Summary
Abstract
Introduction
Protocol
Representative Results
Discussion
Acknowledgements
Materials
References
Biology
Aksenik bir böcek elde etmek için, yumurta yüzeyi sterilize edilir ve yumurtadan çıkan larva daha sonra aksenik yapraklar kullanılarak yetiştirilir. Bu yöntem, antibiyotik uygulamadan veya diğer yaprak yiyen böceklere de uygulanabilen yapay bir diyet geliştirmeden aksenik böcek preparatı için etkili bir yol sağlar.
Böcek bağırsakları, konağın fizyolojik özelliklerini derinden etkileyebilecek çeşitli bakteriler tarafından kolonize edilir. Belirli bir bakteri suşunu aksenik bir böceğe sokmak, bağırsak mikrobiyal fonksiyonunu doğrulamak ve bağırsak mikrobu-konakçı etkileşimlerinin altında yatan mekanizmaları aydınlatmak için güçlü bir yöntemdir. Antibiyotik uygulamak veya yumurta yüzeylerini sterilize etmek, bağırsak bakterilerini böceklerden uzaklaştırmak için yaygın olarak kullanılan iki yöntemdir. Bununla birlikte, antibiyotiklerin böcekler üzerindeki potansiyel olumsuz etkilerine ek olarak, önceki çalışmalar, beslenme antibiyotiklerinin bağırsak bakterilerini ortadan kaldıramayacağını göstermiştir. Bu nedenle, mikropsuz yapay diyetler genellikle doğal gıdalardaki besin bileşenlerine tam olarak benzeyemeyen sıkıcı ve emek yoğun bir süreç olan aksenik böcekleri korumak için kullanılır. Burada tarif edilen, bir yaprak böceğinin (Plagiodera versicolora) aksenik larvalarını hazırlamak ve sürdürmek için etkili ve basit bir protokoldür. Spesifik olarak, böcek yumurtalarının yüzeyleri sterilize edildi, ardından aksenik larvaları desteklemek için mikropsuz kavak yaprakları kullanıldı. Böceklerin aksenik durumu, kültüre bağımlı ve kültürden bağımsız analizlerle daha da doğrulandı. Toplu olarak, yumurta dezenfeksiyonu ve mikropsuz yetiştiriciliği birleştirerek, diğer yaprak yiyen böcekler için kolayca aktarılabilir bir araç sağlayan aksenik P. versicolora elde etmek için verimli ve uygun bir yöntem geliştirilmiştir.
Memelilere benzer şekilde, böcek sindirim sistemi, gıda sindirimi ve emilimi için bir boşluktur. Çoğu böcek, bağırsaklarında gelişen ve konakçılar tarafından sağlanan beslenmeyle yaşayan çeşitli kommensal bakterileri barındırır1. Bağırsak komensal topluluğu, gıda sindirimi ve detoksifikasyonu 2,3,4, beslenme ve gelişme 5,6,7, patojenlere ve parazitlere karşı savunma 8,9,10,11, kimyasal iletişim ....
1. Böcek yetiştiriciliği
P. versicolora'nın yaşam evreleri Şekil 1'de gösterilmiştir. Yetişkin erkek, yetişkin dişiden daha küçüktür (Şekil 1A). Tarlada, böcek yumurtalarını bir yaprak üzerinde kümeler; burada bir yapraktan dört yumurta ayrılmıştır (Şekil 1B). Aksenik böcek yetiştiriciliği için kullanılan kavak sapı segmentleri ve fideleri Şekil 2'de gösterilmiştir. 3. instar larvasın?.......
Mikropsuz larvaların hazırlanması ve spesifik bakteri suşlarının yeniden sokulmasıyla gnotobiyotik larvaların elde edilmesi, konakçı-mikrop etkileşimlerinin altında yatan mekanizmaları aydınlatmak için güçlü yöntemlerdir. Yeni yumurtadan çıkan larvalar bağırsak mikrobiyotasını iki ana yolla elde eder: anneden yavrulara dikey geçiş veya kardeşlerden yatay edinim ve çevre34. İlki, yumurta yüzeyinin kirlenmesi yoluyla yavrulara ebeveyn transferi ile yerine getirilebilir.......
