JoVE Logo
Faculty Resource Center

Sign In

Summary

Abstract

Introduction

Protocol

Representative Results

Discussion

Acknowledgements

Materials

References

Developmental Biology

Disseksjon og flekker av Drosophila Pupal eggstokkene

Published: March 2nd, 2018

DOI:

10.3791/56779

1Department of Biological Sciences, Columbia University, 2Department of Cell and Systems Biology, University of Toronto

Drosophila eggstokken er en utmerket modell for studerer stamcelleforskningen nisjeinteresser utvikling. Selv om metoder for dissekere larver og voksne eggstokkene har blitt publisert, krever pupal eggstokk disseksjoner forskjellige teknikker som ikke er publisert i detalj. Her skissere vi en protokoll for dissekere flekker og montering pupal eggstokkene.

I motsetning til voksen Drosophila eggstokkene, pupal eggstokkene er relativt vanskelige tilgang og undersøke på grunn av sin lille størrelse, translucence og encasing innenfor en pupal sak. Utfordringen med å dissekere pupal eggstokkene ligger også i deres fysiske plassering i puppe: eggstokkene er omgitt av fett kroppens celler inne pupal magen, og disse fett celler må fjernes for å gi riktig antistoff flekker. For å overvinne disse utfordringene, benytter denne protokollen tilpasset Pasteur Pipetter for flergangsbruk for å trekke ut fett kroppens celler fra pupal magen. Videre brukes en kamret coverglass i stedet for et microcentrifuge rør under farging prosessen for å forbedre synligheten av pupae. Men til tross for disse og andre fordeler av verktøyene som brukes i denne protokollen, kan vellykket gjennomføring av disse teknikkene fortsatt innebære flere dager praksis på grunn av den lille størrelsen på pupal eggstokkene. Teknikkene i denne protokollen kan brukes til tid kurs eksperimenter som analyseres eggstokkene på ulike stadier av pupal utvikling.

Stilk cellen forskning benytter Drosophila eggstokkene vokst mye siden den første dokumentasjonen av en stilk cellen nisje1,2,3,4. Følge utviklingen av avstamning genetisk sporingsverktøyene, Drosophila eggstokk disseksjoner har blitt brukt til å studere stamcelleforskningen overleveringslinjer og signalnettverk trasé som regulerer stamcelleforskningen vedlikehold, spredning og skjebne i stamcelleforskningen nisje. Kunnskap om disse signalveier kan gi innsikt i mulige årsaker til kreft fra avvikende stamcelleforskningen akt....

Log in or to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

1. EggLaying

  1. Kombiner ca ti mann og femten kvinnelige voksen Drosophila flyr av ønsket genotype i ampuller med vanlig rik fly mat supplert med gjær. For å unngå overbefolkning ampullen, tillate parret kvinner å legge egg i mer enn 2-4 h14.
  2. Overføre voksne fra ampullen til en ny medisinglass ved å tappe ampullen åpning mot ulike ampuller med fly mat. Tillate egg å utvikle i larvae ved romtemperatur for 3-4 dager.

2. velge kvinnel.......

Log in or to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Vellykket gjennomføring av denne prosedyren skal resultere i klart antistoff flekker som avslører struktur og mobilnettet organisering av en Drosophila pupal eggstokken. Immunohistochemistry i denne protokollen kan brukes til å identifisere celletyper ofte farget i larver og voksne eggstokkene. Celler med pupal stilken avledet fra sverme celler18 (uthevet av Fasciclin III i hvitt) er vist i Figur 3. I tillegg til utheving m.......

Log in or to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Det mest viktige og vanskelige trinnet av denne protokollen innebærer utarbeidelsen av pupal eggstokkene før fiksering. For å sikre at eggstokkene, små og begravd fett kroppens celler inne pupal magen, er farget tilstrekkelig med antistoffer, er det viktig å ikke bare rive en stor åpning i abdominal sekk med tang, men også trekke ut fett kroppens celler som hindrer den eggstokkene fra antistoffer. Vellykket gjennomføring av dette trinnet krever anvendelse av subtile press på Pasteur Pipetter pære mens du vasker.......

Log in or to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Denne forskningen ble støttet av National Institutes of Health (RO1 GM079351 til dk). Vi takker Dorothea Godt for hennes nyttige råd på pupal eggstokk disseksjoner basert på hennes opprinnelige protokollen. Vi takker også Amy Reilein for hennes assistanse og kommentarer på manuskriptet.

....

