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Developmental Biology

Dissecção e coloração dos ovários Pupal drosófila

Published: March 2nd, 2018

DOI:

10.3791/56779

1Department of Biological Sciences, Columbia University, 2Department of Cell and Systems Biology, University of Toronto

O ovário de Drosophila é um sistema excelente modelo para estudar o desenvolvimento de nicho de células-tronco. Embora métodos para dissecando larvas e adultos ovários foram publicados, dissecções de ovário pupal requerem diferentes técnicas que não tenham sido publicadas em detalhe. Aqui nós esboçamos um protocolo para dissecar, coloração e montagem ovários pupal.

Ao contrário de ovários de Drosophila adultos, pupal ovários são relativamente difíceis de acessar e examinar devido a suas pequenas tamanho, translucidez e encerra dentro de um caso de pupa. O desafio de dissecação pupal ovários também reside na sua localização física dentro a pupa: os ovários estão rodeados por células de gordura corporal dentro do abdômen pupal, e essas células de gordura deve ser removidas para permitir a adequada anticorpos. Para superar estes desafios, este protocolo utiliza personalizadas pipetas Pasteur para extrair células de gordura corporal do abdome pupal. Além disso, uma lamela septada é usada no lugar de um tubo de microcentrifugadora durante o processo de coloração para melhorar a visibilidade das pupas. No entanto, apesar de estas e outras vantagens das ferramentas utilizadas no presente protocolo, execução bem sucedida destas técnicas ainda pode envolver vários dias de prática devido ao pequeno tamanho dos ovários pupal. As técnicas descritas neste protocolo poderiam ser aplicadas para experimentos de curso do tempo em que os ovários são analisados em vários estágios de desenvolvimento pupal.

Investigação em células estaminais usando Drosophila ovários expandiu-se, amplamente, desde a primeira documentação de uma célula-tronco nicho1,2,3,4. Acompanhar o desenvolvimento de ferramentas de genética linhagem rastreamento, ovário de Drosophila dissecções foram comumente usadas para estudar as linhagens de células-tronco e sinalização de vias que regulam a manutenção de células-tronco, proliferação e destino no nicho de células-tronco. Conhecimento destas vias de sinalização pode produzir insights sobre causas potenci....

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1. ovíparos

  1. Combine-se aproximadamente dez do sexo masculino e 15 feminino adulto drosófila moscas do genótipo desejado em um frasco normal alimentos ricos em voar suplementados com levedura. Para evitar a superlotação do frasco, permitem que as fêmeas acasaladas para pôr ovos para não mais de 2 – 4 h14.
  2. Transferi os adultos do frasco para um frasco novo tocando o frasco abertura contra um frasco diferente com comida de mosca. Permitir que os ovos desenvolver.......

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Execução bem sucedida deste procedimento deve resultar na mancha do anticorpo claro que revela a estrutura e organização celular de um ovário pupal da drosófila . Imuno-histoquímica descrita no presente protocolo pode ser usado para identificar tipos de células, comumente manchados em ovários de larvas e adultos. As células do caule pupal derivado enxame células18 (esboçado por Fasciclin III em branco) são mostrados na Fig.......

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A etapa mais crítica e difícil do presente protocolo envolve a preparação de pupa ovários antes da fixação. Para garantir que os ovários, pequenos e enterrados por células de gordura corporal dentro do abdômen pupal, estão manchados suficientemente com anticorpos, é importante não só rasgar uma abertura grande no saco abdominal com fórceps, mas também extrair as células de gordura corporal que obstruem o ovários de anticorpos. Execução bem sucedida dessa etapa requer a aplicação de pressão sutil so.......

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Esta pesquisa foi apoiada pelo National Institutes of Health (RO1 GM079351 de D.K.). Agradecemos Dorothea Godt dela conselhos úteis sobre dissecações de ovário pupal, baseado no seu protocolo original. Agradecemos também a Amy Reilein por sua assistência e comentários sobre o manuscrito.

....

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NameCompanyCatalog NumberComments
Dumont #5 Forceps, biologyFine Scientific Tools11252-20
Nunc Lab-Tek Chambered CoverglassThermo Fisher Scientific155383
Dissection microscopeNikonSMZ-10A
Confocal MicroscopeCarl ZeissLSM 700
Analysis softwareCarl ZeissZen
9 Depression Glass Spot PlatesPyrex7220-85
Pasteur pipetFisher Scientific13-678-6B
Pasteur pipet bulbVarious vendors
Bunsen burnerVarious vendors
Fisherfinest Premium Frosted Microscope SlidesThermo Fisher Scientific12-544-2
22 x 22 mm glass coverslips No 1VWR48366-067
Dapi Fluoromount-GSouthernBiotech0100-20
Double-sided tapeScotch
NutatorClay Adams
Fine brush #0, #3-#5Various vendors
Gilson Pipetman Starter KitThomas ScientificF167300Contains p20, p200, p1000 pipettors
16% ParaformaldehydeElectron Microscopy Sciences15710Dilute to 4% paraformaldehyde in 1x PBS
TritonSigma-Aldrich9002-93-1
10x PBSAmbionAM9624Dilute to 1x PBS
Normal Goat SerumJackson ImmunoResearch5000121Dilute to 10% normal goat serum in PBST with 0.5% Triton concentration
Primary antibodies (in protocol: 7G10 anti-Fasciclin III diluted 1:250, rabbit anti-phosphohistone H3 diluted 1:1000)Various vendors (in protocol: Developmental Studies Hybridoma Bank, Millipore)Dilute in PBST with 0.5% Triton concentration
Secondary antibodies (in protocol: Alexa-546, FITC-conjugated anti-rabbit serum)Various vendors (in protocol: Molecular Probes, Jackson ImmunoResearch Laboratories, Inc.)Dilute in PBST with 0.5% Triton concentration
Fly vialsDenville ScientificV9406
Cotton Balls, For Wide VialsGenesee Scientific51-102W
Yeast, Bakers Dried ActiveMP Biomedicals101400
Fly foodProduced in laboratoryMixture of water, brewer's yeast, cornmeal, molasses, agar, EtOH, penicillin, methyl 4-hydrobenzoate, and propionic acid
Male and female Drosophila flies (genotype used in protocol: yw; P[Fz3-RFP, w+]/TM2)Bloomington Drosophila Stock Center

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