Name | Company | Catalog Number | Comments |
0.22 µm syringe filters | Millipore | SLGP033RB | |
1 mg/mL NAA stock solution | a. Prepare 0.1 M NaOH solution (dissolve 0.8 g NaOH in 200 mL of distilled water). b. Add 0.2 g NAA in a 250 mL beaker, add little 0.1 M NaOH solution until NAA dissolved, and adjust the final volume to 200 mL with distilled water. c. Filter the solution to remove bacteria with a 0.22 µm syringe filter and a 50 mL sterile syringe, subpackage the solution in 1.5 mL centrifuge tubes and restore at -20 °C. | ||
1.5 mL microcentrifuge tubes | Sangon Biotech | F600620 | |
10x PBS stock solution | Biosharp Life Sciences | BL302A | |
2 M KOH solution | Dissolve 22.44 g KOH (molecular weight: 56.1) in 200 mL of distilled water and autoclave it for 20 min at 121 °C. | ||
250 mL and 2,000 mL beakers | Shubo | sb16455 | |
50 mL sterile syringes | Jinta | JT0125789 | |
500 mL measuring cylinder | Shubo | sb1601 | |
50x TAE stock solution | a. Dissolve 242 g Tris and 18.612 g EDTA in 700 mL of distilled water. b. Adjust pH to 7.8 with about 57.1 mL of acetic acid. c. Adjust the final volume to 1,000 mL. d. The stock solution was diluted to 1x TAE buffer when used. | ||
75% ethanol | Xingheda trade | ||
α-naphthalene acetic acid (NAA) | Solarbio Life Sciences | 86-87-3 | |
Absorbing paper | 22.3 cm x 15.3 cm x 9 cm | ||
Acetic acid | Sinopharm Chemical Reagent Co. Ltd | ||
Agar | Coolaber | 9002-18-0 | |
Agarose | Biowest | 111860 | |
Autoclave | Panasonic | MLS-3781L-PC | |
Bead-beating homogenizer | Jing Xin | XM-GTL64 | |
DNA extraction kit | MP Biomedicals | 116560200 | |
EDTA | Saiguo Biotech | 1340 | |
Filter paper | Jiaojie | 70 mm diameter | |
Gel electrophoresis unit | Bio-rad | 164-5052 | |
Gel Signal Green nucleic acid dye | TsingKe | TSJ003 | |
Germ-free poplar seedlings | Shan Xin poplar from Ludong University in Shandong Province | ||
Golden Star Super PCR Master Mix (1.1×) | TsingKe | TSE101 | |
Growth chamber | Ruihua | HP400GS-C | |
LB agar medium | a. Dissolve 5 g tryptone, 5 g NaCl, 2.5 g yeast extract in 300 mL of distilled water. b. Adjust the final volume to 500 mL, transfer the solution to a 1,000 mL conical flask, and add 7.5 g agar. c. Autoclave the medium for 20 min at 121 °C. | ||
Mini centrifuge | DRAGONLAB | D1008 | |
MS basic medium | Coolaber | PM1121-50L | M0245 |
MS solid medium for germ-free poplar seedling culture | a. Dissolve 4.43 g MS basic medium powder and 30 g sucrose in 800 mL of distilled water. b. Adjust the pH to about 5.8 with 2 M KOH by a pH meter. c. Adjust the final volume to 1,000 mL, separate into two parts, transfer into two 1,000 mL conical flasks, and add 2.6 g agar per 500 mL. d. Autoclave for 20 min at 121 °C. | ||
NanoDrop 1000 spectrophotometer | Thermo Fisher Scientific | ||
Paintbrush | 1 cm width, used to collect the eggs | ||
Parafilm | Bemis | PM-996 | |
PCR Thermal Cyclers | Eppendorf | 6331000076 | |
Petri dishes | Supin | 90 mm diameter | |
pH meter | METTLER TOLEDO | FE20 | |
Pipettes 0.2-2 µL | Gilson | ECS000699 | |
Pipettes 100-1,000 µL | Eppendorf | 3120000267 | |
Pipettes 20-200 µL | Eppendorf | 3120000259 | |
Pipettes 2-20 µL | Eppendorf | 3120000232 | |
Plant tissue culture container | Chembase | ZP21 | 240 mL |
Plastic box | 2.35 L | ||
Potassium hydroxide (KOH) | Sinopharm Chemical Reagent Co. Ltd | ||
Primers for amplifying the bacterial 16S rRNA gene | Sangon Biotech | 27-F: 5’-ACGGATACCTTGTTACGAC-3’, 1492R: 5’-ACGGATACCTTGTTACGAC-3’ | |
Sodium chloride (NaCl) | Sinopharm Chemical Reagent Co. Ltd | ||
Sodium hydroxide (NaOH) | Sinopharm Chemical Reagent Co. Ltd | ||
Steel balls | 0.25 mm | used to grind tissues | |
Stereomicroscope | OLYMPUS | SZ61 | |
Sucrose | Sinopharm Chemical Reagent Co. Ltd | ||
Trans2K plus II DNA marker | Transgene Biotech | BM121-01 | |
Tris base | Biosharp Life Sciences | 1115 | |
Tryptone | Thermo Fisher Scientific | LP0037 | |
UV transilluminator | Monad Biotech | QuickGel 6100 | |
Vortexer | Scilogex | MX-S | |
Willow branches | Sha Lake Park, Wuhan, China | ||
Willow leaf beetle | Huazhong Agricultural University, Wuhan, China | ||
Yeast extract | Thermo Fisher Scientific | LP0021 |
ABOUT JoVE
Copyright © 2024 MyJoVE Corporation. All rights reserved