JoVE Logo
Faculty Resource Center

Sign In

Summary

Abstract

Introduction

Protocol

Representative Results

Discussion

Acknowledgements

Materials

References

Neuroscience

Analyse av astrocyttområdevolum og flislegging i tykke friflytende vevsseksjoner

Published: April 20th, 2022

DOI:

10.3791/63804

1Neuroscience Center, University of North Carolina, Chapel Hill, 2Department of Cell Biology and Physiology, University of North Carolina, Chapel Hill

Denne protokollen beskriver metoder for seksjonering, farging og avbildning av frittflytende vevsseksjoner av musehjernen, etterfulgt av en detaljert beskrivelse av analysen av astrocyttområdevolum og astrocyttområdeoverlapping eller flislegging.

Astrocytter har en forbløffende grad av morfologisk kompleksitet som gjør dem i stand til å samhandle med nesten alle typer celler og strukturer i hjernen. Gjennom disse interaksjonene regulerer astrocytter aktivt mange kritiske hjernefunksjoner, inkludert synapsedannelse, nevrotransmisjon og ion homeostase. I gnagerhjernen vokser astrocytter i størrelse og kompleksitet i løpet av de tre første postnatale ukene og etablerer distinkte, ikke-overlappende territorier for å flislegge hjernen. Denne protokollen gir en etablert metode for å analysere astrocyttområdevolum og astrocyttfliser ved hjelp av frittflytende vevsseksjoner fra musehjernen. For det første beskriver denne protokollen trinnene for vevsinnsamling, kryooseksjon og immunstaining av frittflytende vevsseksjoner. For det andre beskriver denne protokollen bildeanskaffelse og analyse av astrocyttområdevolum og territoriumoverlappingsvolum, ved hjelp av kommersielt tilgjengelig programvare for bildeanalyse. Til slutt diskuterer dette manuskriptet fordelene, viktige hensyn, vanlige fallgruver og begrensninger ved disse metodene. Denne protokollen krever hjernevev med sparsom eller mosaikk fluorescerende merking av astrocytter, og er designet for å brukes med vanlig laboratorieutstyr, konfiskert mikroskopi og kommersielt tilgjengelig bildeanalyseprogramvare.

Astrocytter er forseggjort forgrenede celler som utfører mange viktige funksjoner i hjernen1. I musebarken gir radiale glial stamceller opphav til astrocytter i de sene embryonale og tidlige postnatale stadiene2. I løpet av de tre første postnatale ukene vokser astrocytter i størrelse og kompleksitet, og utvikler tusenvis av fine grener som direkte samhandler med synapser1. Samtidig samhandler astrocytter med nærliggende astrocytter for å etablere diskrete, ikke-overlappende territorier for å flislegge hjernen3, samtidig som kommunikasjonen opprettholdes via gapkry....

Log in or to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Alle mus ble brukt i samsvar med Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC) ved University of North Carolina ved Chapel Hill og Division of Comparative Medicine (IACUC-protokollnummer 21-116.0). Mus av begge kjønn på barseldag 21 (P21) ble brukt til disse eksperimentene. CD1-mus ble oppnådd kommersielt (Materialliste), og MADM9 WT:WT- og MADM9 WT:KO-mus ble beskrevet tidligere9.

MERK: Denne protokollen krever hjerner med fluorescerende prote.......

Log in or to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Figur 1 viser en skjematisk oversikt over hovedtrinnene og arbeidsflyten for denne protokollen. Figur 2 viser skjermbilder av viktige trinn ved hjelp av bildeanalyseprogramvaren for å generere en overflate, generere flekker nær overflaten og generere et konveks skrog. Figur 3 viser anvendelsen av denne teknikken for å bestemme astrocyttområdeoverlapping/-flislegging. I figur 4 viser representative r.......

