Summary
Abstract
Introduction
Protocol
Representative Results
Discussion
Acknowledgements
Materials
References
Neuroscience
Denne protokol beskriver metoder til sektionering, farvning og billeddannelse af fritsvævende vævssektioner i musehjernen efterfulgt af en detaljeret beskrivelse af analysen af astrocytområdevolumen og astrocytterritoriumoverlapning eller flisebelægning.
Astrocytter besidder en forbløffende grad af morfologisk kompleksitet, der gør det muligt for dem at interagere med næsten alle typer celler og strukturer i hjernen. Gennem disse interaktioner regulerer astrocytter aktivt mange kritiske hjernefunktioner, herunder synapsedannelse, neurotransmission og ionhomeostase. I gnaverhjernen vokser astrocytter i størrelse og kompleksitet i løbet af de første tre postnatale uger og etablerer forskellige, ikke-overlappende territorier for at flise hjernen. Denne protokol giver en etableret metode til analyse af astrocytområdevolumen og astrocytfliser ved hjælp af fritsvævende vævssektioner fra musehjernen. For det første beskriver denne protokol trinene til vævsindsamling, kryosesektion og immunostaining af fritflydende vævssektioner. For det andet beskriver denne protokol billedoptagelse og analyse af astrocytområdevolumen og territoriumoverlapningsvolumen ved hjælp af kommercielt tilgængelig billedanalysesoftware. Endelig diskuterer dette manuskript fordelene, vigtige overvejelser, almindelige faldgruber og begrænsninger ved disse metoder. Denne protokol kræver hjernevæv med sparsom eller mosaik fluorescerende mærkning af astrocytter og er designet til at blive brugt med fælles laboratorieudstyr, konfokal mikroskopi og kommercielt tilgængelig billedanalysesoftware.
Astrocytter er udførligt forgrenede celler, der udfører mange vigtige funktioner i hjernen1. I musebarken giver radiale glialstamceller anledning til astrocytter i de sene embryonale og tidlige postnatale stadier2. I løbet af de første tre postnatale uger vokser astrocytter i størrelse og kompleksitet og udvikler tusindvis af fine grene, der direkte interagerer med synapser1. Samtidig interagerer astrocytter med tilstødende astrocytter for at etablere diskrete, ikke-overlappende territorier for at flise hjernen3, samtidig med at kommunikationen opretholdes via gap ....
Alle mus blev brugt i overensstemmelse med Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC) ved University of North Carolina i Chapel Hill og Division of Comparative Medicine (IACUC protokolnummer 21-116.0). Mus af begge køn på postnatal dag 21 (P21) blev brugt til disse forsøg. CD1-mus blev opnået kommercielt (Materialetabel), og MADM9 WT:WT- og MADM9 WT:KO-mus blev beskrevet tidligere9.
BEMÆRK: Denne protokol kræver hjerner med fluorescerende.......
Figur 1 viser en skematisk oversigt over de vigtigste trin og arbejdsgange for denne protokol. Figur 2 viser skærmbilleder af nøgletrin ved hjælp af billedanalysesoftwaren til at generere en overflade, generere pletter tæt på overfladen og generere et konvekst skrog. Figur 3 viser anvendelsen af denne teknik til at bestemme astrocytområdeoverlapning / flisebelægning. I figur 4 viser repræsentati.......
Denne protokol beskriver en etableret metode til analyse af astrocytområdevolumen og astrocytfliser i musebarken, der beskriver alle de vigtigste trin, der begynder med perfusion og slutter med billedanalyse. Denne protokol kræver hjerner fra mus, der udtrykker fluorescerende proteiner i en sparsom eller mosaikpopulation af astrocytter. Uden for dette krav kan mus i alle aldre anvendes til denne protokol med kun mindre justeringer af perfusionsindstillinger og mængden af frysemedier tilføjet til indlejringsformen. Me.......
