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Neuroscience

Analisi del volume e della piastrellatura del territorio degli astrociti in sezioni di tessuto fluttuanti spesse

Published: April 20th, 2022

DOI:

10.3791/63804

1Neuroscience Center, University of North Carolina, Chapel Hill, 2Department of Cell Biology and Physiology, University of North Carolina, Chapel Hill

Questo protocollo descrive i metodi per il sezionamento, la colorazione e l'imaging di sezioni di tessuto fluttuanti del cervello del topo, seguito da una descrizione dettagliata dell'analisi del volume del territorio degli astrociti e della sovrapposizione o della piastrellatura del territorio degli astrociti.

Gli astrociti possiedono un sorprendente grado di complessità morfologica che consente loro di interagire con quasi ogni tipo di cellula e struttura all'interno del cervello. Attraverso queste interazioni, gli astrociti regolano attivamente molte funzioni cerebrali critiche, tra cui la formazione di sinapsi, la neurotrasmissione e l'omeostasi ionica. Nel cervello dei roditori, gli astrociti crescono in dimensioni e complessità durante le prime tre settimane postnatali e stabiliscono territori distinti e non sovrapposti per affiancare il cervello. Questo protocollo fornisce un metodo consolidato per analizzare il volume del territorio degli astrociti e la piastrellatura degli astrociti utilizzando sezioni di tessuto fluttuanti dal cervello del topo. In primo luogo, questo protocollo descrive i passaggi per la raccolta dei tessuti, la criosezione e l'immunocolorazione delle sezioni di tessuto fluttuanti. In secondo luogo, questo protocollo descrive l'acquisizione e l'analisi delle immagini del volume del territorio astrocitario e del volume di sovrapposizione del territorio, utilizzando il software di analisi delle immagini disponibile in commercio. Infine, questo manoscritto discute i vantaggi, le considerazioni importanti, le insidie comuni e i limiti di questi metodi. Questo protocollo richiede tessuto cerebrale con etichettatura fluorescente sparsa o a mosaico di astrociti ed è progettato per essere utilizzato con apparecchiature di laboratorio comuni, microscopia confocale e software di analisi delle immagini disponibile in commercio.

Gli astrociti sono cellule riccamente ramificate che svolgono molte funzioni importanti nel cervello1. Nella corteccia del topo, le cellule staminali gliali radiali danno origine ad astrociti durante gli stadi embrionale tardivo e postnatale precoce2. Durante le prime tre settimane postnatali, gli astrociti crescono in dimensioni e complessità, sviluppando migliaia di rami fini che interagiscono direttamente con le sinapsi1. Allo stesso tempo, gli astrociti interagiscono con gli astrociti vicini per stabilire territori discreti e non sovrapposti per affiancare il cervello3,....

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Tutti i topi sono stati utilizzati in conformità con l'Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC) presso l'Università della Carolina del Nord a Chapel Hill e la Divisione di Medicina Comparata (numero di protocollo IACUC 21-116.0). Topi di entrambi i sessi al giorno postnatale 21 (P21) sono stati utilizzati per questi esperimenti. I topi CD1 sono stati ottenuti commercialmente (Tabella dei materiali) e i topi MADM9 WT: WT e MADM9 WT: KO sono stati descritti in precedenza9

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Nella Figura 1 viene presentata una descrizione schematica dei passaggi principali e del flusso di lavoro per questo protocollo. La Figura 2 mostra schermate dei passaggi chiave che utilizzano il software di analisi delle immagini per generare una superficie, generare punti vicino alla superficie e generare uno scafo convesso. La Figura 3 mostra l'applicazione di questa tecnica per determinare la sovrapposizione/piastrellatura del t.......

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Questo protocollo descrive un metodo consolidato per analizzare il volume del territorio degli astrociti e la piastrellatura degli astrociti nella corteccia del topo, dettagliando tutti i passaggi principali che iniziano con la perfusione e terminano con l'analisi delle immagini. Questo protocollo richiede cervelli di topi che esprimono proteine fluorescenti in una popolazione sparsa o mosaica di astrociti. Al di fuori di questo requisito, i topi di qualsiasi età possono essere utilizzati per questo protocollo, con solo.......

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La microscopia è stata eseguita presso l'UNC Neuroscience Microscopy Core (RRID: SCR_019060), supportata in parte dai finanziamenti del NIH-NINDS Neuroscience Center Support Grant P30 NS045892 e del NIH-NICHD Intellectual and Developmental Disabilities Research Center Support Grant U54 HD079124. La Figura 1 è stata creata con BioRender.com. Le immagini e i dati nella Figura 4 sono ristampati da una precedente pubblicazione9 con il permesso dell'editore.

