JoVE Logo
Faculty Resource Center

Sign In

Summary

Abstract

Introduction

Protocol

Representative Results

Discussion

Acknowledgements

Materials

References

Neuroscience

Analyse af astrocytterritoriumvolumen og flisebelægning i tykke fritflydende vævssektioner

Published: April 20th, 2022

DOI:

10.3791/63804

1Neuroscience Center, University of North Carolina, Chapel Hill, 2Department of Cell Biology and Physiology, University of North Carolina, Chapel Hill

Denne protokol beskriver metoder til sektionering, farvning og billeddannelse af fritsvævende vævssektioner i musehjernen efterfulgt af en detaljeret beskrivelse af analysen af astrocytområdevolumen og astrocytterritoriumoverlapning eller flisebelægning.

Astrocytter besidder en forbløffende grad af morfologisk kompleksitet, der gør det muligt for dem at interagere med næsten alle typer celler og strukturer i hjernen. Gennem disse interaktioner regulerer astrocytter aktivt mange kritiske hjernefunktioner, herunder synapsedannelse, neurotransmission og ionhomeostase. I gnaverhjernen vokser astrocytter i størrelse og kompleksitet i løbet af de første tre postnatale uger og etablerer forskellige, ikke-overlappende territorier for at flise hjernen. Denne protokol giver en etableret metode til analyse af astrocytområdevolumen og astrocytfliser ved hjælp af fritsvævende vævssektioner fra musehjernen. For det første beskriver denne protokol trinene til vævsindsamling, kryosesektion og immunostaining af fritflydende vævssektioner. For det andet beskriver denne protokol billedoptagelse og analyse af astrocytområdevolumen og territoriumoverlapningsvolumen ved hjælp af kommercielt tilgængelig billedanalysesoftware. Endelig diskuterer dette manuskript fordelene, vigtige overvejelser, almindelige faldgruber og begrænsninger ved disse metoder. Denne protokol kræver hjernevæv med sparsom eller mosaik fluorescerende mærkning af astrocytter og er designet til at blive brugt med fælles laboratorieudstyr, konfokal mikroskopi og kommercielt tilgængelig billedanalysesoftware.

Astrocytter er udførligt forgrenede celler, der udfører mange vigtige funktioner i hjernen1. I musebarken giver radiale glialstamceller anledning til astrocytter i de sene embryonale og tidlige postnatale stadier2. I løbet af de første tre postnatale uger vokser astrocytter i størrelse og kompleksitet og udvikler tusindvis af fine grene, der direkte interagerer med synapser1. Samtidig interagerer astrocytter med tilstødende astrocytter for at etablere diskrete, ikke-overlappende territorier for at flise hjernen3, samtidig med at kommunikationen opretholdes via gap ....

Log in or to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Alle mus blev brugt i overensstemmelse med Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC) ved University of North Carolina i Chapel Hill og Division of Comparative Medicine (IACUC protokolnummer 21-116.0). Mus af begge køn på postnatal dag 21 (P21) blev brugt til disse forsøg. CD1-mus blev opnået kommercielt (Materialetabel), og MADM9 WT:WT- og MADM9 WT:KO-mus blev beskrevet tidligere9.

BEMÆRK: Denne protokol kræver hjerner med fluorescerende.......

Log in or to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Figur 1 viser en skematisk oversigt over de vigtigste trin og arbejdsgange for denne protokol. Figur 2 viser skærmbilleder af nøgletrin ved hjælp af billedanalysesoftwaren til at generere en overflade, generere pletter tæt på overfladen og generere et konvekst skrog. Figur 3 viser anvendelsen af denne teknik til at bestemme astrocytområdeoverlapning / flisebelægning. I figur 4 viser repræsentati.......

