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Il protocollo riassume le migliori pratiche per ridurre al minimo la carica microbica in un ambiente di camera bianca e include strategie come il monitoraggio ambientale, il monitoraggio dei processi e i test di sterilità del prodotto. È rilevante per gli impianti di produzione e collaudo che sono tenuti a soddisfare gli attuali standard di buona pratica dei tessuti e gli attuali standard di buona pratica di fabbricazione.
Un programma ben convalidato e olistico che incorpora robuste misure di camicia, pulizia, monitoraggio ambientale e monitoraggio del personale è fondamentale per ridurre al minimo la carica microbica nelle suite di produzione di terapie cellulari e nei corrispondenti laboratori di test per garantire che le strutture operino in uno stato di controllo. Garantire la sicurezza del prodotto attraverso misure di controllo della qualità, come i test di sterilità, è un requisito normativo sia per le cellule umane, i tessuti e i prodotti cellulari e tissutali (HCT/Ps) minimamente manipolati (sezione 361) che per quelli minimamente manipolati (sezione 351). In questo video, forniamo una guida graduale su come sviluppare e incorporare le migliori pratiche asettiche per operare in un ambiente di camera bianca, tra cui vestizione, pulizia, stadiazione dei materiali, monitoraggio ambientale, monitoraggio dei processi e test di sterilità del prodotto utilizzando l'inoculazione diretta, fornita dalla Farmacopea degli Stati Uniti (USP<71>) e dal metodo alternativo di test di sterilità del National Institutes of Health (NIH). Questo protocollo è inteso come guida di riferimento per gli stabilimenti che dovrebbero soddisfare le attuali buone pratiche sui tessuti (cGTP) e le attuali buone pratiche di fabbricazione (cGMP).
L'implementazione di un forte programma di monitoraggio microbico attraverso il monitoraggio ambientale (EM), il monitoraggio dei processi e i test di sterilità del prodotto è un requisito normativo per le attuali buone pratiche tissutali (cGTP) e le attuali buone pratiche di fabbricazione (cGMP) nei laboratori di terapia cellulare1. Inoltre, la Food and Drug Administration (FDA) degli Stati Uniti prevede che il laboratorio che esegue i test di controllo qualità (QC) del prodotto dovrebbe anche impiegare strutture e controlli paragonabili a quelli utilizzati per le operazioni di riempimento asettico2.
1. Pratiche asettiche
I risultati attesi sono descritti nella Tabella 1. I dati EM dovrebbero essere rivisti e seguiti con un'indagine appropriata e una risposta all'azione, all'allarme o alle escursioni limite ISO. Se si verifica un'escursione per particelle non vitali, si dovrebbe procedere secondo ISO 14644-Annex A, sez. A.5.57. Se l'escursione può essere attribuita a un evento anomalo immediatamente identificabile, i risultati originali del campionamento devono essere documentati, deve essere aggi.......
Ci sono diverse aree critiche in questo protocollo, tra cui il mantenimento della tecnica asettica e del flusso d'aria unidirezionale all'interno delle camere bianche e delle BSC. Le migliori pratiche includono muoversi lentamente e deliberatamente per ridurre al minimo la turbolenza. Le manipolazioni asettiche devono essere eseguite dal lato del prodotto, non dall'alto. Si raccomanda la lavorazione a sistema chiuso e l'uso di materie prime sterilizzate terminalmente. Parlare in aree critiche e appoggiarsi a pareti o att.......
Questo lavoro è stato supportato dal programma di ricerca intramurale del National Institutes of Health Clinical Center. Il contenuto è di esclusiva responsabilità degli autori e non rappresenta le opinioni ufficiali del National Institutes of Health.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
20-25°C Incubator | Lab preference | ||
30-35°C Incubator | Lab preference | ||
Alcohol-based hand sanitizer | Lab preference | ||
BacT/ALERT Dual-T instrument | BioMerieux Industry | ||
Beard cover | Lab preference | ||
Biosafety cabinet (BSC) | Lab preference | ||
Cleanroom shoes | Lab preference | ||
Fluidthioglycollate medium (FTM) | Hardy Diagnostics | U84 | USP |
Handheld cleaning mop | Contec | 2665LF | |
Hypodermic needle | Lab preference | ||
iFA+ BacT/ALERT bottle | Biomerieux | 412990 | |
iFN+ BacT/ALERT bottle | Biomerieux | 412991 | |
Isokinetic head | Lab preference | ||
Laser particle counter | TSI Incorporated | 9500-01 | |
LpH III | Steris | 1S16CX | |
Mirror | Lab preference | ||
Non-sterile bouffant | Lab preference | ||
Non-sterile gloves | Lab preference | ||
Non-sterile shoe covers | Lab preference | ||
Non-sterile sleeve covers | Lab preference | ||
Parafilm | Lab preference | ||
Peridox RTU | Contec | CR85335IR | |
Plastic bag | Lab preference | ||
Sabouraud Dextrose Agar with Lecithinase and Tween (SABLT) | Hardy Diagnostics | P595 | USP, irradiated |
Sabouraurd Dextrose Agar (SAB) | Hardy Diagnostics | W565 | USP, irradiated |
Safety glasses | Lab preference | ||
Scrubs (top and bottom) | Lab preference | ||
Spor-Klenx RTU | Steris | 6525M2 | |
Sterile 70% isopropyl alcohol (IPA) | Decon CiDehol | 8316 | |
Sterile alcohol wipe | Lab preference | ||
Sterile boot covers | Kimberly Clark | Cat# varies based on size | |
Sterile coveralls | Kimberly Clark | Cat# varies based on size | |
Sterile face mask | Lab preference | ||
Sterile gloves | Lab preference | ||
Sterile hood | Kimberly Clark | Cat# varies based on size | |
Sterile low-lint wipes | Texwipe | TX3210 | |
Sterile mop cleaning pads | Contec | MEQT0002SZ | |
Sterile sleeve covers | Kimberly Clark | 36077 | |
Sterile spreading rod | Fisher Scientific | 14665231 | |
Sterile syringe | Lab preference | ||
Tacky mats | Lab preference | ||
Tryptic Soy Agar (TSA) | Hardy Diagnostics | W570R | USP, irradiated |
Tryptic Soy Agar with Lecithinase and Tween (TSALT) | Hardy Diagnostics | P520R | USP, irradiated |
Tryptic Soy Broth (TSB) | Hardy Diagnostics | U46 | USP |
Tubing | Lab preference | ||
Vesphene III | Steris | 1S15CX | |
Viable air sampler | Hardy Diagnostics | BAS22K | |
Vortex | Lab preference |
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