JoVE Logo
Faculty Resource Center

Sign In

Summary

Abstract

Introduction

Protocol

Representative Results

Discussion

Acknowledgements

Materials

References

Medicine

Måling av enkeltcellet mitokondrielt DNA-kopinummer og heteroplasmi ved bruk av digital dråpepolymerasekjedereaksjon

Published: July 12th, 2022

DOI:

10.3791/63870

1Department of Clinical Neurosciences, School of Clinical Medicine, University of Cambridge, Cambridge Biomedical Campus, 2Medical Research Council Mitochondrial Biology Unit, University of Cambridge, Cambridge Biomedical Campus

Her presenterer vi en protokoll for måling av absolutt mitokondrielt (mt)DNA-kopinummer og mtDNA-sletting heteroplasminivå i enkeltceller.

Pattedyrets mitokondrielle (mt) DNA er et lite, sirkulært, dobbeltstrenget, intra-mitokondrielt DNA-molekyl, som koder for 13 underenheter av elektrontransportkjeden. I motsetning til det diploide nukleære genomet inneholder de fleste celler mange flere kopier av mtDNA, alt fra mindre enn 100 til over 200 000 kopier, avhengig av celletype. MtDNA-kopinummer brukes i økende grad som biomarkør for en rekke aldersrelaterte degenerative tilstander og sykdommer, og dermed blir nøyaktig måling av mtDNA-kopinummeret et sentralt verktøy i både forsknings- og diagnostiske innstillinger. Mutasjoner i mtDNA, som ofte forekommer som enkeltnukleotidpolymorfismer (SNPs) eller delesjoner, kan enten eksistere i alle kopier av mtDNA i cellen (betegnet homoplasmi) eller som en blanding av muterte og WT mtDNA-kopier (kalt heteroplasmi). Heteroplasmatiske mtDNA-mutasjoner er en viktig årsak til klinisk mitokondriell patologi, enten i sjeldne sykdommer eller i et økende antall vanlige sent debuterende sykdommer som Parkinsons sykdom. Å bestemme nivået av heteroplasmi tilstede i celler er et kritisk skritt i diagnosen sjeldne mitokondrielle sykdommer og i forskning som tar sikte på å forstå vanlige senstartsforstyrrelser der mitokondrier kan spille en rolle. MtDNA-kopinummer og heteroplasmi har tradisjonelt blitt målt ved kvantitative (q) PCR-baserte analyser eller dypsekvensering. Den nylige introduksjonen av ddPCR-teknologi har imidlertid gitt en alternativ metode for å måle begge parametrene. Det gir flere fordeler i forhold til eksisterende metoder, inkludert muligheten til å måle absolutt mtDNA-kopinummer og tilstrekkelig følsomhet for å gjøre nøyaktige målinger fra enkeltceller selv ved lave kopinumre. Her presenteres en detaljert protokoll som beskriver måling av mtDNA-kopinummer i enkeltceller ved bruk av ddPCR, referert til som dråpegenerering PCR fremover, med mulighet for samtidig måling av heteroplasmi i celler med mtDNA-delesjoner. Muligheten for å utvide denne metoden for å måle heteroplasmi i celler med mtDNA SNPs diskuteres også.

Pattedyrs mitokondrielle (mt) DNA er et lite (ca. 16,5 Kb), sirkulært DNA-genom som ligger i mitokondriell matrise som koder for 37 gener, bestående av to rRNA, 22 tRNA og 13 proteinkodende gener1. I motsetning til det nukleære genomet, som inneholder en (haploid) eller to (diploide) kopier av hvert gen per celle, er mtDNA tilstede i flere kopier i mitokondriene til hver celle, alt fra titalls kopier (f.eks. Modne spermatocytter) til hundretusener av kopier (f.eks. Oocytter)2,3. En konsekvens av denne multikopi-naturen er at mutasjoner i mtDNA-genomet, som kan eksistere som enkeltnukleo....

Log in or to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Alle forsøkene fulgte ARRIVE-retningslinjene og ble godkjent av University of Cambridge Animal Welfare Ethical Review Body (AWERB).

