JoVE Logo
Faculty Resource Center

Sign In

Summary

Abstract

Introduction

Protocol

Representative Results

Discussion

Acknowledgements

Materials

References

Medicine

Het meten van eencellig mitochondriaal DNA-kopienummer en heteroplasmie met behulp van digitale druppelpolymerasekettingreactie

Published: July 12th, 2022

DOI:

10.3791/63870

1Department of Clinical Neurosciences, School of Clinical Medicine, University of Cambridge, Cambridge Biomedical Campus, 2Medical Research Council Mitochondrial Biology Unit, University of Cambridge, Cambridge Biomedical Campus

Hier presenteren we een protocol voor het meten van absolute mitochondriale (mt) DNA-kopienummer en mtDNA-deletie heteroplasmieniveaus in enkele cellen.

Het mitochondriaal (mt)DNA van zoogdieren is een klein, circulair, dubbelstrengs, intra-mitochondriaal DNA-molecuul, dat codeert voor 13 subeenheden van de elektronentransportketen. In tegenstelling tot het diploïde nucleaire genoom, bevatten de meeste cellen veel meer kopieën van mtDNA, variërend van minder dan 100 tot meer dan 200.000 kopieën, afhankelijk van het celtype. MtDNA-kopienummer wordt steeds vaker gebruikt als biomarker voor een aantal leeftijdsgebonden degeneratieve aandoeningen en ziekten, en dus wordt nauwkeurige meting van het mtDNA-kopienummer een belangrijk hulpmiddel in zowel onderzoeks- als diagnostische instellingen. Mutaties in het mtDNA, vaak optredend als single nucleotide polymorfismen (SNP's) of deleties, kunnen ofwel voorkomen in alle kopieën van het mtDNA in de cel (homoplasmie genoemd) of als een mengsel van gemuteerde en WT mtDNA-kopieën (heteroplasmie genoemd). Heteroplasmatische mtDNA-mutaties zijn een belangrijke oorzaak van klinische mitochondriale pathologie, hetzij bij zeldzame ziekten of bij een groeiend aantal veel voorkomende ziekten met late aanvang, zoals de ziekte van Parkinson. Het bepalen van het niveau van heteroplasmie in cellen is een cruciale stap in de diagnose van zeldzame mitochondriale ziekten en in onderzoek gericht op het begrijpen van veel voorkomende late-onset aandoeningen waarbij mitochondriën een rol kunnen spelen. MtDNA-kopienummer en heteroplasmie worden traditioneel gemeten door kwantitatieve (q)PCR-gebaseerde assays of deep sequencing. De recente introductie van ddPCR-technologie heeft echter een alternatieve methode opgeleverd voor het meten van beide parameters. Het biedt verschillende voordelen ten opzichte van bestaande methoden, waaronder de mogelijkheid om het absolute mtDNA-kopieernummer te meten en voldoende gevoeligheid om nauwkeurige metingen uit afzonderlijke cellen uit te voeren, zelfs bij lage kopieeraantallen. Hier wordt een gedetailleerd protocol gepresenteerd dat de meting van het mtDNA-kopienummer in afzonderlijke cellen beschrijft met behulp van ddPCR, voortaan aangeduid als druppelgeneratie PCR, met de optie voor gelijktijdige meting van heteroplasmie in cellen met mtDNA-deleties. De mogelijkheid om deze methode uit te breiden om heteroplasmie te meten in cellen met mtDNA SNP's wordt ook besproken.

Zoogdier mitochondriaal (mt)DNA is een klein (ca. 16,5 Kb), circulair DNA-genoom dat zich bevindt in de mitochondriale matrix die codeert voor 37 genen, bestaande uit twee rRNA's, 22 tRNA's en 13 eiwitcoderende genen1. In tegenstelling tot het nucleaire genoom, dat één (haploïde) of twee (diploïde) kopieën van elk gen per cel bevat, is mtDNA aanwezig in meerdere kopieën in de mitochondriën van elke cel, variërend van tientallen kopieën (bijv. Volwassen spermatocyten) tot honderdduizenden kopieën (bijv. Eicellen)2,3. Een gevolg van deze multi-copy aard is dat mutaties in het mtDNA-genoom....