Log in or to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

NameCompanyCatalog NumberComments
Dumont #5 Forceps, biologyFine Scientific Tools11252-20
Nunc Lab-Tek Chambered CoverglassThermo Fisher Scientific155383
Dissection microscopeNikonSMZ-10A
Confocal MicroscopeCarl ZeissLSM 700
Analysis softwareCarl ZeissZen
9 Depression Glass Spot PlatesPyrex7220-85
Pasteur pipetFisher Scientific13-678-6B
Pasteur pipet bulbVarious vendors
Bunsen burnerVarious vendors
Fisherfinest Premium Frosted Microscope SlidesThermo Fisher Scientific12-544-2
22 x 22 mm glass coverslips No 1VWR48366-067
Dapi Fluoromount-GSouthernBiotech0100-20
Double-sided tapeScotch
NutatorClay Adams
Fine brush #0, #3-#5Various vendors
Gilson Pipetman Starter KitThomas ScientificF167300Contains p20, p200, p1000 pipettors
16% ParaformaldehydeElectron Microscopy Sciences15710Dilute to 4% paraformaldehyde in 1x PBS
TritonSigma-Aldrich9002-93-1
10x PBSAmbionAM9624Dilute to 1x PBS
Normal Goat SerumJackson ImmunoResearch5000121Dilute to 10% normal goat serum in PBST with 0.5% Triton concentration
Primary antibodies (in protocol: 7G10 anti-Fasciclin III diluted 1:250, rabbit anti-phosphohistone H3 diluted 1:1000)Various vendors (in protocol: Developmental Studies Hybridoma Bank, Millipore)Dilute in PBST with 0.5% Triton concentration
Secondary antibodies (in protocol: Alexa-546, FITC-conjugated anti-rabbit serum)Various vendors (in protocol: Molecular Probes, Jackson ImmunoResearch Laboratories, Inc.)Dilute in PBST with 0.5% Triton concentration
Fly vialsDenville ScientificV9406
Cotton Balls, For Wide VialsGenesee Scientific51-102W
Yeast, Bakers Dried ActiveMP Biomedicals101400
Fly foodProduced in laboratoryMixture of water, brewer's yeast, cornmeal, molasses, agar, EtOH, penicillin, methyl 4-hydrobenzoate, and propionic acid
Male and female Drosophila flies (genotype used in protocol: yw; P[Fz3-RFP, w+]/TM2)Bloomington Drosophila Stock Center

  1. Losick, V., Morris, L., Fox, D., Spradling, A. Drosophila Stem Cell Niches: A Decade of Discovery Suggests a United View of Stem Cell Regulation. Dev Cell. 21 (1), 159-171 (2011).
  2. Kirilly, D., Xie, T. The Drosophila ovary: an active stem cell community. Cell Res. 17 (1), 15-25 (2007).
  3. Dansereau, D. A., Lasko, P. The Development of Germline Stem Cells in Drosophila. Method Mol Biol. 450, 3-26 (2008).
  4. Pearson, J., López-Onieva, L., Rojas-Ríos, P., Gonzáles-Reyes, A. Recent advances in Drosophila stem cell biology. Int J Dev Biol. 53, 1329-1339 (2009).
  5. Arwert, E. N., Hoste, E., Watt, F. M. Epithelial stem cells, wound healing and cancer. Nat Rev Cancer. 12 (3), 170-180 (2012).
  6. Barker, N., et al. Crypt stem cells as the cells-of-origin of intestinal cancer. Nature. 457 (7229), 608-611 (2009).
  7. Daley, G. Q. Chronic myeloid leukemia: proving ground for cancer stem cells. Cell. 119 (3), 314-316 (2004).
  8. Reilein, A., et al. Alternative direct stem cell derivatives defined by stem cell location and graded Wnt signaling. Nat Cell Biol. 19 (5), 433-444 (2017).
  9. Eliazer, S., Buszczack, M. Finding a niche: studies from the Drosophila ovary. Stem Cell Res Ther. 2 (6), 45 (2011).
  10. Godt, D., Laski, F. A. Mechanisms of cell rearrangement and cell recruitment in Drosophila ovary morphogenesis and the requirement of bric à brac. Development. 121 (1), 173-187 (1995).
  11. King, R. C., Aggarwal, S. K., Aggarwal, U. The development of the female Drosophila reproductive system. J Morphol. 124 (2), 143-166 (1968).
  12. Vlachos, S., Jangam, S., Conder, R., Chou, M., Nystul, T., Harden, N. A Pak-regulated cell intercalation event leading to a novel radial cell polarity is involved in positioning of the follicle stem cell niche in the Drosophila ovary. Development. 142 (1), 82-91 (2015).
  13. Irizarry, J., Stathopoulos, A. FGF signaling supports Drosophila fertility by regulating development of ovarian muscle tissues. Dev Biol. 404 (1), 1-13 (2015).
  14. Maimon, I., Gilboa, L. Dissection and Staining of Drosophila Larval Ovaries. J Vis Exp. (51), e2537 (2011).
  15. Kerkis, J. The Growth of the Gonads in DROSOPHILA MELANOGASTER. Genetics. 16 (3), 212-224 (1931).
  16. Yamanaka, N., et al. Neuroendocrine Control of Drosophila Larval Light Preference. Science. 341 (6150), 1113-1116 (2013).
  17. Bainbridge, S., Bownes, M. Staging the metamorphosis of Drosophila melanogaster. Development. 66, 57-80 (1981).
  18. Courdec, J., et al. The bric à brac locus consists of two paralagous genes encoding BTB/POZ domain proteins and acts as a homeotic and morphogenetic regulator of imaginal development in Drosophila. Development. 129, 2419-2433 (2002).
  19. Arrese, E. L., Soulages, J. L. INSECT FAT BODY: ENERGY, METABOLISM, AND REGULATION. Annu Rev Entomol. 55, 207-225 (2011).
  20. Zhang, Y., Xi, Y. Fat Body Development and its Function in Energy Storage and Nutrient Sensing in Drosophila melanogaster. J Tissue Sci Eng. 6 (1), (2014).
  21. Wong, L. C., Schedl, P. Dissection of Drosophila Ovaries. J Vis Exp. (1), e52 (2006).

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Research

Education

ABOUT JoVE

Copyright © 2024 MyJoVE Corporation. All rights reserved