JoVE Logo
Faculty Resource Center

Sign In

Summary

Abstract

Introduction

Protocol

Representative Results

Discussion

Acknowledgements

Materials

References

Immunology and Infection

Identifiera kaspaser och deras motiv som klyver proteiner under influensa A-virusinfektion

Published: July 21st, 2022

DOI:

10.3791/64189

1Department of Microbiology and Immunology, University of Otago

Influensa A-virus (IAV) -infektion aktiverar de caspaser som klyver värd- och virusproteiner, som i sin tur har pro- och antivirala funktioner. Genom att använda hämmare, RNA-interferens, platsriktad mutagenes och western blotting- och RT-qPCR-tekniker identifierades kaspaser i infekterade däggdjursceller som klyver värdkortaktin och histondeacetylaser.

Caspaser, en familj av cysteinproteaser, orkestrerar programmerad celldöd som svar på olika stimuli, inklusive mikrobiella infektioner. Ursprungligen beskrivet att inträffa genom apoptos, är programmerad celldöd nu känd för att omfatta tre sammankopplade vägar: pyroptos, apoptos och nekroptos, tillsammans myntade som en process, PANoptosis. Påverkan A-virusinfektion (IAV) inducerar PANoptos i däggdjursceller genom att inducera aktivering av olika caspaser, som i sin tur klyver olika värd- såväl som virala proteiner, vilket leder till processer som aktivering av värdens medfödda antivirala svar eller nedbrytning av antagonistiska värdproteiner. I detta avseende har kaspas-3-medierad klyvning av värdkortatin, histondeacetylas 4 (HDAC4) och histondeacetylas 6 (HDAC6) upptäckts i både djur- och humanepitelceller som svar på IAV-infektionen. För att demonstrera detta användes hämmare, RNA-interferens och platsriktad mutagenes, och därefter mättes klyvningen eller motståndet mot klyvning och återvinning av kortattin-, HDAC4- och HDAC6-polypeptider med western blotting. Dessa metoder, i kombination med RT-qPCR, bildar en enkel men effektiv strategi för att identifiera värden såväl som virala proteiner som genomgår kaspasmedierad klyvning under en infektion av IAV eller andra mänskliga och djurvirus. I detta protokoll utvecklas de representativa resultaten av denna strategi, och sätten att göra den mer effektiv diskuteras också.

Influensa A-virus (IAV) är den prototypiska medlemmen i familjen Orthomyxoviridae och är känd för att orsaka globala epidemier och oförutsägbara pandemier. IAV orsakar mänsklig andningssjukdom, influensa, allmänt känd som "influensa". Influensan är en akut sjukdom som resulterar i induktion av värdpro- och antiinflammatoriska medfödda immunsvar och död av epitelceller i människans luftvägar. Båda processerna styrs av ett fenomen som kallas programmerad celldöd1. Signaleringen för programmerad celldöd induceras så snart olika patogenigenkänningsreceptorer känner av de inkommande viruspartiklarna i värdceller. Detta leder till programmer....

Log in or to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Myndighetsgodkännanden erhölls från University of Otago Institutional Biological Safety Committee för att arbeta med IAV- och däggdjursceller. Madin-Darby Canine Kidney (MDCK) eller humana lungalveolära epitelceller A549 och IAV H1N1-subtyper användes för denna studie. IAV odlades i kycklingägg, som beskrivs på andra ställen17. Sterila och aseptiska förhållanden användes för att arbeta med däggdjursceller, och en biosäkerhetsnivå 2 (eller fysisk inneslutning 2) och klass II bios?.......

Log in or to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Behandling med caspase 3-hämmare
Det har upptäckts att värdkortatin, HDAC4 och HDAC6 polypeptider genomgår nedbrytning som svar på IAV-infektion i både hund (MDCK) och humana (A549, NHBE) celler 7,8,9. Genom att använda ovanstående metoder avslöjades att IAV-inducerade värdkaspaser, särskilt caspase 3, orsakar deras nedbrytning 7,8,9.

Log in or to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Det är uppenbart att virus skräddarsyr värdfaktorerna och vägarna till deras fördel. I sin tur motstår värdcellerna det genom att använda olika strategier. En av dessa strategier är PANoptosis, som värdceller använder som en antiviral strategi mot virusinfektioner. Virus som IAV har dock utvecklat sina egna strategier för att motverka PANoptos och utnyttja det till sin fördel 1,3,6. Detta samspel involverar klyvning.......

