Для начала сгруппируйте 30 мышей в три группы: контрольная, катетерная и модельная. Поместите мышь под наркозом в положение лежа на операционном столе. Побрейте спину животного, затем продезинфицируйте место операции йодофором.
Для мышей в катетерной группе введите стерильную иглу шприца объемом один миллилитр в место операции, чтобы сделать отверстие. Затем извлеките иглу шприца и вставьте в отверстие катетер длиной один сантиметр. Для мышей в модельной группе пипетка 200 мкл суспензии Candida albicans на место операции.
После того, как суспензия впитается в кожу, введите в это место стерильную иглу шприцем объемом один миллилитр. Затем введите катетер в отверстие, созданное иглой. Пипеткой 20 мкл суспензии Candida albicans по катетеру в ткани.
Затем зафиксируйте катетеры скотчем и марлей, прежде чем возвращать их в клетки для кормления. Через три дня соберите катетеры и образцы кожных тканей со спины усыпленных мышей. Зафиксируйте катетеры в 4%-ном параформальдегиде при температуре четыре градуса Цельсия в течение 48 часов.
Затем с помощью флуоресцентного микроскопа запишите изображения биопленки дрожжей на длине волны 484 нанометра. После этого анализируют изображения гистопатологически окрашенных тканей кожи на предмет изменений. Явной флуоресценции на поверхности полиэтиленовых катетеров в катетерной группе не наблюдалось.
Сильная флуоресценция, испускаемая адгезивными клетками Candida albicans, была видна на поверхности катетера в модельной группе. Периодическое стояние контрольной и катетерной тканей кожи показало отсутствие Candida albicans. В модельной группе наблюдалось небольшое количество положительных клеток C.albicans.
Кандидозная инфекция приводила к утолщению и расширению слоя эпидермиса с видимой воспалительной инфильтрацией в модельной группе. Как контрольная, так и катетерная группы имели интактный слой эпидермиса, слой дермы, сальные железы, волосяные фолликулы и другие структуры.