Log in or to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Denne protokol beskriver en etableret metode til analyse af astrocytområdevolumen og astrocytfliser i musebarken, der beskriver alle de vigtigste trin, der begynder med perfusion og slutter med billedanalyse. Denne protokol kræver hjerner fra mus, der udtrykker fluorescerende proteiner i en sparsom eller mosaikpopulation af astrocytter. Uden for dette krav kan mus i alle aldre anvendes til denne protokol med kun mindre justeringer af perfusionsindstillinger og mængden af frysemedier tilføjet til indlejringsformen. Me.......

Log in or to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Mikroskopi blev udført på UNC Neuroscience Microscopy Core (RRID: SCR_019060), delvist støttet af finansiering fra NIH-NINDS Neuroscience Center Support Grant P30 NS045892 og NIH-NICHD Intellectual and Developmental Disabilities Research Center Support Grant U54 HD079124. Figur 1 blev oprettet med BioRender.com. Billederne og dataene i figur 4 er genoptrykt fra en tidligere publikation9 med tilladelse fra udgiveren.

....

Log in or to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

NameCompanyCatalog NumberComments
#5 forcepsRobozRS-5045
1 mL TB SyringeBecton Dickinson (BD)309623
10x TBS (tris-buffered saline)30 g Tris, 80 g NaCl, 2 g KCl, HCl to pH 7.4, dH2O to 1 L; store at room temperature (RT)
12-well plateGenesee Scientific25-106MP
1x TBS100 mL 10x TBS + 900 mL dH2O; store at RT
1x TBS + Heparin28.2 mg Heparin + 250 mL 1x TBS; store at 4 °C
24-well plateGenesee Scientific25-107MP
30% Sucrose in TBS15 g sucrose, 1x TBS to 50 mL; store at 4 °C
4% PFA (paraformaldehyde) in TBS40 g PFA, 4-6 NaOH pellets, 100 mL 10x TBS, dH2O to 1 L; store at 4 °C
Avertin0.3125 g tri-bromoethanol, 0.625 mL methylbutanol, dH2O to 25 mL; store at 4 °C; discard 2 weeks after making
Blocking and antibody buffer10% goat serum in TBST; store at 4 °C
CD1 miceCharles River022
Collection vial for brainsFisher Scientific03-337-20
Confocal acquisition softwareOlympousFV31S-SW
Confocal microscopeOlympusFV3000RS
CoverslipsFisher Scientific12544E
CryostatThermo ScientificCryoStar NX50
Cryostat bladeThermo Scientific3052835
DAPIInvitrogenD1306
Embedding moldPolysciences18646A-1
Freezing Medium2:1 30% sucrose:OCT; store at RT
GFP antibodyAves LabsGFP1010
GlycerolThermo Scientific158920010
Goat anti-chicken 488InvitrogenA-11039
Goat anti-rabbit 594InvitrogenA11037
Goat SerumGibco16210064
HeparinSigma-AldrichH3149
Hydrochloric acidSigma-Aldrich258148
ImarisBitplaneN/AVersion 9.8.0
MATLABMathWorksN/A
Metal lunch tinAQUARIUSN/AFrom Amazon, "DIY Large Fun Box"
MethylbutanolSigma-Aldrich152463
Micro Dissecting ScissorsRobozRS-5921
Mouting medium20mM Tris pH8.0, 90% Glycerol, 0.5% N-propyl gallate ; store at 4 °C; good for up to 2 months
NailpolishVWR100491-940
N-propyl gallateSigma-Aldrich02370-100G
O.C.T.Fisher Scientific23-730-571
OilOlympusIMMOIL-F30CCSpecific to microscope/objective
Operating Scissors 6"RobozRS-6820
Orbital platform shakerFisher Scientific88861043Minimum speed needed: 25 rpm
PaintbrushBogrinuoN/AFrom Amazon, "Detail Paint Brushes - Miniature Brushes"
ParaformaldehydeSigma-AldrichP6148
Pasteur pipet (5.75")VWR14672-608
Pasteur pipet (9")VWR14672-380
Potassium chlorideSigma-AldrichP9541-500G
Razor bladeFisher Scientific12-640
RFP antibodyRockland600-401-379
Sectioning medium1:1 glycerol:1x TBS; store at RT
SlidesVWR48311-703
Sodium chrloideFisher ScientificBP358-212
Sodium hydroxideSigma-AldrichS5881
SucroseSigma-AldrichS0389
TBST (TBS + Triton X-100)0.2% Triton in 1x TBS; store at RT
Transfer PipetVWR414004-002
Tri-bromoethanolSigma-AldrichT48402
Tris(hydroxymethyl)aminomethaneThermo Scientific424570025
Triton X-100Sigma-Aldrich93443
Triton X-100 (high-quality)Fisher Scientific50-489-120
XTSpotsConvexHullN/AN/Acustom XTension provide as supplementary material
Buffers and Solutions
10x TBSxx mM Tris, xx mM NaCl, xx mM KCl, pH 7.4
1x TBS
1x TBS + Heparinadd xx mg Heparin to xx mL of 1x TBS
4% PFA
30% Sucrose in TBS
Freezing Medium
Sectioning medium
TBST0.2% Triton in 1x TBS
Blocking and antibody buffer10% goat serum in 1x TBST
Mouting medium

