Summary
Abstract
Introduction
Protocol
Representative Results
Discussion
Acknowledgements
Materials
References
Biology
För att erhålla en axenisk insekt steriliseras dess äggyta och den kläckta larven uppföds därefter med axeniska löv. Denna metod ger ett effektivt sätt för axenisk insektsberedning utan att administrera antibiotika eller utveckla en konstgjord diet, som också kan appliceras på andra bladätande insekter.
Insekts tarmar koloniseras av olika bakterier som kan påverka värdens fysiologiska egenskaper djupt. Att introducera en viss bakteriestam i en axenisk insekt är en kraftfull metod för att verifiera tarmens mikrobiella funktion och belysa mekanismerna bakom tarmmikrob-värdinteraktioner. Administrering av antibiotika eller sterilisering av äggytor är två vanliga metoder för att ta bort tarmbakterier från insekter. Men förutom de potentiella negativa effekterna av antibiotika på insekter, indikerade tidigare studier att utfodring av antibiotika inte kunde eliminera tarmbakterier. Således används bakteriefria konstgjorda dieter i allmänhet för att upprätthålla axeniska insekter, vilket är en tråkig och arbetsintensiv process som inte helt kan likna näringskomponenter i naturlig mat. Här beskrivs ett effektivt och enkelt protokoll för att förbereda och underhålla axeniska larver av en bladbagge (Plagiodera versicolora). Specifikt steriliserades ytorna på skalbaggsäggen, varefter bakteriefria poppelblad användes för att odla axeniska larver. Insekternas axeniska status bekräftades ytterligare via kulturberoende och kulturoberoende analyser. Sammantaget, genom att kombinera äggdesinfektion och bakteriefri odling, utvecklades en effektiv och bekväm metod för att erhålla axenisk P. versicolora, vilket ger ett lätt överförbart verktyg för andra bladätande insekter.
I likhet med däggdjur är insektens matsmältningsorgan ett hålrum för matsmältning och absorption. De flesta insekter har olika kommensala bakterier som trivs i sina tarmar och lever på näring som levereras av värdar1. Tarmsamhället har en djupgående inverkan på flera fysiologiska processer hos insekter, inklusive matsmältning och avgiftning 2,3,4, näring och utveckling 5,6,7, försvar mot patogener och parasiter 8,9,10,11....
1. Insektsuppfödning
Livsstadierna för P. versicolora visas i figur 1. Den vuxna hanen är mindre än den vuxna honan (figur 1A). I fält kluster skalbaggen sina ägg på ett blad; här lösgjordes fyra ägg från ett blad (figur 1B). Poppelstamsegmenten och plantorna som används för axenisk insektsuppfödning visas i figur 2. Tarmen hos en 3rd instar larva visas i figur 3
Beredning av bakteriefria larver och erhållande av gnotobiotiska larver genom att återinföra specifika bakteriestammar är kraftfulla metoder för att belysa mekanismerna bakom värd-mikrobinteraktioner. Nykläckta larver får tarmmikrobiota på två huvudsakliga sätt: vertikal överföring från modern till avkomman eller horisontellt förvärv från syskon och miljön34. Den förstnämnda kan uppfyllas genom föräldraöverföring till avkomman genom förorening av äggytan.......