MERK: Alle prøveprepareringstrinn før dråpegenerering må utføres i et rent arbeidsområde før PCR, ideelt i et UV-sterilisert skap der det er mulig. Protokollen som er beskrevet her, bruker spesifikt PCR-utstyr for dråpegenerering (se materialfortegnelse), og selv om den generelle metoden skal gjelde for andre systemer, anbefales det å ko.......

Log in or to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Etter dråpegenerering er det synlig et klart lag med ugjennomsiktige dråper som flyter oppå oljefasen i hver brønn (figur 1B). Dråpedannelse kan påvirkes negativt av tilstedeværelsen av vaskemidler i inngangslysatet når man utfører eksperimenter på enkeltceller. Ved bruk av lysisprotokollen beskrevet i 2.1.2., oppnås rutinemessig dråpeutbytter over anbefalt nivå på 10 000, til tross for at det foreligger en liten restmengde TWEEN-20 i den endelige prøven (.......

Log in or to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Protokollen beskrevet her er anvendelig over et bredt spekter av celletyper og arter i tillegg til de som er diskutert ovenfor, selv om nøye optimalisering av nye analysedesign vil være nøkkelen for å sikre at nøyaktigheten og repeterbarheten av metoden opprettholdes når du beveger deg bort fra tidligere validerte primer / sondekombinasjoner. Når du arbeider med enkeltceller, er det viktig å sikre at prøveinnsamlingen utføres så nøyaktig som mulig (f.eks. Ved bruk av strenge enkeltcelleparametere ved sorterin.......

Log in or to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Takk til Dr. L Bozhilova for råd om statistisk analyse av dråpegenerering PCR-data. Takk til Dr. H Zhang for å gi oocytter som brukes til å generere data i figur 3C og figur 4B. Dette arbeidet ble utført av SPB ved Medical Research Council Mitochondrial Biology Unit (MC_UU_00015/9), University of Cambridge, og finansiert av et Wellcome Trust Principal Research Fellowship holdt av PFC (212219 / Z / 18 / Z).

....

Log in or to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

NameCompanyCatalog NumberComments
50% Tween-20 solutionNovex3005
Automated droplet-generating oil Bio Rad1864110Commercial oil formulation used to generate the oil/droplet emulsion (used in Protocol Step 4.1)
C1000 PCR machine with deep-well blockBio Rad1851197PCR thermocycler equipped with a deep-well heating block, used for cell lysis (Protocol Step 2.1.2.) and PCR cycling (Protocol Step 5)
Collection plate cooling blockBio Rad12002819Cooling block that keeps samples chilled during droplet generation (used in Protocol step 4.3)
ddPCR 96-well plates Bio Rad1200192596-well plates pipet tips designed for use in the QX200 AutoDG droplet generator, used for sample preparation (Protocol step 3.4) and droplet collection (Protocol step 4.3)
ddPCR droplet reader oil Bio Rad1863004Commercial oil formulation used by the droplet reader (used in Protocol step 6.1)
ddPCR Supermix for Probes (no dUTP)Bio Rad1863023Commercial supermix for use in ddPCR experiments utilising probes (used in Protocol Step 3.3)
DG32 automated droplet generator cartridges Bio Rad1864108Microfluidic cartridges used in the QX200 AutoDG droplet generator to generate the oil/droplet emulsion (used in Protocol Step 4.3)
Fetal bovine serumGibco10270-106Qualified fetal bovine serum
Foil plate covers Bio Rad1814040Foil plate covers used to seal droplet collection plates after droplet generation (used in Protocol step 4.6)
HEK 293T cellsTakara632180Commercial subclone of the transformed human embryonic kidney cell line, HEK 293, expressing the SV40 Large-T antigen
HeLa cellsECACC93021013Human cervix epitheloid carcinoma cells
High glucose DMEMGibco133453644.5g/L D-Glucose, with L-glutamine and sodium pyruvate
Human cybridsUniversity of Miami
Mouse embryonic fibroblasts Newcastle UniversityImmortalized from C57Bl/6 mice
Nuclease-free waterAmbionAM9937
PCR plate sealsPierceSP-0027Clear adhesive plate seals, only used pre-droplet generation (foil seal must be used in step 4.6)
Pipet Tip Waste BinsBio Rad1864125Disposable collection bin used to collect discarded tips in the QX200 AutoDG droplet generator (used in Protocol step 4.3)
Pipet tips for AutoDG system Bio Rad1864120Filtered pipet tips designed for use in the QX200 AutoDG droplet generator (used in Protocol step 4.3)
Primary human dermal fibroblast cellsNewcastle Biobank
Primers/ProbesIDTN/AExact primer/probe sequences will be assay dependent. Primers and probes used in this study are given in Table 1
Proteinase K 20 mg/mL solutionAmbionAM2546
PX1 PCR plate sealerBio Rad1814000Applies foil seals to ddPCR sample plates after droplet generation (used in Protocol Step 4.6)
QX Manager softwareBio Rad12012172Droplet reader set up & analysis software (used in Protocol Steps 6 & 7)
QX200 AutoDG droplet generatorBio Rad1864101Automated microfluidic droplet generator (used in Protocol Step 4)
QX200 droplet readerBio Rad1864003Droplet reader (used in Protocol Step 6)
Trizma pre-set crystals pH 8.3SigmaT8943-100G

