JoVE Logo
Faculty Resource Center

Sign In

Summary

Abstract

Introduction

Protocol

Representative Results

Discussion

Acknowledgements

Materials

References

Developmental Biology

Dissektion og farvning af Drosophila puppe æggestokke

Published: March 2nd, 2018

DOI:

10.3791/56779

1Department of Biological Sciences, Columbia University, 2Department of Cell and Systems Biology, University of Toronto

Drosophila æggestokken er en fremragende modelsystem til at undersøge stamceller niche udvikling. Om metoder til dissekere larve og voksen æggestokke er blevet offentliggjort, kræver puppe æggestokken dissektioner forskellige teknikker, der ikke er blevet offentliggjort i detaljer. Her skitsere vi en protokol til dissekere, farvning og montering puppe æggestokke.

I modsætning til voksne Drosophila æggestokke, puppe æggestokkene er relativt vanskeligt at få adgang til og undersøge på grund af deres lille størrelse, translucence og omslutter inden en puppe sagen. Udfordringen at dissekere puppe æggestokkene ligger også i deres fysiske placering i puppe: æggestokkene er omgivet af fedt kroppens celler inde i puppe maven, og disse fedtceller skal fjernes for at give mulighed for korrekt antistoffarvning. For at overvinde disse udfordringer, udnytter denne protokol tilpassede Pasteur pipets hen til uddrag fedt kroppens celler fra puppe maven. Desuden, en chambered daekglas er brugt i stedet for et microcentrifuge rør under farvning processen for at forbedre synligheden af pupper. Men trods disse og andre fordele af de værktøjer, der anvendes i denne protokol, vellykket gennemførelse af disse teknikker kan stadig indebære flere dage i praksis på grund af den lille størrelse af puppe æggestokke. De teknikker, der er skitseret i denne protokol kunne anvendes til tid kursus eksperimenter, hvor æggestokkene er analyseret i forskellige faser af pupal udvikling.

Forskning i stamceller ved hjælp af Drosophila æggestokke har meget udvidet siden den første dokumentation af en stamcelle niche1,2,3,4. Efter udviklingen af afstamning sporingen genetiske værktøjer, Drosophila æggestokken dissektioner har været almindeligt anvendt til at undersøge stamceller lineages og signalering veje, der regulerer stamcelle vedligeholdelse, spredning og skæbne i stamceller niche. Kendskab til disse signaling veje kan give indsigt i potentielle årsager til kræft, der stammer fra afvigende stamcelle akti....

Log in or to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

1. EggLaying

  1. Kombinere cirka ti mand og femten kvindelige voksne Drosophila fluer af den ønskede genotype i et hætteglas med normal rige flyve mad suppleret med gær. For at undgå overbefolkning hætteglasset, tillade skytterne hunner til at lægge æg længere end 2-4 h14.
  2. Overføre voksne fra hætteglasset ind i en ny hætteglas ved at trykke på hætteglasset åbning mod en forskellige hætteglas med flyve mad. Tillad æg til at udvikle sig til larver ved stuetem.......

Log in or to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Vellykket gennemførelse af denne procedure bør resultere i klare antistoffarvning, der afslører den struktur og cellulære organisation af en Drosophila puppe æggestokken. Immunhistokemi skitseret i denne protokol kan bruges til at identificere celletyper almindeligt farves i larve og voksen æggestokke. Celler puppe stængelens afledt af swarm celler18 (beskrevet af Fasciclin III i hvid) er vist i figur 3. Ud over at frem.......

Log in or to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Det mest vigtige og vanskelige skridt af denne protokol omfatter forberedelse af puppe æggestokke før fiksering. For at sikre, at æggestokkene, små og begravet af fedt kroppens celler inde i puppe maven, farves tilstrækkeligt med antistoffer, er det vigtigt at ikke kun rive en stor åbning i den abdominal sæk med pincet, men også ekstrakt fedt kroppens celler, der hæmmer den æggestokkene fra antistoffer. Vellykket gennemførelse af dette trin kræver anvendelsen af subtil pres på Pasteur afpipetteres pære mens.......

Log in or to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Denne forskning blev støttet af National Institutes of Health (RO1 GM079351 til D.K.). Vi takker Dorothea Godt for hendes nyttige råd om puppe æggestokken dissektioner baseret på hendes oprindelige protokol. Vi takker også Amy Reilein for hendes hjælp og kommentarer til manuskriptet.

....

