JoVE Logo
Faculty Resource Center

Sign In

Summary

Abstract

Introduction

Protocol

Representative Results

Discussion

Acknowledgements

Materials

References

Neuroscience

Análisis del volumen del territorio de astrocitos y mosaicos en secciones gruesas de tejido de flotación libre

Published: April 20th, 2022

DOI:

10.3791/63804

1Neuroscience Center, University of North Carolina, Chapel Hill, 2Department of Cell Biology and Physiology, University of North Carolina, Chapel Hill

Este protocolo describe métodos para seccionar, teñir e obtener imágenes de secciones de tejido flotantes del cerebro del ratón, seguidos de una descripción detallada del análisis del volumen del territorio de los astrocitos y la superposición o mosaico del territorio de los astrocitos.

Los astrocitos poseen un asombroso grado de complejidad morfológica que les permite interactuar con casi todos los tipos de células y estructuras dentro del cerebro. A través de estas interacciones, los astrocitos regulan activamente muchas funciones cerebrales críticas, incluida la formación de sinapsis, la neurotransmisión y la homeostasis iónica. En el cerebro de los roedores, los astrocitos crecen en tamaño y complejidad durante las primeras tres semanas postnatales y establecen territorios distintos y no superpuestos para alicatar el cerebro. Este protocolo proporciona un método establecido para analizar el volumen del territorio de los astrocitos y el mosaico de astrocitos utilizando secciones de tejido que flotan libremente del cerebro del ratón. En primer lugar, este protocolo describe los pasos para la recolección de tejidos, la criosecciona y la inmunotinción de secciones de tejido que flotan libremente. En segundo lugar, este protocolo describe la adquisición de imágenes y el análisis del volumen del territorio de los astrocitos y el volumen de superposición del territorio, utilizando el software de análisis de imágenes disponible comercialmente. Por último, este manuscrito discute las ventajas, consideraciones importantes, trampas comunes y limitaciones de estos métodos. Este protocolo requiere tejido cerebral con marcado fluorescente escaso o mosaico de astrocitos, y está diseñado para ser utilizado con equipos de laboratorio comunes, microscopía confocal y software de análisis de imágenes disponible comercialmente.

Los astrocitos son células elaboradamente ramificadas que realizan muchas funciones importantes en el cerebro1. En la corteza del ratón, las células madre gliales radiales dan lugar a astrocitos durante las etapas embrionaria tardía y postnatal temprana2. Durante las tres primeras semanas postnatales, los astrocitos crecen en tamaño y complejidad, desarrollando miles de ramas finas que interactúan directamente con las sinapsis1. Al mismo tiempo, los astrocitos interactúan con los astrocitos vecinos para establecer territorios discretos y no superpuestos para alicatar el cerebro3<....

Log in or to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Todos los ratones se utilizaron de acuerdo con el Comité Institucional de Cuidado y Uso de Animales (IACUC) de la Universidad de Carolina del Norte en Chapel Hill y la División de Medicina Comparada (número de protocolo IACUC 21-116.0). Se utilizaron ratones de ambos sexos en el día postnatal 21 (P21) para estos experimentos. Los ratones CD1 se obtuvieron comercialmente (Tabla de Materiales), y los ratones MADM9 WT:WT y MADM9 WT:KO fueron descritos previamente9.

Log in or to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

La Figura 1 presenta un esquema esquemático de los principales pasos y flujo de trabajo para este protocolo. La Figura 2 muestra capturas de pantalla de pasos clave utilizando el software de análisis de imágenes para generar una superficie, generar manchas cerca de la superficie y generar un casco convexo. La Figura 3 demuestra la aplicación de esta técnica para determinar la superposición/mosaico del territorio de los astroci.......

Log in or to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Este protocolo describe un método establecido para analizar el volumen del territorio de astrocitos y el mosaico de astrocitos en la corteza del ratón, detallando todos los pasos principales que comienzan con la perfusión y terminan con el análisis de imágenes. Este protocolo requiere cerebros de ratones que expresan proteínas fluorescentes en una población escasa o en mosaico de astrocitos. Fuera de este requisito, se pueden usar ratones de cualquier edad para este protocolo, con solo ajustes menores en la config.......