Log in or to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Författaren erkänner Jennifer Tipper, Bilan Li, Jesse vanWestrienen, Kevin Harrod, Da-Yuan Chen, Farjana Ahmed, Sonya Mros, Kenneth Yamada, Richard Webby, BEI Resources (NIAID), Health Research Council of New Zealand, Maurice och Phyllis Paykel Trust (Nya Zeeland), H.S. och J.C. Anderson Trust (Dunedin) och Institutionen för mikrobiologi och immunologi och School of Biomedical Sciences (University of Otago).

....

Log in or to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

NameCompanyCatalog NumberComments
A549 cellsATCCCRM-CCL-185Human, epithelial, lung
Ammonium chlorideSigma-AldrichA9434
Caspase 3 InhibitorSigma-Aldrich264156-MAlso known as 'InSolution Caspase-3 Inhibitor II - Calbiochem'
cOmplete, Mini Protease Inhibitor CocktailRoche11836153001
Goat anti-NP antibodyGift from Richard Webby (St Jude Children’s Research Hospital, Memphis, USA) to MH
Lipofectamine 2000 Transfection ReagentThermoFisher Scientific31985062
Lipofectamine RNAiMAX Transfection ReagentThermoFisher Scientific13778150
MDCK cellsATCCCCL-34Dog, epithelial, kidney
MG132Sigma-AldrichM7449
Minimum Essential Medium (MEM)ThermoFisher Scientific11095080Add L-glutamine, antibiotics or other supplements as required
MISSION siRNA Universal Negative Control #1Sigma-AldrichSIC001
Odyssey Fc imager with Image Studio Lite software 5.2 LI-COROdyssey Fc has been replaced with Odyssey XF and Image Studio Lite software has been replaced with Empiria Studio software.
Pierce BCA Protein Assay KitThermoFisher Scientific23225
Plasmid expressing human cortactin-GFP fusion Addgene50728Gift from Kenneth Yamada to Addgene
Pre-designed small interferring RNA (siRNA) to caspase 3Sigma-AldrichNM_004346siRNA ID: SASI_Hs01_00139105
Pre-designed small interferring RNA to caspase 6Sigma-AldrichNM_001226siRNA ID: SASI_Hs01_00019062
Pre-designed small interferring RNA to caspase 7Sigma-AldrichNM_001227siRNA ID: SASI_Hs01_00128361
Pre-designed SYBR Green RT-qPCR Primer pairsSigma-AldrichKSPQ12012Primer Pair IDs: H_CASP3_1; H_CASP6_1; H_CASP7_1
Protran Premium nitrocellulose membraneCytiva (Fomerly GE Healthcare)10600003
Rabbit anti-actin antibodyAbcamab8227
Rabbit anti-cortactin antibodyCell Signaling3502
Rabbit anti-GFP antibodyTakara632592
SeeBlue Pre-stained Protein StandardThermoFisher ScientificLC5625
Transfection medium, Opti-MEMThermoFisher Scientific11668019
Tris-HCl, NaCl, SDS, Sodium Deoxycholate, Triton X-100Merck
Trypsin, TPCK-TreatedSigma-Aldrich4370285