  1. Taanman, J. W. The mitochondrial genome: structure, transcription, translation and replication. Biochimica Biophysica Acta. 1410 (2), 103-123 (1999).
  2. Wai, T., et al. The role of mitochondrial DNA copy number in mammalian fertility. Biology of Reproduction. 83 (1), 52-62 (2010).
  3. D'Erchia, A. M., et al. Tissue-specific mtDNA abundance from exome data and its correlation with mitochondrial transcription, mass and respiratory activity. Mitochondrion. 20, 13-21 (2015).
  4. Stewart, J. B., Chinnery, P. F. The dynamics of mitochondrial DNA heteroplasmy: implications for human health and disease. Nature Reviews: Genetics. 16 (9), 530-542 (2015).
  5. Durham, S. E., Samuels, D. C., Cree, L. M., Chinnery, P. F. Normal levels of wild-type mitochondrial DNA maintain cytochrome c oxidase activity for two pathogenic mitochondrial DNA mutations but not for m.3243A-->G. American Journal of Human Genetics. 81 (1), 189-195 (2007).
  6. Liu, H., et al. Wild-type mitochondrial DNA copy number in urinary cells as a useful marker for diagnosing severity of the mitochondrial diseases. PloS One. 8 (6), 67146 (2013).
  7. Filograna, R., et al. Modulation of mtDNA copy number ameliorates the pathological consequences of a heteroplasmic mtDNA mutation in the mouse. Science Advances. 5 (4), (2019).
  8. Wang, Y., et al. The increase of mitochondrial DNA content in endometrial adenocarcinoma cells: a quantitative study using laser-captured microdissected tissues. Gynecologic Oncology. 98 (1), 104-110 (2005).
  9. Boulet, L., Karpati, G., Shoubridge, E. A. Distribution and threshold expression of the tRNA(Lys) mutation in skeletal muscle of patients with myoclonic epilepsy and ragged-red fibers (MERRF). American Journal of Human Genetics. 51 (6), 1187-1200 (1992).
  10. Lee, J., Hyeon, D. Y., Hwang, D. Single-cell multiomics: technologies and data analysis methods. Experimental and Molecular Medicine. 52 (9), 1428-1442 (2020).
  11. Taylor, S. C., Laperriere, G., Germain, H. Droplet Digital PCR versus qPCR for gene expression analysis with low abundant targets: from variable nonsense to publication quality data. Scientific Reports. 7 (1), 2409 (2017).
  12. Hindson, C. M., et al. Absolute quantification by droplet digital PCR versus analog real-time PCR. Nature Methods. 10 (10), 1003-1005 (2013).
  13. Herbst, A., et al. Digital PCR quantitation of muscle mitochondrial DNA: age, fiber type, and mutation-induced changes. Journals of Gerontology. Series A: Biological Sciences and Medical Sciences. 72 (10), 1327-1333 (2017).
  14. O'Hara, R., et al. Quantitative mitochondrial DNA copy number determination using droplet digital PCR with single-cell resolution. Genome Research. 29 (11), 1878-1888 (2019).
  15. Diaz, F., et al. Human mitochondrial DNA with large deletions repopulates organelles faster than full-length genomes under relaxed copy number control. Nucleic Acids Research. 30 (21), 4626-4633 (2002).
