Summary
Abstract
Introduction
Protocol
Representative Results
Discussion
Acknowledgements
Materials
References
Neuroscience
Denne protokollen beskriver metoder for seksjonering, farging og avbildning av frittflytende vevsseksjoner av musehjernen, etterfulgt av en detaljert beskrivelse av analysen av astrocyttområdevolum og astrocyttområdeoverlapping eller flislegging.
Astrocytter har en forbløffende grad av morfologisk kompleksitet som gjør dem i stand til å samhandle med nesten alle typer celler og strukturer i hjernen. Gjennom disse interaksjonene regulerer astrocytter aktivt mange kritiske hjernefunksjoner, inkludert synapsedannelse, nevrotransmisjon og ion homeostase. I gnagerhjernen vokser astrocytter i størrelse og kompleksitet i løpet av de tre første postnatale ukene og etablerer distinkte, ikke-overlappende territorier for å flislegge hjernen. Denne protokollen gir en etablert metode for å analysere astrocyttområdevolum og astrocyttfliser ved hjelp av frittflytende vevsseksjoner fra musehjernen. For det første beskriver denne protokollen trinnene for vevsinnsamling, kryooseksjon og immunstaining av frittflytende vevsseksjoner. For det andre beskriver denne protokollen bildeanskaffelse og analyse av astrocyttområdevolum og territoriumoverlappingsvolum, ved hjelp av kommersielt tilgjengelig programvare for bildeanalyse. Til slutt diskuterer dette manuskriptet fordelene, viktige hensyn, vanlige fallgruver og begrensninger ved disse metodene. Denne protokollen krever hjernevev med sparsom eller mosaikk fluorescerende merking av astrocytter, og er designet for å brukes med vanlig laboratorieutstyr, konfiskert mikroskopi og kommersielt tilgjengelig bildeanalyseprogramvare.
Astrocytter er forseggjort forgrenede celler som utfører mange viktige funksjoner i hjernen1. I musebarken gir radiale glial stamceller opphav til astrocytter i de sene embryonale og tidlige postnatale stadiene2. I løpet av de tre første postnatale ukene vokser astrocytter i størrelse og kompleksitet, og utvikler tusenvis av fine grener som direkte samhandler med synapser1. Samtidig samhandler astrocytter med nærliggende astrocytter for å etablere diskrete, ikke-overlappende territorier for å flislegge hjernen3, samtidig som kommunikasjonen opprettholdes via gapkry....
Alle mus ble brukt i samsvar med Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC) ved University of North Carolina ved Chapel Hill og Division of Comparative Medicine (IACUC-protokollnummer 21-116.0). Mus av begge kjønn på barseldag 21 (P21) ble brukt til disse eksperimentene. CD1-mus ble oppnådd kommersielt (Materialliste), og MADM9 WT:WT- og MADM9 WT:KO-mus ble beskrevet tidligere9.
MERK: Denne protokollen krever hjerner med fluorescerende prote.......
Figur 1 viser en skjematisk oversikt over hovedtrinnene og arbeidsflyten for denne protokollen. Figur 2 viser skjermbilder av viktige trinn ved hjelp av bildeanalyseprogramvaren for å generere en overflate, generere flekker nær overflaten og generere et konveks skrog. Figur 3 viser anvendelsen av denne teknikken for å bestemme astrocyttområdeoverlapping/-flislegging. I figur 4 viser representative r.......
Denne protokollen beskriver en etablert metode for å analysere astrocyttområdevolum og astrocyttfliser i musebarken, som beskriver alle de viktigste trinnene som begynner med perfusjon og slutter med bildeanalyse. Denne protokollen krever hjerner fra mus som uttrykker fluorescerende proteiner i en sparsom eller mosaikkpopulasjon av astrocytter. Utenfor dette kravet kan mus i alle aldre brukes til denne protokollen, med bare mindre justeringer av perfusjonsinnstillinger og volumet av frysemedier lagt til innebyggingsfor.......
