JoVE Logo
Faculty Resource Center

Sign In

Summary

Abstract

Introduction

Protocol

Representative Results

Discussion

Acknowledgements

Materials

References

Biology

Analyse Cell Surface Vedhæftning Remodeling i Reaktion på Mekanisk Tension Brug magnetiske perler

Published: March 8th, 2017

DOI:

10.3791/55330

1Institute for Advanced Biosciences, Centre de recherche UGA - INSERM U1209 - CNRS UMR
* These authors contributed equally

Cell overflade sammenvoksninger er centrale i mechanotransduction, da de sender mekanisk spænding og indlede signalveje involveret i vævshomeostase og udvikling. Her præsenterer vi en protokol for at dissekere de biokemiske veje, der aktiveres som reaktion på spænding, ved hjælp af ligand-overtrukne magnetiske mikrokugler og force ansøgning til vedhæftning receptorer.

Mekanosensitive celleoverflade adhæsionskomplekser tillader celler at fornemme de mekaniske egenskaber af deres omgivelser. Nylige undersøgelser har identificeret både kraft-sensing molekyler ved vedhæftning sites, og kraft-afhængige transkriptionsfaktorer, der regulerer slægt-specifikke genekspression og drive fænotypiske udgange. Imidlertid har de signalering netværk konvertere mekanisk spænding i biokemiske veje været undvigende. At udforske de signalveje beskæftiget ved mekanisk spænding påføres celleoverfladereceptor, kan superparamagnetiske mikroperler anvendes. Her præsenterer vi en protokol til at bruge magnetiske perler til at anvende styrker til celleoverfladen adhæsionsproteiner. Ved anvendelse af denne fremgangsmåde, er det muligt at undersøge ikke eneste kraft-afhængig cytoplasmatisk signalveje fra forskellige biokemiske metoder, men også adhæsion remodellering ved magnetisk isolering af adhæsionskomplekser knyttet til ligand-coatede perler. Denne protokol omfatter udarbejdelse af ligand-coerede superparamagnetiske perler og anvendelse af definere trækkræfter efterfulgt af biokemiske analyser. Derudover tilbyder vi et repræsentativt udsnit af data, der viser, at spændingen anvendes på integrin-baserede vedhæftning udløser vedhæftning remodellering og ændrer proteintyrosinphosphorylering.

I Metazoa, mekanisk spænding dirigerer væv udvikling og homeostase gennem regulering af et utal af cellulære processer såsom proliferation, differentiering og overlevelse 1, 2. Mekaniske spænding kan opstå fra den ekstracellulære matrix eller kan genereres ved adhærente celler, som prøven deres ekstracellulære miljø gennem actomyosin kontraktile maskiner, der trækker på ekstracellulær matrix og prober sin stivhed gennem spændinger følsomme molekyler. Som reaktion på spænding, mekanosensitive adhæsionsproteiner undergå konformationsændringer der udløser komplekse signalleringskaskader. Til gengæld er disse sig....

Log in or to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

1. Ligand Konjugering til magnetiske perler

Bemærk: Ligand konjugation udføres ved anvendelse superparamagnetiske tosyl--aktiverede perler med en 2,8 um diameter (stamopløsning koncentration 10 8 perler / ml, 30 mg perler / ml). Den følgende protokol er baseret på prøver af ca. 2 x 10 5 celler, som svarer til MRC-5-celler dyrket til 80% konfluens i en 60 mm vævskulturplade. Juster lydstyrken af ​​perler og reagenser i overensstemmelse hermed, hvis du bruger pla.......

Log in or to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Den skematiske af teknikken er vist i figur 1a. Efter ligand konjugering, er magnetiske perler inkuberes med celler i 20 minutter, og derefter anvendes en permanent magnet til at anvende trækkræfter på ca. 30-40 pN for forskellige tidsrum. Figur 1b viser 2,8 um FN-belagte magnetiske kugler bundet til MRC5 celleadhæsionsreceptorer.

Vasketrinnene af superparamagnetiske perler efter cellelysis er afgørende og bestemme graden af ​​oprensning. Mindst tre.......

Log in or to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Den her beskrevne fremgangsmåde er en enkel tilgang til at anvende spænding til celleoverflade adhæsionsreceptorer og tillade deres efterfølgende oprensning. Men nogle trin er afgørende for at udføre en effektiv vedhæftning rensning og potentiel optimering kan gøres afhængig af de målrettede adhæsionsreceptorer. Vi præsenterer potentielle problemer brugeren kan støde nedenfor.

Vi anvendte 2,8 um diameter magnetiske perler, men større perler kan anvendes, såsom 4,5 um diameter........

