dosage 20-45 mg·kg-1·h-1
Silk suture 3-0	Ethicon	C013D	To secure IV catheter
SoftCarry Stretcher	Four Flags Over Aspen	SSTR-4
Stomach tube	Jorgensen Lab, INC	J0348R	To release gastric juices and gas and prevent bloat
T-port	Medline	DYNDTN0001	Connects to IV catheter
Urine drainage bag	Coviden	3512	Connects to stomach tube to collect gastric juices
Warming blanket	Jorgensen Lab, INC	J1034B