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Biology

Analyse des modèles de motilité du stentor pendant et après la régénération de l’appareil buccal à l’aide du suivi cellulaire

Published: April 26th, 2021

DOI:

10.3791/62352

1W. M. Keck Science Department, Scripps, Pitzer, and Claremont McKenna of The Claremont Colleges, 2W. M. Keck Science Department, Pitzer College, 3W. M. Keck Science Department, Scripps College, 4Department of Biochemistry and Biophysics, School of Medicine, University of California at San Francisco

Nous présentons un protocole pour la caractérisation de la motilité et du comportement d’une population de cellules de taille cent microns à millimètres en utilisant la microscopie à fond clair et le suivi cellulaire. Ce test révèle que Stentor coeruleus passe par quatre phases comportementalement distinctes lors de la régénération d’un appareil buccal perdu.

Stentor coeruleus est un organisme modèle bien connu pour l’étude de la régénération unicellulaire. L’analyse transcriptomique de cellules individuelles a révélé des centaines de gènes dont beaucoup ne sont pas associés à l’appareil buccal (OA) – qui sont régulés différemment par phases tout au long du processus de régénération. On a émis l’hypothèse que cette réorganisation systémique et cette mobilisation des ressources cellulaires vers la croissance d’une nouvelle arthrose entraîneront des changements observables dans le mouvement et le comportement correspondant dans le temps aux phases d’expression différentielle des gènes. Cependant, la complexité morphologique de S. coeruleus a nécessité le développement d’un test pour capturer les statistiques et l’échelle de temps. Un script personnalisé a été utilisé pour suivre les cellules dans de courtes vidéos, et des statistiques ont été compilées sur une grande population (N ~ 100). Lors de la perte de l’OA, S. coeruleus perd initialement la capacité de mouvement dirigé; puis à partir de ~4 h, il présente une baisse significative de vitesse jusqu’à ~8 h. Ce test fournit un outil utile pour le dépistage des phénotypes de motilité et peut être adapté pour l’étude d’autres organismes.

Stentor coeruleus (Stentor) est un organisme modèle bien connu qui a été utilisé pour étudier la régénération unicellulaire en raison de sa grande taille, de sa capacité à résister à plusieurs techniques microchirurgicales et de sa facilité de culture en laboratoire 1,2,3. Les premières études de régénération se sont concentrées sur la caractéristique la plus importante et la plus morphologiquement distincte de Stentor – l’ARTH – qui est complètement éliminée lors d’un choc chimique 4,5,6

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NOTE: Une population d’environ cent cellules de S. coeruleus a été cultivée conformément à un protocole JoVE8 publié précédemment.

1. Préparation de l’échantillon

  1. Coupez un morceau de feuille d’espacement en silicone de 250 μm d’épaisseur (table des matériaux) légèrement plus petit en hauteur et en largeur qu’une lame de microscope. À l’aide d’un poinçon de trou de 5/16 », créez des puits circulaires........

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L’objectif de ce test est de quantifier le changement progressif des schémas de mouvement et l’augmentation progressive de la vitesse de mouvement des cellules au sein d’une grande population de stentors régénérants (N ~ 100). Pour faciliter l’interprétation des résultats, le code personnalisé inclus dans ce protocole génère deux types de tracés : une superposition de toutes les traces de mouvement des cellules dans un ensemble de données vidéo (Figure 1C-F

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De nombreux algorithmes de suivi des particules et des cellules existent actuellement, certains entièrement gratuits. Le coût et la convivialité sont souvent des compromis qui nécessitent des compromis. De plus, de nombreux programmes de suivi cellulaire existants sont conçus pour suivre le mouvement lent des cellules de culture tissulaire, plutôt que le mouvement de nage rapide de Stentor, qui tourne pendant la natation et peut subir des changements soudains de direction. Après avoir testé bon nombre de.......

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Ce travail a été soutenu, en partie, par le Marine Biological Laboratory Whitman Early Career Fellowship (JYS). Nous remercions Evan Burns, Mit Patel, Melanie Melo et Skylar Widman pour leur aide dans l’analyse préliminaire et les tests de code. Nous remercions Mark Slabodnick pour ses discussions et ses suggestions. WFM reconnaît le soutien de la subvention R35 GM130327 des NIH.

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NameCompanyCatalog NumberComments
0.25 mm-thick silicone sheetGrace Bio-LabsCWS-S-0.25
24 x 50 mm, #1.5 coverglassFisher ScientificNC1034527As noted in Discussion, smaller coverglass can be used if fewer sample wells are placed on one slide.
CCD cameraWe used Nikon D750
Chlamydomonas 137c WT strainChlamydomonas Resource CenterCC-125
MATLABMATHWORKS
MATLAB Image Processing ToolboxMATHWORKSneeded for TrackCells.m and CleanTraces.m
MATLAB Statistics and Machine Learning ToolboxMATHWORKSneeded for TrackCells.m
Microscope with camera portWe used Zeiss AxioZoom v1.6 and Leica S9E
Pasteurized Spring WaterCarolina132458
TAP Growth MediaThermoFisher ScientificA1379801Can also be made for much cheaper following recipe from Chlamy Resource Center

  1. Lillie, F. R. On the smallest parts of stentor capable of regeneration; a contribution on the limits of divisibility of living matter. Journal of Morphology. 12 (1), 239-249 (1896).
  2. Morgan, T. H. Regeneration of proportionate structures in Stentor. The Biological Bulletin. 2 (6), 311-328 (1901).
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  4. Tartar, V. Reactions of Stentor coeruleus to certain substances added to the medium. Experimental Cell Research. 13 (2), 317-332 (1957).
  5. Kelleher, J. K. A kinetic model for microtubule polymerization during oral regeneration in Stentor coeruleus. Biosystems. 9 (4), 269-279 (1977).
  6. Slabodnick, M. M., et al. The kinase regulator Mob1 acts as a patterning protein for Stentor morphogenesis. PLOS Biology. 12 (5), 1001861 (2014).
  7. Wan, K. Y., et al. Reorganization of complex ciliary flows around regenerating Stentor coeruleus. Philosophical Transactions of the Royal Society B: Biological Sciences. 375 (1792), 20190167 (2020).
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  10. Onsbring, H., Jamy, M., Ettema, T. J. G. RNA sequencing of Stentor cell fragments reveals transcriptional changes during cellular regeneration. Current Biology. 28 (8), 1281-1288 (2018).

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