Name | Company | Catalog Number | Comments |
0.22 µm syringe filters | Millipore | SLGP033RB | |
1 mg/mL NAA stock solution | a. Prepare 0.1 M NaOH solution (dissolve 0.8 g NaOH in 200 mL of distilled water). b. Add 0.2 g NAA in a 250 mL beaker, add little 0.1 M NaOH solution until NAA dissolved, and adjust the final volume to 200 mL with distilled water. c. Filter the solution to remove bacteria with a 0.22 µm syringe filter and a 50 mL sterile syringe, subpackage the solution in 1.5 mL centrifuge tubes and restore at -20 °C. | ||
1.5 mL microcentrifuge tubes | Sangon Biotech | F600620 | |
10x PBS stock solution | Biosharp Life Sciences | BL302A | |
2 M KOH solution | Dissolve 22.44 g KOH (molecular weight: 56.1) in 200 mL of distilled water and autoclave it for 20 min at 121 °C. | ||
250 mL and 2,000 mL beakers | Shubo | sb16455 | |
50 mL sterile syringes | Jinta | JT0125789 | |
500 mL measuring cylinder | Shubo | sb1601 | |
50x TAE stock solution | a. Dissolve 242 g Tris and 18.612 g EDTA in 700 mL of distilled water. b. Adjust pH to 7.8 with about 57.1 mL of acetic acid. c. Adjust the final volume to 1,000 mL. d. The stock solution was diluted to 1x TAE buffer when used. | ||
75% ethanol | Xingheda trade | ||
α-naphthalene acetic acid (NAA) | Solarbio Life Sciences | 86-87-3 | |
Absorbing paper | 22.3 cm x 15.3 cm x 9 cm | ||
Acetic acid | Sinopharm Chemical Reagent Co. Ltd | ||
Agar | Coolaber | 9002-18-0 | |
Agarose | Biowest | 111860 | |
Autoclave | Panasonic | MLS-3781L-PC | |
Bead-beating homogenizer | Jing Xin | XM-GTL64 | |
DNA extraction kit | MP Biomedicals | 116560200 | |
EDTA | Saiguo Biotech | 1340 | |
Filter paper | Jiaojie | 70 mm diameter | |
Gel electrophoresis unit | Bio-rad | 164-5052 | |
Gel Signal Green nucleic acid dye | TsingKe | TSJ003 | |
Germ-free poplar seedlings | Shan Xin poplar from Ludong University in Shandong Province | ||
Golden Star Super PCR Master Mix (1.1×) | TsingKe | TSE101 | |
Growth chamber | Ruihua | HP400GS-C | |
LB agar medium | a. Dissolve 5 g tryptone, 5 g NaCl, 2.5 g yeast extract in 300 mL of distilled water. b. Adjust the final volume to 500 mL, transfer the solution to a 1,000 mL conical flask, and add 7.5 g agar. c. Autoclave the medium for 20 min at 121 °C. | ||
Mini centrifuge | DRAGONLAB | D1008 | |
MS basic medium | Coolaber | PM1121-50L | M0245 |
MS solid medium for germ-free poplar seedling culture | a. Dissolve 4.43 g MS basic medium powder and 30 g sucrose in 800 mL of distilled water. b. Adjust the pH to about 5.8 with 2 M KOH by a pH meter. c. Adjust the final volume to 1,000 mL, separate into two parts, transfer into two 1,000 mL conical flasks, and add 2.6 g agar per 500 mL. d. Autoclave for 20 min at 121 °C. | ||
NanoDrop 1000 spectrophotometer | Thermo Fisher Scientific | ||
Paintbrush | 1 cm width, used to collect the eggs | ||
Parafilm | Bemis | PM-996 | |
PCR Thermal Cyclers | Eppendorf | 6331000076 | |
Petri dishes | Supin | 90 mm diameter | |
pH meter | METTLER TOLEDO | FE20 | |
Pipettes 0.2-2 µL | Gilson | ECS000699 | |
Pipettes 100-1,000 µL | Eppendorf | 3120000267 | |
Pipettes 20-200 µL | Eppendorf | 3120000259 | |
Pipettes 2-20 µL | Eppendorf | 3120000232 | |
Plant tissue culture container | Chembase | ZP21 | 240 mL |
Plastic box | 2.35 L | ||
Potassium hydroxide (KOH) | Sinopharm Chemical Reagent Co. Ltd | ||
Primers for amplifying the bacterial 16S rRNA gene | Sangon Biotech | 27-F: 5’-ACGGATACCTTGTTACGAC-3’, 1492R: 5’-ACGGATACCTTGTTACGAC-3’ | |
Sodium chloride (NaCl) | Sinopharm Chemical Reagent Co. Ltd | ||
Sodium hydroxide (NaOH) | Sinopharm Chemical Reagent Co. Ltd | ||
Steel balls | 0.25 mm | used to grind tissues | |
Stereomicroscope | OLYMPUS | SZ61 | |
Sucrose | Sinopharm Chemical Reagent Co. Ltd | ||
Trans2K plus II DNA marker | Transgene Biotech | BM121-01 | |
Tris base | Biosharp Life Sciences | 1115 | |
Tryptone | Thermo Fisher Scientific | LP0037 | |
UV transilluminator | Monad Biotech | QuickGel 6100 | |
Vortexer | Scilogex | MX-S | |
Willow branches | Sha Lake Park, Wuhan, China | ||
Willow leaf beetle | Huazhong Agricultural University, Wuhan, China | ||
Yeast extract | Thermo Fisher Scientific | LP0021 |
ABOUT JoVE
Copyright © 2024 MyJoVE Corporation. All rights reserved