Summary
Abstract
Introduction
Protocol
Representative Results
Discussion
Acknowledgements
Materials
References
Immunology and Infection
Малярия передается инфицированными комарами при инокуляции спорозоитной стадии плазмодия . Трансгенный плазмодий позволил нам лучше понять биологию малярии и внес непосредственный вклад в разработку вакцины против малярии. В данной статье мы опишем оптимизированную методологию получения трансгенных спорозоитов Plasmodium berghei .
Малярия является смертельным заболеванием, вызываемым паразитом Plasmodium и передающимся через укусы самок комаров рода Anopheles . Спорозоитная стадия плазмодия , откладываемого комарами в коже позвоночных хозяев, проходит фазу обязательного развития в печени, прежде чем начать клиническую малярию. Мы мало знаем о биологии развития плазмодия в печени; доступ к стадии спорозоита и способность генетически модифицировать такие спорозоиты являются важнейшими инструментами для изучения природы инфекции Plasmodium и результирующего иммунного ответа в печени. Здесь мы представляем комплексный протокол генерации трансгенных спорозоитов Plasmodium berghei . Мы генетически модифицируем P. berghei в крови и используем эту форму для заражения комаров рода Anopheles , когда они едят кровь. После того, как трансгенные паразиты развиваются у комаров, мы выделяем спорозоитную стадию паразита из слюнных желез комаров для экспериментов in vivo и in vitro . Мы демонстрируем валидность протокола, генерируя спорозоиты нового штамма P. berghei , экспрессирующие субъединицу 11 зеленого флуоресцентного белка (GFP11), и показываем, как его можно использовать для исследования биологии малярии на стадии печени.
Несмотря на успехи в разработке лекарств и научных исследованиях в области профилактики и лечения малярии, глобальное бремя малярии остается высоким. Ежегодно от малярии умирает более полумиллиона человек, при этом самые высокие уровни смертности наблюдаются среди детей, живущих в эндемичных по малярии регионах, таких как страны Африки к югу отСахары1. Малярия вызывается паразитом Plasmodium, который передается человеку через укусы самок комаров рода Anopheles, несущих паразита в своих слюнных железах. Инфекционная стадия плазмодия — спорозоиты — откладываются в коже позвоночных во время трапезы ....
Все исследования с участием позвоночных животных в нашей лаборатории проводились в соответствии с рекомендациями и протоколами Университета Джорджии по использованию животных.
1. Генерация мышей, инфицированных P. berghei
Определение частоты и развития шизонтов имеет решающее значение для обеспечения того, чтобы достаточное количество жизнеспособных паразитов находилось в оптимальной стадии для трансфекции. Незрелые шизонты можно отличить от полностью зрелых по наличию меньшего количества мерозоит?.......
Мы использовали вышеописанный протокол в нашей лаборатории для создания нескольких линий трансгенных паразитов P. berghei. Несмотря на то, что этот протокол оптимизирован для P . berghei, мы также успешно использовали этот протокол для генерации трансгенных спорозоитов P. yoelii. По?.......
Эта работа была поддержана грантом Национальных институтов здравоохранения AI168307 SPK. Мы благодарим UGA CTEGD Flow Cytometry Core и UGA CTEGD Microscopy Core. Мы также признательны Эшу Патхаку, Энн Эллиот и сотрудникам UGA Sporocore за вклад в оптимизацию протокола. Мы хотим поблагодарить д-ра Дайчи Камияма (Daichi Kamiyama) за ценные идеи, обсуждение и родительские плазмиды, содержащие GFP11 и GFP 1-10. Мы также хотели бы поблагодарить сотрудников лаборатории Kurup за их постоянную поддержку, терпение и ободрение.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
30 G x 1/2" Syringe needle | Exel international | 26437 | |
Alsever's solution | Sigma-Aldritch | A3551-500ML | |
Amaxa Basic Parasite Nucleofector Kit 2 | Lonza | VMI-1021 | |
Avertin (2,2,2-Tribromoethanol) | TCI America | T1420 | |
Blood collection tubes | BD bioscience | 365967 | for serum collection |
C-Chip disposable hematocytometer | INCYTO | DHC-N01-5 | |
CellVeiw Cell Culture Dish | Greiner Bio-One | 627860 | |
Centrifuge 5425 | Eppendorf | 5405000107 | |
Centrifuge 5910R | Eppendorf | 5910R | For gradient centrifugation |
Delta Vision II - Inverted microscope system | Olympus | IX-71 | |
Dimethyl Sulfoxide | Sigma | D5879-500ml | |
Fetal bovine serum | GenClone | 25-525 | |
GFP11 plasmid | Kurup Lab | pSKspGFP11 | Generated from PL0017 plasmid |
Giemsa Stain | Sigma-Aldritch | 48900-1L-F | |
Hepa GFP1-10 cells | Kurup Lab | Hepa GFP1-10 | Generated from Hepa 1-6 cells (ATCC Cat# CRL-1830) |
Mouse Serum | Used for mosquito dissection media | ||
NaCl | Millipore-Sigma | SX0420-5 | 1.5 M and 0.15 M for percoll solution |
Nucleofector II | Amaxa Biosystems (Lonza) | Program U-033 used for RBC electroporation | |
Pasteur pipette | VWR | 14673-043 | |
Penicillin/Streptomycin | Sigma-Aldritch | P0781-100ML | |
Percoll (Density gradient stock medium) | Cytivia | 17-0891-02 | Details in protocol |
PL0017 Plasmid | BEI Resources | MRA-786 | |
Pyrimethamine (for oral administration) | Sigma | 46706 | Preparation details: Add 17.5 mg Pyrimethamine to 2.5 mL of DMSO. Vortex, if needed to dissolve completely; Adjust pH of 225 mL of dH2O to 4 using HCL. Add Pyrimethamine in DMSO to water and bring to 250 mL. Add 10 g of sugar to encourage regular consumption of drugged water. Pyrimethamine is light sensitive. Use dark bottle or aluminum foil covered bottle when treating mice. |
RPMI 1640 | Corning | 15-040-CV | |
SoftWoRx microscopy software | Applied Precision | v6.1.3 |
ABOUT JoVE
Copyright © 2024 MyJoVE Corporation. All rights reserved