Log in or to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Denne protokollen beskriver en etablert metode for å analysere astrocyttområdevolum og astrocyttfliser i musebarken, som beskriver alle de viktigste trinnene som begynner med perfusjon og slutter med bildeanalyse. Denne protokollen krever hjerner fra mus som uttrykker fluorescerende proteiner i en sparsom eller mosaikkpopulasjon av astrocytter. Utenfor dette kravet kan mus i alle aldre brukes til denne protokollen, med bare mindre justeringer av perfusjonsinnstillinger og volumet av frysemedier lagt til innebyggingsfor.......

Log in or to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Mikroskopi ble utført ved UNC Neuroscience Microscopy Core (RRID:SCR_019060), delvis støttet av finansiering fra NIH-NINDS Neuroscience Center Support Grant P30 NS045892 og NIH-NICHD Intellectual and Developmental Disabilities Research Center Support Grant U54 HD079124. Figur 1 ble opprettet med BioRender.com. Bildene og dataene i figur 4 skrives ut på nytt fra en tidligere publikasjon9 med tillatelse fra utgiveren.

....

Log in or to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

NameCompanyCatalog NumberComments
#5 forcepsRobozRS-5045
1 mL TB SyringeBecton Dickinson (BD)309623
10x TBS (tris-buffered saline)30 g Tris, 80 g NaCl, 2 g KCl, HCl to pH 7.4, dH2O to 1 L; store at room temperature (RT)
12-well plateGenesee Scientific25-106MP
1x TBS100 mL 10x TBS + 900 mL dH2O; store at RT
1x TBS + Heparin28.2 mg Heparin + 250 mL 1x TBS; store at 4 °C
24-well plateGenesee Scientific25-107MP
30% Sucrose in TBS15 g sucrose, 1x TBS to 50 mL; store at 4 °C
4% PFA (paraformaldehyde) in TBS40 g PFA, 4-6 NaOH pellets, 100 mL 10x TBS, dH2O to 1 L; store at 4 °C
Avertin0.3125 g tri-bromoethanol, 0.625 mL methylbutanol, dH2O to 25 mL; store at 4 °C; discard 2 weeks after making
Blocking and antibody buffer10% goat serum in TBST; store at 4 °C
CD1 miceCharles River022
Collection vial for brainsFisher Scientific03-337-20
Confocal acquisition softwareOlympousFV31S-SW
Confocal microscopeOlympusFV3000RS
CoverslipsFisher Scientific12544E
CryostatThermo ScientificCryoStar NX50
Cryostat bladeThermo Scientific3052835
DAPIInvitrogenD1306
Embedding moldPolysciences18646A-1
Freezing Medium2:1 30% sucrose:OCT; store at RT
GFP antibodyAves LabsGFP1010
GlycerolThermo Scientific158920010
Goat anti-chicken 488InvitrogenA-11039
Goat anti-rabbit 594InvitrogenA11037
Goat SerumGibco16210064
HeparinSigma-AldrichH3149
Hydrochloric acidSigma-Aldrich258148
ImarisBitplaneN/AVersion 9.8.0
MATLABMathWorksN/A
Metal lunch tinAQUARIUSN/AFrom Amazon, "DIY Large Fun Box"
MethylbutanolSigma-Aldrich152463
Micro Dissecting ScissorsRobozRS-5921
Mouting medium20mM Tris pH8.0, 90% Glycerol, 0.5% N-propyl gallate ; store at 4 °C; good for up to 2 months
NailpolishVWR100491-940
N-propyl gallateSigma-Aldrich02370-100G
O.C.T.Fisher Scientific23-730-571
OilOlympusIMMOIL-F30CCSpecific to microscope/objective
Operating Scissors 6"RobozRS-6820
Orbital platform shakerFisher Scientific88861043Minimum speed needed: 25 rpm
PaintbrushBogrinuoN/AFrom Amazon, "Detail Paint Brushes - Miniature Brushes"
ParaformaldehydeSigma-AldrichP6148
Pasteur pipet (5.75")VWR14672-608
Pasteur pipet (9")VWR14672-380
Potassium chlorideSigma-AldrichP9541-500G
Razor bladeFisher Scientific12-640
RFP antibodyRockland600-401-379
Sectioning medium1:1 glycerol:1x TBS; store at RT
SlidesVWR48311-703
Sodium chrloideFisher ScientificBP358-212
Sodium hydroxideSigma-AldrichS5881
SucroseSigma-AldrichS0389
TBST (TBS + Triton X-100)0.2% Triton in 1x TBS; store at RT
Transfer PipetVWR414004-002
Tri-bromoethanolSigma-AldrichT48402
Tris(hydroxymethyl)aminomethaneThermo Scientific424570025
Triton X-100Sigma-Aldrich93443
Triton X-100 (high-quality)Fisher Scientific50-489-120
XTSpotsConvexHullN/AN/Acustom XTension provide as supplementary material
Buffers and Solutions
10x TBSxx mM Tris, xx mM NaCl, xx mM KCl, pH 7.4
1x TBS
1x TBS + Heparinadd xx mg Heparin to xx mL of 1x TBS
4% PFA
30% Sucrose in TBS
Freezing Medium
Sectioning medium
TBST0.2% Triton in 1x TBS
Blocking and antibody buffer10% goat serum in 1x TBST
Mouting medium