  1. Stogsdill, J. A., et al. Astrocytic neuroligins control astrocyte morphogenesis and synaptogenesis. Nature. 551 (7679), 192-197 (2017).
  2. Akdemir, E. S., Huang, A. Y., Deneen, B. Astrocytogenesis: where, when, and how. F1000Research. 9, (2020).
  3. Bushong, E. A., Martone, M. E., Jones, Y. Z., Ellisman, M. H. Protoplasmic astrocytes in CA1 stratum radiatum occupy separate anatomical domains. The Journal of Neuroscience: The Official Journal of the Society for Neuroscience. 22 (1), 183-192 (2002).
  4. Houades, V., et al. Shapes of astrocyte networks in the juvenile brain. Neuron Glia Biology. 2 (1), 3-14 (2006).
  5. Zuchero, J. B., Barres, B. A. Glia in mammalian development and disease. Development. 142 (22), 3805-3809 (2015).
  6. Srinivasan, R., et al. New transgenic mouse lines for selectively targeting astrocytes and studying calcium signals in astrocyte processes in situ and in vivo. Neuron. 92 (6), 1181-1195 (2016).
  7. Testen, A., Kim, R., Reissner, K. J. High-resolution three-dimensional imaging of individual astrocytes using confocal microscopy. Current Protocols in Neuroscience. 91 (1), 92 (2020).
  8. Takano, T., et al. Chemico-genetic discovery of astrocytic control of inhibition in vivo. Nature. 588 (7837), 296-302 (2020).
  9. Baldwin, K. T., et al. HepaCAM controls astrocyte self-organization and coupling. Neuron. 109 (15), 2427-2442 (2021).
  10. Amberg, N., Hippenmeyer, S. Genetic mosaic dissection of candidate genes in mice using mosaic analysis with double markers. STAR Protocols. 2 (4), 100939 (2021).
  11. Dumas, L., et al. In utero electroporation of multiaddressable genome-integrating color (MAGIC) markers to individualize cortical mouse astrocytes. Journal of visualized experiments: JoVE. (159), e61110 (2020).
  12. Garcia-Marques, J., Nunez-Llaves, R., Lopez-Mascaraque, L. NG2-glia from pallial progenitors produce the largest clonal clusters of the brain: time frame of clonal generation in cortex and olfactory bulb. The Journal of Neuroscience: The Official Journal of the Society for Neuroscience. 34 (6), 2305-2313 (2014).
  13. Clavreul, S., et al. Cortical astrocytes develop in a plastic manner at both clonal and cellular levels. Nature Communication. 10 (1), 4884 (2019).
  14. O'Donnell, J., Ding, F., Nedergaard, M. Distinct functional states of astrocytes during sleep and wakefulness: Is norepinephrine the master regulator. Current Sleep Medicine Reports. 1 (1), 1-8 (2015).

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Research

Education

ABOUT JoVE

Copyright © 2024 MyJoVE Corporation. All rights reserved