Log in or to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Alle experimenten volgden de ARRIVE-richtlijnen en werden goedgekeurd door de University of Cambridge Animal Welfare Ethical Review Body (AWERB).

OPMERKING: Alle monstervoorbereidingsstappen voorafgaand aan het genereren van druppels moeten worden uitgevoerd in een schoon pre-PCR-werkgebied, idealiter waar mogelijk in een UV-gesteriliseerde kast. Het hier beschreven protocol maakt gebruik van specifieke PCR-apparatuur voor druppelgeneratie (zie materiaaltabel), en hoewel de al.......

Log in or to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Na het genereren van druppels is een duidelijke laag ondoorzichtige druppels zichtbaar die bovenop de oliefase in elke put drijven (figuur 1B). Druppelvorming kan nadelig worden beïnvloed door de aanwezigheid van detergentia in het inputlysaat bij het uitvoeren van experimenten op afzonderlijke cellen. Met behulp van het in 2.1.2 beschreven lysisprotocol worden routinematig druppelopbrengsten boven het aanbevolen niveau van 10.000 bereikt, ondanks de aanwezigheid van een kleine resterende h.......

Log in or to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Het hier beschreven protocol is van toepassing op een breed scala aan celtypen en soorten naast de hierboven besproken, hoewel zorgvuldige optimalisatie van nieuwe testontwerpen de sleutel zal zijn om ervoor te zorgen dat de nauwkeurigheid en herhaalbaarheid van de methode behouden blijven wanneer u weggaat van eerder gevalideerde primer / probe-combinaties. Bij het werken met afzonderlijke cellen is het van vitaal belang om ervoor te zorgen dat de monsterverzameling zo nauwkeurig mogelijk wordt uitgevoerd (bijvoorbeeld .......

Log in or to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Dank aan Dr. L Bozhilova voor advies over de statistische analyse van PCR-gegevens voor druppelgeneratie. Dank aan Dr. H Zhang voor het verstrekken van de eicellen die worden gebruikt om gegevens te genereren in figuur 3C en figuur 4B. Dit werk werd uitgevoerd door SPB van de Medical Research Council Mitochondrial Biology Unit (MC_UU_00015/9), Universiteit van Cambridge, en gefinancierd door een Wellcome Trust Principal Research Fellowship gehouden door PFC (212219 / Z / 18 / Z).

....

Log in or to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

NameCompanyCatalog NumberComments
50% Tween-20 solutionNovex3005
Automated droplet-generating oil Bio Rad1864110Commercial oil formulation used to generate the oil/droplet emulsion (used in Protocol Step 4.1)
C1000 PCR machine with deep-well blockBio Rad1851197PCR thermocycler equipped with a deep-well heating block, used for cell lysis (Protocol Step 2.1.2.) and PCR cycling (Protocol Step 5)
Collection plate cooling blockBio Rad12002819Cooling block that keeps samples chilled during droplet generation (used in Protocol step 4.3)
ddPCR 96-well plates Bio Rad1200192596-well plates pipet tips designed for use in the QX200 AutoDG droplet generator, used for sample preparation (Protocol step 3.4) and droplet collection (Protocol step 4.3)
ddPCR droplet reader oil Bio Rad1863004Commercial oil formulation used by the droplet reader (used in Protocol step 6.1)
ddPCR Supermix for Probes (no dUTP)Bio Rad1863023Commercial supermix for use in ddPCR experiments utilising probes (used in Protocol Step 3.3)
DG32 automated droplet generator cartridges Bio Rad1864108Microfluidic cartridges used in the QX200 AutoDG droplet generator to generate the oil/droplet emulsion (used in Protocol Step 4.3)
Fetal bovine serumGibco10270-106Qualified fetal bovine serum
Foil plate covers Bio Rad1814040Foil plate covers used to seal droplet collection plates after droplet generation (used in Protocol step 4.6)
HEK 293T cellsTakara632180Commercial subclone of the transformed human embryonic kidney cell line, HEK 293, expressing the SV40 Large-T antigen
HeLa cellsECACC93021013Human cervix epitheloid carcinoma cells
High glucose DMEMGibco133453644.5g/L D-Glucose, with L-glutamine and sodium pyruvate
Human cybridsUniversity of Miami
Mouse embryonic fibroblasts Newcastle UniversityImmortalized from C57Bl/6 mice
Nuclease-free waterAmbionAM9937
PCR plate sealsPierceSP-0027Clear adhesive plate seals, only used pre-droplet generation (foil seal must be used in step 4.6)
Pipet Tip Waste BinsBio Rad1864125Disposable collection bin used to collect discarded tips in the QX200 AutoDG droplet generator (used in Protocol step 4.3)
Pipet tips for AutoDG system Bio Rad1864120Filtered pipet tips designed for use in the QX200 AutoDG droplet generator (used in Protocol step 4.3)
Primary human dermal fibroblast cellsNewcastle Biobank
Primers/ProbesIDTN/AExact primer/probe sequences will be assay dependent. Primers and probes used in this study are given in Table 1
Proteinase K 20 mg/mL solutionAmbionAM2546
PX1 PCR plate sealerBio Rad1814000Applies foil seals to ddPCR sample plates after droplet generation (used in Protocol Step 4.6)
QX Manager softwareBio Rad12012172Droplet reader set up & analysis software (used in Protocol Steps 6 & 7)
QX200 AutoDG droplet generatorBio Rad1864101Automated microfluidic droplet generator (used in Protocol Step 4)
QX200 droplet readerBio Rad1864003Droplet reader (used in Protocol Step 6)
Trizma pre-set crystals pH 8.3SigmaT8943-100G