  1. Stogsdill, J. A., et al. Astrocytic neuroligins control astrocyte morphogenesis and synaptogenesis. Nature. 551 (7679), 192-197 (2017).
  2. Akdemir, E. S., Huang, A. Y., Deneen, B. Astrocytogenesis: where, when, and how. F1000Research. 9, (2020).
  3. Bushong, E. A., Martone, M. E., Jones, Y. Z., Ellisman, M. H. Protoplasmic astrocytes in CA1 stratum radiatum occupy separate anatomical domains. The Journal of Neuroscience: The Official Journal of the Society for Neuroscience. 22 (1), 183-192 (2002).
  4. Houades, V., et al. Shapes of astrocyte networks in the juvenile brain. Neuron Glia Biology. 2 (1), 3-14 (2006).
  5. Zuchero, J. B., Barres, B. A. Glia in mammalian development and disease. Development. 142 (22), 3805-3809 (2015).
  6. Srinivasan, R., et al. New transgenic mouse lines for selectively targeting astrocytes and studying calcium signals in astrocyte processes in situ and in vivo. Neuron. 92 (6), 1181-1195 (2016).
  7. Testen, A., Kim, R., Reissner, K. J. High-resolution three-dimensional imaging of individual astrocytes using confocal microscopy. Current Protocols in Neuroscience. 91 (1), 92 (2020).
  8. Takano, T., et al. Chemico-genetic discovery of astrocytic control of inhibition in vivo. Nature. 588 (7837), 296-302 (2020).
  9. Baldwin, K. T., et al. HepaCAM controls astrocyte self-organization and coupling. Neuron. 109 (15), 2427-2442 (2021).
  10. Amberg, N., Hippenmeyer, S. Genetic mosaic dissection of candidate genes in mice using mosaic analysis with double markers. STAR Protocols. 2 (4), 100939 (2021).
  11. Dumas, L., et al. In utero electroporation of multiaddressable genome-integrating color (MAGIC) markers to individualize cortical mouse astrocytes. Journal of visualized experiments: JoVE. (159), e61110 (2020).
  12. Garcia-Marques, J., Nunez-Llaves, R., Lopez-Mascaraque, L. NG2-glia from pallial progenitors produce the largest clonal clusters of the brain: time frame of clonal generation in cortex and olfactory bulb. The Journal of Neuroscience: The Official Journal of the Society for Neuroscience. 34 (6), 2305-2313 (2014).
  13. Clavreul, S., et al. Cortical astrocytes develop in a plastic manner at both clonal and cellular levels. Nature Communication. 10 (1), 4884 (2019).
  14. O'Donnell, J., Ding, F., Nedergaard, M. Distinct functional states of astrocytes during sleep and wakefulness: Is norepinephrine the master regulator. Current Sleep Medicine Reports. 1 (1), 1-8 (2015).

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Research

Education

ABOUT JoVE

Copyright © 2024 MyJoVE Corporation. All rights reserved