Log in or to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

CG er støttet af tilskud fra Agence Nationale de la Recherche (ANR-13-JSV1-0008), fra EU syvende rammeprogram (Marie Curie Career Integration n˚8304162) og fra Det Europæiske Forskningsråd (ERC) under EU 's Horizon 2020 forsknings- og innovationsprogram (ERC Starting Grant n˚639300).

....

Log in or to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

NameCompanyCatalog NumberComments
Neodymium magnets (on the upper face of 60 mm dish)K&J Magnetics, IncDX88-N52grade N52 dimension: 1 1/2" dia. x 1/2" thick
Neodymium magnets (on the lower face of 60 mm dish)K&J Magnetics, IncD84PC-BLKgrade N42 dimension: 1/2" dia. x 1/4" thick Black Plastic Coated 
Dynabeads M280 TosylactivatedThermofisher14203superparamagnetic beads 
DynaMag-2 MagnetThermofisher12321D
Fibronectin Sigma-AldrichF1141-5MGFibronectin from bovine plasma
Poly-D-LysineSigma-AldrichP7280-5MG
Apo-TransferrinSigma-AldrichT1428-50MGBovine Apo-Transferrin
Bovine serum albuminSigma-AldrichA7906-500G
DMEM high glucose, GlutaMAX supplement, pyruvate Life Technologies31966-021DMEM+GlutaMAX-I 500 ml 
60*15 mm culture dishFalcon353004