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NameCompanyCatalog NumberComments
#5 forcepsRobozRS-5045
1 mL TB SyringeBecton Dickinson (BD)309623
10x TBS (tris-buffered saline)30 g Tris, 80 g NaCl, 2 g KCl, HCl to pH 7.4, dH2O to 1 L; store at room temperature (RT)
12-well plateGenesee Scientific25-106MP
1x TBS100 mL 10x TBS + 900 mL dH2O; store at RT
1x TBS + Heparin28.2 mg Heparin + 250 mL 1x TBS; store at 4 °C
24-well plateGenesee Scientific25-107MP
30% Sucrose in TBS15 g sucrose, 1x TBS to 50 mL; store at 4 °C
4% PFA (paraformaldehyde) in TBS40 g PFA, 4-6 NaOH pellets, 100 mL 10x TBS, dH2O to 1 L; store at 4 °C
Avertin0.3125 g tri-bromoethanol, 0.625 mL methylbutanol, dH2O to 25 mL; store at 4 °C; discard 2 weeks after making
Blocking and antibody buffer10% goat serum in TBST; store at 4 °C
CD1 miceCharles River022
Collection vial for brainsFisher Scientific03-337-20
Confocal acquisition softwareOlympousFV31S-SW
Confocal microscopeOlympusFV3000RS
CoverslipsFisher Scientific12544E
CryostatThermo ScientificCryoStar NX50
Cryostat bladeThermo Scientific3052835
DAPIInvitrogenD1306
Embedding moldPolysciences18646A-1
Freezing Medium2:1 30% sucrose:OCT; store at RT
GFP antibodyAves LabsGFP1010
GlycerolThermo Scientific158920010
Goat anti-chicken 488InvitrogenA-11039
Goat anti-rabbit 594InvitrogenA11037
Goat SerumGibco16210064
HeparinSigma-AldrichH3149
Hydrochloric acidSigma-Aldrich258148
ImarisBitplaneN/AVersion 9.8.0
MATLABMathWorksN/A
Metal lunch tinAQUARIUSN/AFrom Amazon, "DIY Large Fun Box"
MethylbutanolSigma-Aldrich152463
Micro Dissecting ScissorsRobozRS-5921
Mouting medium20mM Tris pH8.0, 90% Glycerol, 0.5% N-propyl gallate ; store at 4 °C; good for up to 2 months
NailpolishVWR100491-940
N-propyl gallateSigma-Aldrich02370-100G
O.C.T.Fisher Scientific23-730-571
OilOlympusIMMOIL-F30CCSpecific to microscope/objective
Operating Scissors 6"RobozRS-6820
Orbital platform shakerFisher Scientific88861043Minimum speed needed: 25 rpm
PaintbrushBogrinuoN/AFrom Amazon, "Detail Paint Brushes - Miniature Brushes"
ParaformaldehydeSigma-AldrichP6148
Pasteur pipet (5.75")VWR14672-608
Pasteur pipet (9")VWR14672-380
Potassium chlorideSigma-AldrichP9541-500G
Razor bladeFisher Scientific12-640
RFP antibodyRockland600-401-379
Sectioning medium1:1 glycerol:1x TBS; store at RT
SlidesVWR48311-703
Sodium chrloideFisher ScientificBP358-212
Sodium hydroxideSigma-AldrichS5881
SucroseSigma-AldrichS0389
TBST (TBS + Triton X-100)0.2% Triton in 1x TBS; store at RT
Transfer PipetVWR414004-002
Tri-bromoethanolSigma-AldrichT48402
Tris(hydroxymethyl)aminomethaneThermo Scientific424570025
Triton X-100Sigma-Aldrich93443
Triton X-100 (high-quality)Fisher Scientific50-489-120
XTSpotsConvexHullN/AN/Acustom XTension provide as supplementary material
Buffers and Solutions
10x TBSxx mM Tris, xx mM NaCl, xx mM KCl, pH 7.4
1x TBS
1x TBS + Heparinadd xx mg Heparin to xx mL of 1x TBS
4% PFA
30% Sucrose in TBS
Freezing Medium
Sectioning medium
TBST0.2% Triton in 1x TBS
Blocking and antibody buffer10% goat serum in 1x TBST
Mouting medium

  1. Stogsdill, J. A., et al. Astrocytic neuroligins control astrocyte morphogenesis and synaptogenesis. Nature. 551 (7679), 192-197 (2017).
  2. Akdemir, E. S., Huang, A. Y., Deneen, B. Astrocytogenesis: where, when, and how. F1000Research. 9, (2020).
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