Для начала установите мышиную модель UC-CRC и введите подготовленный раствор LJZD и 5-ASA в соответствующие группы. После проведения лечения препаратом ежедневно контролируйте вес мышей с начала адаптивного кормления и до окончания лечения препаратом. Внимательно наблюдайте и документируйте консистенцию кала каждой подопытной мыши, классифицируя ее как нормальную, жидкий стул или водянистый понос.
Тщательно задокументируйте любое каловое кровотечение, наблюдаемое у подопытных животных, классифицируя его как отсутствие кровотечения, минимальное кровотечение или видимую кровь в стуле. Чтобы отделить колоректальную ткань, усыпленные мыши должны находиться в криогенной анатомической среде. Закрепите мышей в лежачем положении.
С помощью ножниц подстригите волосы в нижней части живота и простерилизуйте область этанолом. С помощью щипцов для век аккуратно захватите точку пересечения между двумя корнями бедра и средней линией живота. Затем с помощью ножниц сделайте поперечный разрез длиной от одного до 1,5 сантиметра.
Выполняют продольный разрез по срединной линии живота, начиная от середины поперечного разреза до мечевидного отростка. Осторожно отделите периколоректальные ткани по направлению к анальному отверстию, отделив колоректальный отросток от окружающих тканей. Аккуратно отодвиньте кожу живота, чтобы полностью обнажить толстую кишку.
С помощью щипцов для век извлеките толстую кишку из брюшной полости и рассеките ее от анального отверстия до слепой кишки. Сохраните собранные колоректальные ткани в физрастворе при температуре четыре градуса Цельсия. В модельной группе ЯК-КРР наблюдалась значительная потеря массы тела по сравнению с контрольной группой, которая была облегчена лечением LJZD.
Лечение LJZD улучшило индекс активности заболевания по сравнению с модельной группой ЯК-КРР.