  1. Discher, D. E., Janmey, P., Wang, Y. -. L. . Tissue cells feel and respond to the stiffness of their substrate. 310 (5751), 1139-1143 (2005).
  2. DuFort, C. C., Paszek, M. J., Weaver, V. M. Balancing forces: architectural control of mechanotransduction. Nat Rev Mol Cell Biol. 12 (5), 308-319 (2011).
  3. Guilluy, C., et al. The Rho GEFs LARG and GEF-H1 regulate the mechanical response to force on integrins. Nat Cell Biol. 13 (6), 722-727 (2011).
  4. Matthews, B. D., Overby, D. R., Mannix, R., Ingber, D. E. Cellular adaptation to mechanical stress: role of integrins, Rho, cytoskeletal tension and mechanosensitive ion channels. J Cell Sci. 119 (3), 508-518 (2006).
  5. Zhao, X. -. H., et al. Force activates smooth muscle alpha-actin promoter activity through the Rho signaling pathway. J Cell Sci. 120 (Pt 10), 1801-1809 (2007).
  6. Engler, A. J., Sen, S., Sweeney, H. L., Discher, D. E. Matrix elasticity directs stem cell lineage specification. Cell. 126 (4), 677-689 (2006).
  7. Austen, K., Kluger, C., Freikamp, A., Chrostek-Grashoff, A., Grashoff, C. Generation and analysis of biosensors to measure mechanical forces within cells. Meth Mol Biol. 1066, 169-184 (2013).
  8. Grashoff, C., et al. Measuring mechanical tension across vinculin reveals regulation of focal adhesion dynamics. Nature. 466 (7303), 263-266 (2010).
  9. Pelham, R. J., Wang, Y. l. . Cell locomotion and focal adhesions are regulated by substrate flexibility. Proc Natl Acad Sci USA. 94 (25), 13661-13665 (1997).
  10. Choquet, D., Felsenfeld, D. P., Sheetz, M. P. Extracellular matrix rigidity causes strengthening of integrin-cytoskeleton linkages. Cell. 88 (1), 39-48 (1997).
  11. Chaudhuri, O., Parekh, S. H., Lam, W. A., Fletcher, D. A. Combined atomic force microscopy and side-view optical imaging for mechanical studies of cells. Nat Meth. 6 (5), 383-387 (2009).
  12. Bays, J. L., et al. Vinculin phosphorylation differentially regulates mechanotransduction at cell-cell and cell-matrix adhesions. J Cell Biol. 205 (2), 251-263 (2014).
  13. Collins, C., et al. Localized tensional forces on PECAM-1 elicit a global mechanotransduction response via the integrin-RhoA pathway. Curr Biol. 22 (22), 2087-2094 (2012).
  14. Gordon, W. R., et al. Mechanical Allostery: Evidence for a Force Requirement in the Proteolytic Activation of Notch. Dev Cell. 33 (6), 729-736 (2015).
  15. Lessey-Morillon, E. C., et al. The RhoA guanine nucleotide exchange factor, LARG, mediates ICAM-1-dependent mechanotransduction in endothelial cells to stimulate transendothelial migration. J Immunol. 192 (7), 3390-3398 (2014).
  16. Osborne, L. D., et al. TGF-β regulates LARG and GEF-H1 during EMT to affect stiffening response to force and cell invasion. Mol Biol Cell. 25 (22), 3528-3540 (2014).
  17. Scott, D. W., Tolbert, C. E., Burridge, K. Tension on JAM-A activates RhoA via GEF-H1 and p115 RhoGEF. Mol Biol Cell. 27 (9), 1420-1430 (2016).
  18. Glogauer, M., Ferrier, J., McCulloch, C. A. Magnetic fields applied to collagen-coated ferric oxide beads induce stretch-activated Ca2+ flux in fibroblasts. Am J Physiol - Cell Physiol. 269 (5), C1093-C1104 (1995).
  19. Glogauer, M., et al. Calcium ions and tyrosine phosphorylation interact coordinately with actin to regulate cytoprotective responses to stretching. J Cell Sci. 110 (Pt 1), 11-21 (1997).
  20. Kuo, J. -. C., Han, X., Hsiao, C. -. T., Yates, J. R., Waterman, C. M. Analysis of the myosin-II-responsive focal adhesion proteome reveals a role for β-Pix in negative regulation of focal adhesion maturation. Nat Cell Biol. 13 (4), 383-393 (2011).
  21. Schiller, H. B., et al. β1- and αv-class integrins cooperate to regulate myosin II during rigidity sensing of fibronectin-based microenvironments. Nat Cell Biol. 15 (6), 625-636 (2013).
  22. Guilluy, C., et al. Isolated nuclei adapt to force and reveal a mechanotransduction pathway in the nucleus. Nat Cell Biol. 16 (4), 376-381 (2014).
  23. Plopper, G. E., McNamee, H. P., Dike, L. E., Bojanowski, K., Ingber, D. E. Convergence of integrin and growth factor receptor signaling pathways within the focal adhesion complex. Mol Biol Cell. 6 (10), 1349-1365 (1995).
  24. Roca-Cusachs, P., Gauthier, N. C., Del Rio, ., A, M. P., Sheetz, Clustering of alpha(5)beta(1) integrins determines adhesion strength whereas alpha(v)beta(3) and talin enable mechanotransduction. Proc Natl Acad Sci USA. 106 (38), 16245-16250 (2009).
  25. Ajeian, J. N., et al. Proteomic analysis of integrin-associated complexes from mesenchymal stem cells. Proteomics Clin Appl. 10 (1), 51-57 (2016).
  26. Horton, E. R., Astudillo, P., Humphries, M. J., Humphries, J. D. Mechanosensitivity of integrin adhesion complexes: Role of the consensus adhesome. Exp Cell Res. , (2015).
  27. Jones, M. C., et al. Isolation of integrin-based adhesion complexes. Curr Protoc Cell Biol. 66, 9.8.1-9.8.15 (2015).
  28. Ng, D. H. J., Humphries, J. D., Byron, A., Millon-Frémillon, A., Humphries, M. J. Microtubule-dependent modulation of adhesion complex composition. PloS One. 9 (12), e115213 (2014).
  29. Byron, A., Humphries, J. D., Bass, M. D., Knight, D., Humphries, M. J. Proteomic analysis of integrin adhesion complexes. Sci Sign. 4 (167), pt2 (2011).
  30. Byron, A., Humphries, J. D., Craig, S. E., Knight, D., Humphries, M. J. Proteomic analysis of α4β1 integrin adhesion complexes reveals α-subunit-dependent protein recruitment. Proteomics. 12 (13), 2107-2114 (2012).
  31. Marjoram, R. J., Guilluy, C., Burridge, K. Using magnets and magnetic beads to dissect signaling pathways activated by mechanical tension applied to cells. Methods. , (2015).
  32. Pasapera, A. M., Schneider, I. C., Rericha, E., Schlaepfer, D. D., Waterman, C. M. Myosin II activity regulates vinculin recruitment to focal adhesions through FAK-mediated paxillin phosphorylation. J Cell Biol. 188 (6), 877-890 (2010).
  33. Sawada, Y., Sheetz, M. P. Force transduction by Triton cytoskeletons. J Cell Biol. 156 (4), 609-615 (2002).
  34. Grinnell, F., Geiger, B. Interaction of fibronectin-coated beads with attached and spread fibroblasts. Binding, phagocytosis, and cytoskeletal reorganization. Exp Cell Res. 162 (2), 449-461 (1986).
  35. Schroeder, F., Kinden, D. A. Measurement of phagocytosis using fluorescent latex beads. J Biochem Biophys Meth. 8 (1), 15-27 (1983).
  36. Hoffman, B. D., Grashoff, C., Schwartz, M. A. Dynamic molecular processes mediate cellular mechanotransduction. Nature. 475 (7356), 316-323 (2011).
  37. Seo, D., et al. A Mechanogenetic Toolkit for Interrogating Cell Signaling in Space and Time. Cell. 165 (6), 1507-1518 (2016).

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Research

Education

ABOUT JoVE

Copyright © 2024 MyJoVE Corporation. All rights reserved