Mikroskopi ble utført ved UNC Neuroscience Microscopy Core (RRID:SCR_019060), delvis støttet av finansiering fra NIH-NINDS Neuroscience Center Support Grant P30 NS045892 og NIH-NICHD Intellectual and Developmental Disabilities Research Center Support Grant U54 HD079124. Figur 1 ble opprettet med BioRender.com. Bildene og dataene i figur 4 skrives ut på nytt fra en tidligere publikasjon9 med tillatelse fra utgiveren.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
#5 forceps | Roboz | RS-5045 | |
1 mL TB Syringe | Becton Dickinson (BD) | 309623 | |
10x TBS (tris-buffered saline) | 30 g Tris, 80 g NaCl, 2 g KCl, HCl to pH 7.4, dH2O to 1 L; store at room temperature (RT) | ||
12-well plate | Genesee Scientific | 25-106MP | |
1x TBS | 100 mL 10x TBS + 900 mL dH2O; store at RT | ||
1x TBS + Heparin | 28.2 mg Heparin + 250 mL 1x TBS; store at 4 °C | ||
24-well plate | Genesee Scientific | 25-107MP | |
30% Sucrose in TBS | 15 g sucrose, 1x TBS to 50 mL; store at 4 °C | ||
4% PFA (paraformaldehyde) in TBS | 40 g PFA, 4-6 NaOH pellets, 100 mL 10x TBS, dH2O to 1 L; store at 4 °C | ||
Avertin | 0.3125 g tri-bromoethanol, 0.625 mL methylbutanol, dH2O to 25 mL; store at 4 °C; discard 2 weeks after making | ||
Blocking and antibody buffer | 10% goat serum in TBST; store at 4 °C | ||
CD1 mice | Charles River | 022 | |
Collection vial for brains | Fisher Scientific | 03-337-20 | |
Confocal acquisition software | Olympous | FV31S-SW | |
Confocal microscope | Olympus | FV3000RS | |
Coverslips | Fisher Scientific | 12544E | |
Cryostat | Thermo Scientific | CryoStar NX50 | |
Cryostat blade | Thermo Scientific | 3052835 | |
DAPI | Invitrogen | D1306 | |
Embedding mold | Polysciences | 18646A-1 | |
Freezing Medium | 2:1 30% sucrose:OCT; store at RT | ||
GFP antibody | Aves Labs | GFP1010 | |
Glycerol | Thermo Scientific | 158920010 | |
Goat anti-chicken 488 | Invitrogen | A-11039 | |
Goat anti-rabbit 594 | Invitrogen | A11037 | |
Goat Serum | Gibco | 16210064 | |
Heparin | Sigma-Aldrich | H3149 | |
Hydrochloric acid | Sigma-Aldrich | 258148 | |
Imaris | Bitplane | N/A | Version 9.8.0 |
MATLAB | MathWorks | N/A | |
Metal lunch tin | AQUARIUS | N/A | From Amazon, "DIY Large Fun Box" |
Methylbutanol | Sigma-Aldrich | 152463 | |
Micro Dissecting Scissors | Roboz | RS-5921 | |
Mouting medium | 20mM Tris pH8.0, 90% Glycerol, 0.5% N-propyl gallate ; store at 4 °C; good for up to 2 months | ||
Nailpolish | VWR | 100491-940 | |
N-propyl gallate | Sigma-Aldrich | 02370-100G | |
O.C.T. | Fisher Scientific | 23-730-571 | |
Oil | Olympus | IMMOIL-F30CC | Specific to microscope/objective |
Operating Scissors 6" | Roboz | RS-6820 | |
Orbital platform shaker | Fisher Scientific | 88861043 | Minimum speed needed: 25 rpm |
Paintbrush | Bogrinuo | N/A | From Amazon, "Detail Paint Brushes - Miniature Brushes" |
Paraformaldehyde | Sigma-Aldrich | P6148 | |
Pasteur pipet (5.75") | VWR | 14672-608 | |
Pasteur pipet (9") | VWR | 14672-380 | |
Potassium chloride | Sigma-Aldrich | P9541-500G | |
Razor blade | Fisher Scientific | 12-640 | |
RFP antibody | Rockland | 600-401-379 | |
Sectioning medium | 1:1 glycerol:1x TBS; store at RT | ||
Slides | VWR | 48311-703 | |
Sodium chrloide | Fisher Scientific | BP358-212 | |
Sodium hydroxide | Sigma-Aldrich | S5881 | |
Sucrose | Sigma-Aldrich | S0389 | |
TBST (TBS + Triton X-100) | 0.2% Triton in 1x TBS; store at RT | ||
Transfer Pipet | VWR | 414004-002 | |
Tri-bromoethanol | Sigma-Aldrich | T48402 | |
Tris(hydroxymethyl)aminomethane | Thermo Scientific | 424570025 | |
Triton X-100 | Sigma-Aldrich | 93443 | |
Triton X-100 (high-quality) | Fisher Scientific | 50-489-120 | |
XTSpotsConvexHull | N/A | N/A | custom XTension provide as supplementary material |
Buffers and Solutions | |||
10x TBS | xx mM Tris, xx mM NaCl, xx mM KCl, pH 7.4 | ||
1x TBS | |||
1x TBS + Heparin | add xx mg Heparin to xx mL of 1x TBS | ||
4% PFA | |||
30% Sucrose in TBS | |||
Freezing Medium | |||
Sectioning medium | |||
TBST | 0.2% Triton in 1x TBS | ||
Blocking and antibody buffer | 10% goat serum in 1x TBST | ||
Mouting medium |
ABOUT JoVE
Copyright © 2024 MyJoVE Corporation. All rights reserved