Log in or to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

NameCompanyCatalog NumberComments
Dumont #5 Forceps, biologyFine Scientific Tools11252-20
Nunc Lab-Tek Chambered CoverglassThermo Fisher Scientific155383
Dissection microscopeNikonSMZ-10A
Confocal MicroscopeCarl ZeissLSM 700
Analysis softwareCarl ZeissZen
9 Depression Glass Spot PlatesPyrex7220-85
Pasteur pipetFisher Scientific13-678-6B
Pasteur pipet bulbVarious vendors
Bunsen burnerVarious vendors
Fisherfinest Premium Frosted Microscope SlidesThermo Fisher Scientific12-544-2
22 x 22 mm glass coverslips No 1VWR48366-067
Dapi Fluoromount-GSouthernBiotech0100-20
Double-sided tapeScotch
NutatorClay Adams
Fine brush #0, #3-#5Various vendors
Gilson Pipetman Starter KitThomas ScientificF167300Contains p20, p200, p1000 pipettors
16% ParaformaldehydeElectron Microscopy Sciences15710Dilute to 4% paraformaldehyde in 1x PBS
TritonSigma-Aldrich9002-93-1
10x PBSAmbionAM9624Dilute to 1x PBS
Normal Goat SerumJackson ImmunoResearch5000121Dilute to 10% normal goat serum in PBST with 0.5% Triton concentration
Primary antibodies (in protocol: 7G10 anti-Fasciclin III diluted 1:250, rabbit anti-phosphohistone H3 diluted 1:1000)Various vendors (in protocol: Developmental Studies Hybridoma Bank, Millipore)Dilute in PBST with 0.5% Triton concentration
Secondary antibodies (in protocol: Alexa-546, FITC-conjugated anti-rabbit serum)Various vendors (in protocol: Molecular Probes, Jackson ImmunoResearch Laboratories, Inc.)Dilute in PBST with 0.5% Triton concentration
Fly vialsDenville ScientificV9406
Cotton Balls, For Wide VialsGenesee Scientific51-102W
Yeast, Bakers Dried ActiveMP Biomedicals101400
Fly foodProduced in laboratoryMixture of water, brewer's yeast, cornmeal, molasses, agar, EtOH, penicillin, methyl 4-hydrobenzoate, and propionic acid
Male and female Drosophila flies (genotype used in protocol: yw; P[Fz3-RFP, w+]/TM2)Bloomington Drosophila Stock Center

  1. Losick, V., Morris, L., Fox, D., Spradling, A. Drosophila Stem Cell Niches: A Decade of Discovery Suggests a United View of Stem Cell Regulation. Dev Cell. 21 (1), 159-171 (2011).
  2. Kirilly, D., Xie, T. The Drosophila ovary: an active stem cell community. Cell Res. 17 (1), 15-25 (2007).
  3. Dansereau, D. A., Lasko, P. The Development of Germline Stem Cells in Drosophila. Method Mol Biol. 450, 3-26 (2008).
  4. Pearson, J., López-Onieva, L., Rojas-Ríos, P., Gonzáles-Reyes, A. Recent advances in Drosophila stem cell biology. Int J Dev Biol. 53, 1329-1339 (2009).
  5. Arwert, E. N., Hoste, E., Watt, F. M. Epithelial stem cells, wound healing and cancer. Nat Rev Cancer. 12 (3), 170-180 (2012).
  6. Barker, N., et al. Crypt stem cells as the cells-of-origin of intestinal cancer. Nature. 457 (7229), 608-611 (2009).
  7. Daley, G. Q. Chronic myeloid leukemia: proving ground for cancer stem cells. Cell. 119 (3), 314-316 (2004).
  8. Reilein, A., et al. Alternative direct stem cell derivatives defined by stem cell location and graded Wnt signaling. Nat Cell Biol. 19 (5), 433-444 (2017).
  9. Eliazer, S., Buszczack, M. Finding a niche: studies from the Drosophila ovary. Stem Cell Res Ther. 2 (6), 45 (2011).
  10. Godt, D., Laski, F. A. Mechanisms of cell rearrangement and cell recruitment in Drosophila ovary morphogenesis and the requirement of bric à brac. Development. 121 (1), 173-187 (1995).
  11. King, R. C., Aggarwal, S. K., Aggarwal, U. The development of the female Drosophila reproductive system. J Morphol. 124 (2), 143-166 (1968).
  12. Vlachos, S., Jangam, S., Conder, R., Chou, M., Nystul, T., Harden, N. A Pak-regulated cell intercalation event leading to a novel radial cell polarity is involved in positioning of the follicle stem cell niche in the Drosophila ovary. Development. 142 (1), 82-91 (2015).
  13. Irizarry, J., Stathopoulos, A. FGF signaling supports Drosophila fertility by regulating development of ovarian muscle tissues. Dev Biol. 404 (1), 1-13 (2015).
  14. Maimon, I., Gilboa, L. Dissection and Staining of Drosophila Larval Ovaries. J Vis Exp. (51), e2537 (2011).
  15. Kerkis, J. The Growth of the Gonads in DROSOPHILA MELANOGASTER. Genetics. 16 (3), 212-224 (1931).
  16. Yamanaka, N., et al. Neuroendocrine Control of Drosophila Larval Light Preference. Science. 341 (6150), 1113-1116 (2013).
  17. Bainbridge, S., Bownes, M. Staging the metamorphosis of Drosophila melanogaster. Development. 66, 57-80 (1981).
  18. Courdec, J., et al. The bric à brac locus consists of two paralagous genes encoding BTB/POZ domain proteins and acts as a homeotic and morphogenetic regulator of imaginal development in Drosophila. Development. 129, 2419-2433 (2002).
  19. Arrese, E. L., Soulages, J. L. INSECT FAT BODY: ENERGY, METABOLISM, AND REGULATION. Annu Rev Entomol. 55, 207-225 (2011).
  20. Zhang, Y., Xi, Y. Fat Body Development and its Function in Energy Storage and Nutrient Sensing in Drosophila melanogaster. J Tissue Sci Eng. 6 (1), (2014).
  21. Wong, L. C., Schedl, P. Dissection of Drosophila Ovaries. J Vis Exp. (1), e52 (2006).

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Research

Education

ABOUT JoVE

Copyright © 2024 MyJoVE Corporation. All rights reserved