Log in or to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

La microscopía se realizó en el NÚCLEO de Microscopía de Neurociencia de la UNC (RRID: SCR_019060), apoyado en parte por la subvención de apoyo del Centro de Neurociencia NIH-NINDS P30 NS045892 y la subvención de apoyo del Centro de Investigación de Discapacidades Intelectuales y del Desarrollo NIH-NICHD U54 HD079124. La Figura 1 se creó con BioRender.com. Las imágenes y los datos de la Figura 4 se reimprimen de una publicación anterior9 con permiso del editor.

....

Log in or to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

NameCompanyCatalog NumberComments
#5 forcepsRobozRS-5045
1 mL TB SyringeBecton Dickinson (BD)309623
10x TBS (tris-buffered saline)30 g Tris, 80 g NaCl, 2 g KCl, HCl to pH 7.4, dH2O to 1 L; store at room temperature (RT)
12-well plateGenesee Scientific25-106MP
1x TBS100 mL 10x TBS + 900 mL dH2O; store at RT
1x TBS + Heparin28.2 mg Heparin + 250 mL 1x TBS; store at 4 °C
24-well plateGenesee Scientific25-107MP
30% Sucrose in TBS15 g sucrose, 1x TBS to 50 mL; store at 4 °C
4% PFA (paraformaldehyde) in TBS40 g PFA, 4-6 NaOH pellets, 100 mL 10x TBS, dH2O to 1 L; store at 4 °C
Avertin0.3125 g tri-bromoethanol, 0.625 mL methylbutanol, dH2O to 25 mL; store at 4 °C; discard 2 weeks after making
Blocking and antibody buffer10% goat serum in TBST; store at 4 °C
CD1 miceCharles River022
Collection vial for brainsFisher Scientific03-337-20
Confocal acquisition softwareOlympousFV31S-SW
Confocal microscopeOlympusFV3000RS
CoverslipsFisher Scientific12544E
CryostatThermo ScientificCryoStar NX50
Cryostat bladeThermo Scientific3052835
DAPIInvitrogenD1306
Embedding moldPolysciences18646A-1
Freezing Medium2:1 30% sucrose:OCT; store at RT
GFP antibodyAves LabsGFP1010
GlycerolThermo Scientific158920010
Goat anti-chicken 488InvitrogenA-11039
Goat anti-rabbit 594InvitrogenA11037
Goat SerumGibco16210064
HeparinSigma-AldrichH3149
Hydrochloric acidSigma-Aldrich258148
ImarisBitplaneN/AVersion 9.8.0
MATLABMathWorksN/A
Metal lunch tinAQUARIUSN/AFrom Amazon, "DIY Large Fun Box"
MethylbutanolSigma-Aldrich152463
Micro Dissecting ScissorsRobozRS-5921
Mouting medium20mM Tris pH8.0, 90% Glycerol, 0.5% N-propyl gallate ; store at 4 °C; good for up to 2 months
NailpolishVWR100491-940
N-propyl gallateSigma-Aldrich02370-100G
O.C.T.Fisher Scientific23-730-571
OilOlympusIMMOIL-F30CCSpecific to microscope/objective
Operating Scissors 6"RobozRS-6820
Orbital platform shakerFisher Scientific88861043Minimum speed needed: 25 rpm
PaintbrushBogrinuoN/AFrom Amazon, "Detail Paint Brushes - Miniature Brushes"
ParaformaldehydeSigma-AldrichP6148
Pasteur pipet (5.75")VWR14672-608
Pasteur pipet (9")VWR14672-380
Potassium chlorideSigma-AldrichP9541-500G
Razor bladeFisher Scientific12-640
RFP antibodyRockland600-401-379
Sectioning medium1:1 glycerol:1x TBS; store at RT
SlidesVWR48311-703
Sodium chrloideFisher ScientificBP358-212
Sodium hydroxideSigma-AldrichS5881
SucroseSigma-AldrichS0389
TBST (TBS + Triton X-100)0.2% Triton in 1x TBS; store at RT
Transfer PipetVWR414004-002
Tri-bromoethanolSigma-AldrichT48402
Tris(hydroxymethyl)aminomethaneThermo Scientific424570025
Triton X-100Sigma-Aldrich93443
Triton X-100 (high-quality)Fisher Scientific50-489-120
XTSpotsConvexHullN/AN/Acustom XTension provide as supplementary material
Buffers and Solutions
10x TBSxx mM Tris, xx mM NaCl, xx mM KCl, pH 7.4
1x TBS
1x TBS + Heparinadd xx mg Heparin to xx mL of 1x TBS
4% PFA
30% Sucrose in TBS
Freezing Medium
Sectioning medium
TBST0.2% Triton in 1x TBS
Blocking and antibody buffer10% goat serum in 1x TBST
Mouting medium