  1. Place, D. E., Lee, S., Kanneganti, T. -. D. PANoptosis in microbial infection. Current Opinion in Microbiology. 59, 42-49 (2021).
  2. Zheng, M., Kanneganti, T. -. D. The regulation of the ZBP1-NLRP3 inflammasome and its implications in pyroptosis, apoptosis, and necroptosis (PANoptosis). Immunological Reviews. 297 (1), 26-38 (2020).
  3. Connolly, P. F., Fearnhead, H. O. Viral hijacking of host caspases: An emerging category of pathogen-host interactions. Cell Death & Differentiation. 24 (8), 1401-1410 (2017).
  4. Julien, O., Wells, J. A. Caspases and their substrates. Cell Death & Differentiation. 24 (8), 1380-1389 (2017).
  5. Balachandran, S., Rall, G. F., Gack, M. U. Benefits and perils of necroptosis in influenza virus infection. Journal of Virology. 94 (9), 01101-01119 (2020).
  6. Ampomah, P. B., Lim, L. H. K. Influenza A virus-induced apoptosis and virus propagation. Apoptosis. 25 (1-2), 1-11 (2020).
  7. Chen, D. Y., Husain, M. Caspase-mediated degradation of host cortactin that promotes influenza A virus infection in epithelial cells. Virology. 497, 146-156 (2016).
  8. Galvin, H. D., Husain, M. Influenza A virus-induced host caspase and viral PA-X antagonize the antiviral host factor, histone deacetylase 4. Journal of Biological Chemistry. 294 (52), 20207-20221 (2019).
  9. Husain, M., Harrod, K. S. Influenza A virus-induced caspase-3 cleaves the histone deacetylase 6 in infected epithelial cells. FEBS Letters. 583 (15), 2517-2520 (2009).
  10. Husain, M., Cheung, C. Y. Histone deacetylase 6 inhibits influenza A virus release by downregulating the trafficking of viral components to the plasma membrane via its substrate, acetylated microtubules. Journal of Virology. 88 (19), 11229-11239 (2014).
  11. Chen, D. Y., Husain, M. Caspase-mediated cleavage of human cortactin during influenza A virus infection occurs in its actin-binding domains and is associated with released virus titres. Viruses. 12 (1), 87 (2020).
  12. Zhirnov, O. P., Syrtzev, V. V. Influenza virus pathogenicity is determined by caspase cleavage motifs located in the viral proteins. Journal of Molecular and Genetic Medicine. 3 (1), 124-132 (2009).
  13. Zhirnov, O. P., Klenk, H. -. D. Alterations in caspase cleavage motifs of NP and M2 proteins attenuate virulence of a highly pathogenic avian influenza virus. Virology. 394 (1), 57-63 (2009).
  14. Zhirnov, O. P., Konakova, T. E., Garten, W., Klenk, H. Caspase-dependent N-terminal cleavage of influenza virus nucleocapsid protein in infected cells. Journal of Virology. 73 (12), 10158-10163 (1999).
  15. Robinson, B. A., Van Winkle, J. A., McCune, B. T., Peters, A. M., Nice, T. J. Caspase-mediated cleavage of murine norovirus NS1/2 potentiates apoptosis and is required for persistent infection of intestinal epithelial cells. PLOS Pathogens. 15 (7), 1007940 (2019).
  16. Richard, A., Tulasne, D. Caspase cleavage of viral proteins, another way for viruses to make the best of apoptosis. Cell Death & Disease. 3 (3), 277 (2012).
  17. Brauer, R., Chen, P. Influenza virus propagation in embryonated chicken eggs. Journal of Visualized Experiments. (97), e52421 (2015).
  18. Lüthi, A. U., Martin, S. J. The CASBAH: A searchable database of caspase substrates. Cell Death & Differentiation. 14 (4), 641-650 (2007).
  19. Kumar, S., van Raam, B. J., Salvesen, G. S., Cieplak, P. Caspase cleavage sites in the human proteome: CaspDB, a database of predicted substrates. PLoS One. 9 (10), 110539 (2014).
  20. Igarashi, Y., et al. CutDB: A proteolytic event database. Nucleic Acids Research. 35 (Database issue). 35, 546-549 (2007).
  21. Crawford, E. D., et al. The DegraBase: A database of proteolysis in healthy and apoptotic human cells. Molecular & Cellular Proteomics. 12 (3), 813-824 (2013).
  22. Rawlings, N. D., Tolle, D. P., Barrett, A. J. MEROPS: The peptidase database. Nucleic Acids Research. 32, 160-164 (2004).
  23. Lange, P. F., Overall, C. M. TopFIND, a knowledgebase linking protein termini with function. Nature Methods. 8 (9), 703-704 (2011).
  24. Fortelny, N., Yang, S., Pavlidis, P., Lange, P. F., Overall, C. M. Proteome TopFIND 3.0 with TopFINDer and PathFINDer: Database and analysis tools for the association of protein termini to pre- and post-translational events. Nucleic Acids Research. 43, 290-297 (2015).

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Research

Education

ABOUT JoVE

Copyright © 2024 MyJoVE Corporation. All rights reserved