Mikroskopi blev udført på UNC Neuroscience Microscopy Core (RRID: SCR_019060), delvist støttet af finansiering fra NIH-NINDS Neuroscience Center Support Grant P30 NS045892 og NIH-NICHD Intellectual and Developmental Disabilities Research Center Support Grant U54 HD079124. Figur 1 blev oprettet med BioRender.com. Billederne og dataene i figur 4 er genoptrykt fra en tidligere publikation9 med tilladelse fra udgiveren.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
#5 forceps | Roboz | RS-5045 | |
1 mL TB Syringe | Becton Dickinson (BD) | 309623 | |
10x TBS (tris-buffered saline) | 30 g Tris, 80 g NaCl, 2 g KCl, HCl to pH 7.4, dH2O to 1 L; store at room temperature (RT) | ||
12-well plate | Genesee Scientific | 25-106MP | |
1x TBS | 100 mL 10x TBS + 900 mL dH2O; store at RT | ||
1x TBS + Heparin | 28.2 mg Heparin + 250 mL 1x TBS; store at 4 °C | ||
24-well plate | Genesee Scientific | 25-107MP | |
30% Sucrose in TBS | 15 g sucrose, 1x TBS to 50 mL; store at 4 °C | ||
4% PFA (paraformaldehyde) in TBS | 40 g PFA, 4-6 NaOH pellets, 100 mL 10x TBS, dH2O to 1 L; store at 4 °C | ||
Avertin | 0.3125 g tri-bromoethanol, 0.625 mL methylbutanol, dH2O to 25 mL; store at 4 °C; discard 2 weeks after making | ||
Blocking and antibody buffer | 10% goat serum in TBST; store at 4 °C | ||
CD1 mice | Charles River | 022 | |
Collection vial for brains | Fisher Scientific | 03-337-20 | |
Confocal acquisition software | Olympous | FV31S-SW | |
Confocal microscope | Olympus | FV3000RS | |
Coverslips | Fisher Scientific | 12544E | |
Cryostat | Thermo Scientific | CryoStar NX50 | |
Cryostat blade | Thermo Scientific | 3052835 | |
DAPI | Invitrogen | D1306 | |
Embedding mold | Polysciences | 18646A-1 | |
Freezing Medium | 2:1 30% sucrose:OCT; store at RT | ||
GFP antibody | Aves Labs | GFP1010 | |
Glycerol | Thermo Scientific | 158920010 | |
Goat anti-chicken 488 | Invitrogen | A-11039 | |
Goat anti-rabbit 594 | Invitrogen | A11037 | |
Goat Serum | Gibco | 16210064 | |
Heparin | Sigma-Aldrich | H3149 | |
Hydrochloric acid | Sigma-Aldrich | 258148 | |
Imaris | Bitplane | N/A | Version 9.8.0 |
MATLAB | MathWorks | N/A | |
Metal lunch tin | AQUARIUS | N/A | From Amazon, "DIY Large Fun Box" |
Methylbutanol | Sigma-Aldrich | 152463 | |
Micro Dissecting Scissors | Roboz | RS-5921 | |
Mouting medium | 20mM Tris pH8.0, 90% Glycerol, 0.5% N-propyl gallate ; store at 4 °C; good for up to 2 months | ||
Nailpolish | VWR | 100491-940 | |
N-propyl gallate | Sigma-Aldrich | 02370-100G | |
O.C.T. | Fisher Scientific | 23-730-571 | |
Oil | Olympus | IMMOIL-F30CC | Specific to microscope/objective |
Operating Scissors 6" | Roboz | RS-6820 | |
Orbital platform shaker | Fisher Scientific | 88861043 | Minimum speed needed: 25 rpm |
Paintbrush | Bogrinuo | N/A | From Amazon, "Detail Paint Brushes - Miniature Brushes" |
Paraformaldehyde | Sigma-Aldrich | P6148 | |
Pasteur pipet (5.75") | VWR | 14672-608 | |
Pasteur pipet (9") | VWR | 14672-380 | |
Potassium chloride | Sigma-Aldrich | P9541-500G | |
Razor blade | Fisher Scientific | 12-640 | |
RFP antibody | Rockland | 600-401-379 | |
Sectioning medium | 1:1 glycerol:1x TBS; store at RT | ||
Slides | VWR | 48311-703 | |
Sodium chrloide | Fisher Scientific | BP358-212 | |
Sodium hydroxide | Sigma-Aldrich | S5881 | |
Sucrose | Sigma-Aldrich | S0389 | |
TBST (TBS + Triton X-100) | 0.2% Triton in 1x TBS; store at RT | ||
Transfer Pipet | VWR | 414004-002 | |
Tri-bromoethanol | Sigma-Aldrich | T48402 | |
Tris(hydroxymethyl)aminomethane | Thermo Scientific | 424570025 | |
Triton X-100 | Sigma-Aldrich | 93443 | |
Triton X-100 (high-quality) | Fisher Scientific | 50-489-120 | |
XTSpotsConvexHull | N/A | N/A | custom XTension provide as supplementary material |
Buffers and Solutions | |||
10x TBS | xx mM Tris, xx mM NaCl, xx mM KCl, pH 7.4 | ||
1x TBS | |||
1x TBS + Heparin | add xx mg Heparin to xx mL of 1x TBS | ||
4% PFA | |||
30% Sucrose in TBS | |||
Freezing Medium | |||
Sectioning medium | |||
TBST | 0.2% Triton in 1x TBS | ||
Blocking and antibody buffer | 10% goat serum in 1x TBST | ||
Mouting medium |
ABOUT JoVE
Copyright © 2024 MyJoVE Corporation. All rights reserved