  1. Stogsdill, J. A., et al. Astrocytic neuroligins control astrocyte morphogenesis and synaptogenesis. Nature. 551 (7679), 192-197 (2017).
  2. Akdemir, E. S., Huang, A. Y., Deneen, B. Astrocytogenesis: where, when, and how. F1000Research. 9, (2020).
  3. Bushong, E. A., Martone, M. E., Jones, Y. Z., Ellisman, M. H. Protoplasmic astrocytes in CA1 stratum radiatum occupy separate anatomical domains. The Journal of Neuroscience: The Official Journal of the Society for Neuroscience. 22 (1), 183-192 (2002).
  4. Houades, V., et al. Shapes of astrocyte networks in the juvenile brain. Neuron Glia Biology. 2 (1), 3-14 (2006).
  5. Zuchero, J. B., Barres, B. A. Glia in mammalian development and disease. Development. 142 (22), 3805-3809 (2015).
  6. Srinivasan, R., et al. New transgenic mouse lines for selectively targeting astrocytes and studying calcium signals in astrocyte processes in situ and in vivo. Neuron. 92 (6), 1181-1195 (2016).
  7. Testen, A., Kim, R., Reissner, K. J. High-resolution three-dimensional imaging of individual astrocytes using confocal microscopy. Current Protocols in Neuroscience. 91 (1), 92 (2020).
  8. Takano, T., et al. Chemico-genetic discovery of astrocytic control of inhibition in vivo. Nature. 588 (7837), 296-302 (2020).
  9. Baldwin, K. T., et al. HepaCAM controls astrocyte self-organization and coupling. Neuron. 109 (15), 2427-2442 (2021).
  10. Amberg, N., Hippenmeyer, S. Genetic mosaic dissection of candidate genes in mice using mosaic analysis with double markers. STAR Protocols. 2 (4), 100939 (2021).
  11. Dumas, L., et al. In utero electroporation of multiaddressable genome-integrating color (MAGIC) markers to individualize cortical mouse astrocytes. Journal of visualized experiments: JoVE. (159), e61110 (2020).
  12. Garcia-Marques, J., Nunez-Llaves, R., Lopez-Mascaraque, L. NG2-glia from pallial progenitors produce the largest clonal clusters of the brain: time frame of clonal generation in cortex and olfactory bulb. The Journal of Neuroscience: The Official Journal of the Society for Neuroscience. 34 (6), 2305-2313 (2014).
  13. Clavreul, S., et al. Cortical astrocytes develop in a plastic manner at both clonal and cellular levels. Nature Communication. 10 (1), 4884 (2019).
  14. O'Donnell, J., Ding, F., Nedergaard, M. Distinct functional states of astrocytes during sleep and wakefulness: Is norepinephrine the master regulator. Current Sleep Medicine Reports. 1 (1), 1-8 (2015).

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Research

Education

ABOUT JoVE

Copyright © 2024 MyJoVE Corporation. All rights reserved