JoVE Logo
Faculty Resource Center

Sign In

Summary

Abstract

Introduction

Protocol

Representative Results

Discussion

Acknowledgements

Materials

References

Immunology and Infection

Identifisere Caspases og deres motiver som spalter proteiner under influensa A-virusinfeksjon

Published: July 21st, 2022

DOI:

10.3791/64189

1Department of Microbiology and Immunology, University of Otago

Influensa A-virus (IAV) infeksjon aktiverer caspases som spalter vert og virale proteiner, som igjen har pro- og antivirale funksjoner. Ved å bruke inhibitorer, RNA-interferens, stedsrettet mutagenese og western blotting og RT-qPCR-teknikker, ble caspases i infiserte pattedyrceller som spalter vertskortaktin og histondeacetylaser identifisert.

Caspases, en familie av cysteinproteaser, orkestrerer programmert celledød som respons på ulike stimuli, inkludert mikrobielle infeksjoner. Opprinnelig beskrevet å forekomme ved apoptose, er programmert celledød nå kjent for å omfatte tre sammenhengende veier: pyroptose, apoptose og nekroptose, sammen laget som en prosess, PANoptosis. Påvirkning Et virus (IAV) infeksjon induserer PANoptosis i pattedyrceller ved å indusere aktivering av forskjellige caspases, som igjen spalter forskjellige vert så vel som virale proteiner, noe som fører til prosesser som aktivering av vertens medfødte antivirale respons eller nedbrytning av antagonistiske vertsproteiner. I denne forbindelse har caspase 3-mediert spaltning av vertskortaktin, histon deacetylase 4 (HDAC4) og histon deacetylase 6 (HDAC6) blitt oppdaget i både dyre- og humane epitelceller som respons på IAV-infeksjonen. For å demonstrere dette ble inhibitorer, RNA-interferens og stedsrettet mutagenese brukt, og deretter ble spaltning eller motstand mot spaltning og gjenvinning av kortaktin-, HDAC4- og HDAC6-polypeptider målt ved vestlig blotting. Disse metodene, sammen med RT-qPCR, danner en enkel, men effektiv strategi for å identifisere verten så vel som virale proteiner som gjennomgår caspase-mediert spaltning under en infeksjon av IAV eller andre humane og animalske virus. Denne protokollen utdyper de representative resultatene av denne strategien, og måtene å gjøre den mer effektiv diskuteres også.

Influensa A-virus (IAV) er det prototypiske medlemmet av Orthomyxoviridae-familien og er kjent for å forårsake globale epidemier og uforutsigbare pandemier. IAV forårsaker menneskelig luftveissykdom, influensa, kjent som "influensa". Influensa er en akutt sykdom som resulterer i induksjon av vertspro- og antiinflammatoriske medfødte immunresponser og død av epitelceller i menneskets luftveier. Begge prosessene styres av et fenomen som kalles programmert celledød1. Signaleringen for programmert celledød induseres så snart forskjellige patogengjenkjenningsreseptorer fornemmer de innkommende viruspartiklene i vertsceller. Dette fører til ....

Log in or to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Regulatoriske godkjenninger ble innhentet fra University of Otago Institutional Biological Safety Committee for å jobbe med IAV og pattedyrceller. Madin-Darby Canine Kidney (MDCK) eller humane lungealveolære epitel A549-celler og IAV H1N1-subtyper ble brukt til denne studien. IAV ble dyrket i kyllingegg, som beskrevet andre steder17. Sterile og aseptiske forhold ble brukt til å arbeide med pattedyrceller, og et biosikkerhetsnivå 2 (eller fysisk inneslutning 2) anlegg og klasse II biosikkerhets.......

Log in or to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Behandling med caspase 3-hemmer
Det har blitt oppdaget at verts kortaktin, HDAC4 og HDAC6 polypeptider gjennomgår nedbrytning som svar på IAV-infeksjon i både hund (MDCK) og humane (A549, NHBE) celler 7,8,9. Ved å bruke de ovennevnte tilnærmingene ble det avdekket at IAV-induserte vertskaspaser, spesielt caspase 3, forårsaker nedbrytning 7,8,9

Log in or to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Det er fastslått at virus skreddersyr vertsfaktorene og veiene til deres fordel. I sin tur motstår vertscellene det ved å bruke ulike strategier. En av disse strategiene er PANoptosis, som vertsceller bruker som en antiviral strategi mot virusinfeksjoner. Imidlertid har virus som IAV utviklet sine egne strategier for å motvirke PANoptose og utnytte det til deres fordel 1,3,6. Dette samspillet innebærer spaltning av forskjel.......