  1. Taanman, J. W. The mitochondrial genome: structure, transcription, translation and replication. Biochimica Biophysica Acta. 1410 (2), 103-123 (1999).
  2. Wai, T., et al. The role of mitochondrial DNA copy number in mammalian fertility. Biology of Reproduction. 83 (1), 52-62 (2010).
  3. D'Erchia, A. M., et al. Tissue-specific mtDNA abundance from exome data and its correlation with mitochondrial transcription, mass and respiratory activity. Mitochondrion. 20, 13-21 (2015).
  4. Stewart, J. B., Chinnery, P. F. The dynamics of mitochondrial DNA heteroplasmy: implications for human health and disease. Nature Reviews: Genetics. 16 (9), 530-542 (2015).
  5. Durham, S. E., Samuels, D. C., Cree, L. M., Chinnery, P. F. Normal levels of wild-type mitochondrial DNA maintain cytochrome c oxidase activity for two pathogenic mitochondrial DNA mutations but not for m.3243A-->G. American Journal of Human Genetics. 81 (1), 189-195 (2007).
  6. Liu, H., et al. Wild-type mitochondrial DNA copy number in urinary cells as a useful marker for diagnosing severity of the mitochondrial diseases. PloS One. 8 (6), 67146 (2013).
  7. Filograna, R., et al. Modulation of mtDNA copy number ameliorates the pathological consequences of a heteroplasmic mtDNA mutation in the mouse. Science Advances. 5 (4), (2019).
  8. Wang, Y., et al. The increase of mitochondrial DNA content in endometrial adenocarcinoma cells: a quantitative study using laser-captured microdissected tissues. Gynecologic Oncology. 98 (1), 104-110 (2005).
  9. Boulet, L., Karpati, G., Shoubridge, E. A. Distribution and threshold expression of the tRNA(Lys) mutation in skeletal muscle of patients with myoclonic epilepsy and ragged-red fibers (MERRF). American Journal of Human Genetics. 51 (6), 1187-1200 (1992).
  10. Lee, J., Hyeon, D. Y., Hwang, D. Single-cell multiomics: technologies and data analysis methods. Experimental and Molecular Medicine. 52 (9), 1428-1442 (2020).
  11. Taylor, S. C., Laperriere, G., Germain, H. Droplet Digital PCR versus qPCR for gene expression analysis with low abundant targets: from variable nonsense to publication quality data. Scientific Reports. 7 (1), 2409 (2017).
  12. Hindson, C. M., et al. Absolute quantification by droplet digital PCR versus analog real-time PCR. Nature Methods. 10 (10), 1003-1005 (2013).
  13. Herbst, A., et al. Digital PCR quantitation of muscle mitochondrial DNA: age, fiber type, and mutation-induced changes. Journals of Gerontology. Series A: Biological Sciences and Medical Sciences. 72 (10), 1327-1333 (2017).
  14. O'Hara, R., et al. Quantitative mitochondrial DNA copy number determination using droplet digital PCR with single-cell resolution. Genome Research. 29 (11), 1878-1888 (2019).
  15. Diaz, F., et al. Human mitochondrial DNA with large deletions repopulates organelles faster than full-length genomes under relaxed copy number control. Nucleic Acids Research. 30 (21), 4626-4633 (2002).