  16. Krishnan, K. J., Bender, A., Taylor, R. W., Turnbull, D. M. A multiplex real-time PCR method to detect and quantify mitochondrial DNA deletions in individual cells. Analytical Biochemistry. 370 (1), 127-129 (2007).
  17. Lowes, H., Pyle, A., Duddy, M., Hudson, G. Cell-free mitochondrial DNA in progressive multiple sclerosis. Mitochondrion. 46, 307-312 (2019).
  18. Perier, C., et al. Accumulation of mitochondrial DNA deletions within dopaminergic neurons triggers neuroprotective mechanisms. Brain. 136, 2369-2378 (2013).
  19. Cossarizza, A., et al. Guidelines for the use of flow cytometry and cell sorting in immunological studies (second edition). European Journal of Immunology. 49 (10), 1457 (2019).
  20. Espina, V., et al. Laser-capture microdissection. Nature Protocols. 1 (2), 586-603 (2006).
  21. Cree, L. M., et al. A reduction of mitochondrial DNA molecules during embryogenesis explains the rapid segregation of genotypes. Nature Genetics. 40 (2), 249-254 (2008).
  22. Belmonte, F. R., et al. Digital PCR methods improve detection sensitivity and measurement precision of low abundance mtDNA deletions. Scientific Reports. 6, 25186 (2016).
  23. Samuels, D. C., Schon, E. A., Chinnery, P. F. Two direct repeats cause most human mtDNA deletions. Trends in Genetics. 20 (9), 393-398 (2004).
  24. Nissanka, N., Minczuk, M., Moraes, C. T. Mechanisms of mitochondrial DNA deletion formation. Trends in Genetics. 35 (3), 235-244 (2019).
  25. Macaulay, I. C., et al. Separation and parallel sequencing of the genomes and transcriptomes of single cells using G&T-seq. Nature Protocols. 11 (11), 2081-2103 (2016).
  26. Ludwig, L. S., et al. Lineage tracing in humans enabled by mitochondrial mutations and single-cell genomics. Cell. 176 (6), 1325-1339 (2019).
  27. Rooney, J. P., et al. PCR based determination of mitochondrial DNA copy number in multiple species. Methods in Molecular Biology. 1241, 23-38 (2015).
  28. Kamitaki, N., Usher, C. L., McCarroll, S. A. Using droplet digital PCR to analyze allele-specific RNA expression. Methods in Molecular Biology. 1768, 401-422 (2018).
  29. Maeda, R., Kami, D., Maeda, H., Shikuma, A., Gojo, S. High throughput single cell analysis of mitochondrial heteroplasmy in mitochondrial diseases. Scientific Reports. 10 (1), 10821 (2020).
  30. Quan, P. L., Sauzade, M., Brouzes, E. dPCR: A Technology Review. Sensors (Basel). 18 (4), (2018).
  31. Lin, X., Huang, X., Urmann, K., Xie, X., Hoffmann, M. R. Digital loop-mediated isothermal amplification on a commercial membrane. ACS Sensors. 4 (1), 242-249 (2019).
  32. Li, Z., et al. Fully integrated microfluidic devices for qualitative, quantitative and digital nucleic acids testing at point of care. Biosensors and Bioelectronics. 177, 112952 (2021).

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Research

Education

ABOUT JoVE

Copyright © 2024 MyJoVE Corporation. All rights reserved