Log in or to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Forfatteren anerkjenner Jennifer Tipper, Bilan Li, Jesse vanWestrienen, Kevin Harrod, Da-Yuan Chen, Farjana Ahmed, Sonya Mros, Kenneth Yamada, Richard Webby, BEI Resources (NIAID), Health Research Council of New Zealand, Maurice og Phyllis Paykel Trust (New Zealand), HS og JC Anderson Trust (Dunedin), og Institutt for mikrobiologi og immunologi og School of Biomedical Sciences (University of Otago).

....

Log in or to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

NameCompanyCatalog NumberComments
A549 cellsATCCCRM-CCL-185Human, epithelial, lung
Ammonium chlorideSigma-AldrichA9434
Caspase 3 InhibitorSigma-Aldrich264156-MAlso known as 'InSolution Caspase-3 Inhibitor II - Calbiochem'
cOmplete, Mini Protease Inhibitor CocktailRoche11836153001
Goat anti-NP antibodyGift from Richard Webby (St Jude Children’s Research Hospital, Memphis, USA) to MH
Lipofectamine 2000 Transfection ReagentThermoFisher Scientific31985062
Lipofectamine RNAiMAX Transfection ReagentThermoFisher Scientific13778150
MDCK cellsATCCCCL-34Dog, epithelial, kidney
MG132Sigma-AldrichM7449
Minimum Essential Medium (MEM)ThermoFisher Scientific11095080Add L-glutamine, antibiotics or other supplements as required
MISSION siRNA Universal Negative Control #1Sigma-AldrichSIC001
Odyssey Fc imager with Image Studio Lite software 5.2 LI-COROdyssey Fc has been replaced with Odyssey XF and Image Studio Lite software has been replaced with Empiria Studio software.
Pierce BCA Protein Assay KitThermoFisher Scientific23225
Plasmid expressing human cortactin-GFP fusion Addgene50728Gift from Kenneth Yamada to Addgene
Pre-designed small interferring RNA (siRNA) to caspase 3Sigma-AldrichNM_004346siRNA ID: SASI_Hs01_00139105
Pre-designed small interferring RNA to caspase 6Sigma-AldrichNM_001226siRNA ID: SASI_Hs01_00019062
Pre-designed small interferring RNA to caspase 7Sigma-AldrichNM_001227siRNA ID: SASI_Hs01_00128361
Pre-designed SYBR Green RT-qPCR Primer pairsSigma-AldrichKSPQ12012Primer Pair IDs: H_CASP3_1; H_CASP6_1; H_CASP7_1
Protran Premium nitrocellulose membraneCytiva (Fomerly GE Healthcare)10600003
Rabbit anti-actin antibodyAbcamab8227
Rabbit anti-cortactin antibodyCell Signaling3502
Rabbit anti-GFP antibodyTakara632592
SeeBlue Pre-stained Protein StandardThermoFisher ScientificLC5625
Transfection medium, Opti-MEMThermoFisher Scientific11668019
Tris-HCl, NaCl, SDS, Sodium Deoxycholate, Triton X-100Merck
Trypsin, TPCK-TreatedSigma-Aldrich4370285