  16. Krishnan, K. J., Bender, A., Taylor, R. W., Turnbull, D. M. A multiplex real-time PCR method to detect and quantify mitochondrial DNA deletions in individual cells. Analytical Biochemistry. 370 (1), 127-129 (2007).
  17. Lowes, H., Pyle, A., Duddy, M., Hudson, G. Cell-free mitochondrial DNA in progressive multiple sclerosis. Mitochondrion. 46, 307-312 (2019).
  18. Perier, C., et al. Accumulation of mitochondrial DNA deletions within dopaminergic neurons triggers neuroprotective mechanisms. Brain. 136, 2369-2378 (2013).
  19. Cossarizza, A., et al. Guidelines for the use of flow cytometry and cell sorting in immunological studies (second edition). European Journal of Immunology. 49 (10), 1457 (2019).
  20. Espina, V., et al. Laser-capture microdissection. Nature Protocols. 1 (2), 586-603 (2006).
  21. Cree, L. M., et al. A reduction of mitochondrial DNA molecules during embryogenesis explains the rapid segregation of genotypes. Nature Genetics. 40 (2), 249-254 (2008).
  22. Belmonte, F. R., et al. Digital PCR methods improve detection sensitivity and measurement precision of low abundance mtDNA deletions. Scientific Reports. 6, 25186 (2016).
  23. Samuels, D. C., Schon, E. A., Chinnery, P. F. Two direct repeats cause most human mtDNA deletions. Trends in Genetics. 20 (9), 393-398 (2004).
  24. Nissanka, N., Minczuk, M., Moraes, C. T. Mechanisms of mitochondrial DNA deletion formation. Trends in Genetics. 35 (3), 235-244 (2019).
  25. Macaulay, I. C., et al. Separation and parallel sequencing of the genomes and transcriptomes of single cells using G&T-seq. Nature Protocols. 11 (11), 2081-2103 (2016).
  26. Ludwig, L. S., et al. Lineage tracing in humans enabled by mitochondrial mutations and single-cell genomics. Cell. 176 (6), 1325-1339 (2019).
  27. Rooney, J. P., et al. PCR based determination of mitochondrial DNA copy number in multiple species. Methods in Molecular Biology. 1241, 23-38 (2015).
  28. Kamitaki, N., Usher, C. L., McCarroll, S. A. Using droplet digital PCR to analyze allele-specific RNA expression. Methods in Molecular Biology. 1768, 401-422 (2018).
  29. Maeda, R., Kami, D., Maeda, H., Shikuma, A., Gojo, S. High throughput single cell analysis of mitochondrial heteroplasmy in mitochondrial diseases. Scientific Reports. 10 (1), 10821 (2020).
  30. Quan, P. L., Sauzade, M., Brouzes, E. dPCR: A Technology Review. Sensors (Basel). 18 (4), (2018).
  31. Lin, X., Huang, X., Urmann, K., Xie, X., Hoffmann, M. R. Digital loop-mediated isothermal amplification on a commercial membrane. ACS Sensors. 4 (1), 242-249 (2019).
  32. Li, Z., et al. Fully integrated microfluidic devices for qualitative, quantitative and digital nucleic acids testing at point of care. Biosensors and Bioelectronics. 177, 112952 (2021).

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Research

Education

ABOUT JoVE

Copyright © 2024 MyJoVE Corporation. All rights reserved