  1. Place, D. E., Lee, S., Kanneganti, T. -. D. PANoptosis in microbial infection. Current Opinion in Microbiology. 59, 42-49 (2021).
  2. Zheng, M., Kanneganti, T. -. D. The regulation of the ZBP1-NLRP3 inflammasome and its implications in pyroptosis, apoptosis, and necroptosis (PANoptosis). Immunological Reviews. 297 (1), 26-38 (2020).
  3. Connolly, P. F., Fearnhead, H. O. Viral hijacking of host caspases: An emerging category of pathogen-host interactions. Cell Death & Differentiation. 24 (8), 1401-1410 (2017).
  4. Julien, O., Wells, J. A. Caspases and their substrates. Cell Death & Differentiation. 24 (8), 1380-1389 (2017).
  5. Balachandran, S., Rall, G. F., Gack, M. U. Benefits and perils of necroptosis in influenza virus infection. Journal of Virology. 94 (9), 01101-01119 (2020).
  6. Ampomah, P. B., Lim, L. H. K. Influenza A virus-induced apoptosis and virus propagation. Apoptosis. 25 (1-2), 1-11 (2020).
  7. Chen, D. Y., Husain, M. Caspase-mediated degradation of host cortactin that promotes influenza A virus infection in epithelial cells. Virology. 497, 146-156 (2016).
  8. Galvin, H. D., Husain, M. Influenza A virus-induced host caspase and viral PA-X antagonize the antiviral host factor, histone deacetylase 4. Journal of Biological Chemistry. 294 (52), 20207-20221 (2019).
  9. Husain, M., Harrod, K. S. Influenza A virus-induced caspase-3 cleaves the histone deacetylase 6 in infected epithelial cells. FEBS Letters. 583 (15), 2517-2520 (2009).
  10. Husain, M., Cheung, C. Y. Histone deacetylase 6 inhibits influenza A virus release by downregulating the trafficking of viral components to the plasma membrane via its substrate, acetylated microtubules. Journal of Virology. 88 (19), 11229-11239 (2014).
  11. Chen, D. Y., Husain, M. Caspase-mediated cleavage of human cortactin during influenza A virus infection occurs in its actin-binding domains and is associated with released virus titres. Viruses. 12 (1), 87 (2020).
  12. Zhirnov, O. P., Syrtzev, V. V. Influenza virus pathogenicity is determined by caspase cleavage motifs located in the viral proteins. Journal of Molecular and Genetic Medicine. 3 (1), 124-132 (2009).
  13. Zhirnov, O. P., Klenk, H. -. D. Alterations in caspase cleavage motifs of NP and M2 proteins attenuate virulence of a highly pathogenic avian influenza virus. Virology. 394 (1), 57-63 (2009).
  14. Zhirnov, O. P., Konakova, T. E., Garten, W., Klenk, H. Caspase-dependent N-terminal cleavage of influenza virus nucleocapsid protein in infected cells. Journal of Virology. 73 (12), 10158-10163 (1999).
  15. Robinson, B. A., Van Winkle, J. A., McCune, B. T., Peters, A. M., Nice, T. J. Caspase-mediated cleavage of murine norovirus NS1/2 potentiates apoptosis and is required for persistent infection of intestinal epithelial cells. PLOS Pathogens. 15 (7), 1007940 (2019).
  16. Richard, A., Tulasne, D. Caspase cleavage of viral proteins, another way for viruses to make the best of apoptosis. Cell Death & Disease. 3 (3), 277 (2012).
  17. Brauer, R., Chen, P. Influenza virus propagation in embryonated chicken eggs. Journal of Visualized Experiments. (97), e52421 (2015).
  18. Lüthi, A. U., Martin, S. J. The CASBAH: A searchable database of caspase substrates. Cell Death & Differentiation. 14 (4), 641-650 (2007).
  19. Kumar, S., van Raam, B. J., Salvesen, G. S., Cieplak, P. Caspase cleavage sites in the human proteome: CaspDB, a database of predicted substrates. PLoS One. 9 (10), 110539 (2014).
  20. Igarashi, Y., et al. CutDB: A proteolytic event database. Nucleic Acids Research. 35 (Database issue). 35, 546-549 (2007).
  21. Crawford, E. D., et al. The DegraBase: A database of proteolysis in healthy and apoptotic human cells. Molecular & Cellular Proteomics. 12 (3), 813-824 (2013).
  22. Rawlings, N. D., Tolle, D. P., Barrett, A. J. MEROPS: The peptidase database. Nucleic Acids Research. 32, 160-164 (2004).
  23. Lange, P. F., Overall, C. M. TopFIND, a knowledgebase linking protein termini with function. Nature Methods. 8 (9), 703-704 (2011).
  24. Fortelny, N., Yang, S., Pavlidis, P., Lange, P. F., Overall, C. M. Proteome TopFIND 3.0 with TopFINDer and PathFINDer: Database and analysis tools for the association of protein termini to pre- and post-translational events. Nucleic Acids Research. 43, 290-297 (2015).

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Research

Education

ABOUT JoVE

Copyright © 2024 MyJoVE Corporation. All rights reserved