이 연구는 NIGMS (National Institute of General Medical Sciences) T32 프로그램 (T32 GM133369)과 National Science Foundation (NSF 1454230)이 부분적으로 자금을 지원했습니다. 또한 WVU 공유 연구 시설과 응용 생물 물리학 지원 및 지원이 인정됩니다.

1. ZIF-8 합성
<ol><li>이 예에서는 1:10:100(금속:링커:용매) 질량비를 사용하여 ZIF-8을 합성합니다. 이를 위해 질산 아연 육수화물을 측정하고 측정을 기록합니다. 링커, 2-메틸이미다졸 및 용매(즉, 메탄올)에 필요한 양을 계산하기 위해 예시 질량비를 활용한다.</li>
	<li>질산아연 육수화물과 링커를 두 개의 다른 유리 바이알에 넣습니다. 계산 된 메탄올 양의 절반을 질산 아연 6 수화물에 ?...

전기 셀 기판 감지에 의한 MOF 유도 셀 거동 변화 평가

이전 분석에서는 ECIS를 사용하여 분석물(즉, 탄소 나노튜브(35), 약물(43) 또는 나노클레이(nanoclays))에 노출된 세포의 거동을 평가할 수 있었습니다. 또한, Stueckle et al. ECIS를 사용하여 나노클레이 및 그 부산물에 노출된 BEAS-2B 세포의 독성을 평가했으며 세포 거동 및 부착이 이러한 물질의 물리화학적 특성에 의존한다는 것을 발견했습니다<sup clas...

금속-유기 프레임워크(MOF)는 유기 용매에서 금속 이온과 유기 링커 1,2의 조합을 통해 형성된 하이브리드입니다. 이러한 조합의 다양성으로 인해, MOF는 구조적 다양성3, 조정 가능한 다공성, 높은 열 안정성 및 높은 표면적4,5을 갖는다. 이러한 특성은 가스 저장(6,7)에서 촉매(8,9)까지, 그리고 조영제(10,11)에서 약물 전달 유닛(12,13)까지 다양한 응용에서 매력적인 후보가 된다. 그러나 이러한 응용 분야에 MOF를 구현하면 사용자와 환경 모두에 대한 안전에 대한 우려가 제기되었습니다. 예를 들어, 예비 연구들은 MOF 합성에 사용되는 금속 이온 또는 링커에 세포가 노출될 때 세포 기능과 성장이 변화한다는 것을 보여주었다 1,14,15. 예를 들어, Tamames-Tabar et al. Zn 기반 MOF인 ZIF-8 MOF가 Zr 기반 및 Fe 기반 MOF에 비해 인간 자궁경부암 세포주(HeLa) 및 마우스 대식세포 세포주(J774)에서 더 많은 세포 변화를 일으키고 있음을 입증했습니다. 이러한 효과는 아마도 ZIF-8의 금속 성분(즉, Zn)에 기인하는 것으로 추정되며, 이는 프레임워크 붕괴 및 Zn 이온 방출1시 잠재적으로 세포 사멸을 유도할 수 있습니다. 유사하게, Gandara-Loe et al. Cu 기반 MOF인 HKUST-1이 10μg/mL 이상의 농도에서 사용될 때 마우스 망막모세포종 세포 생존율이 가장 높음을 입증했습니다. 이것은 아마도 이 프레임워크의 합성 동안 통합된 Cu 금속 이온 때문이었을 것이며, 일단 방출되면 노출된 세포(15)에서 산화 스트레스를 유도할 수 있습니다.
또한, 분석에 따르면 다른 물리 화학적 특성을 가진 MOF에 노출되면 노출 된 세포의 다양한 반응이 발생할 수 있습니다. 예를 들어, Wagner et al. 불멸화된 인간 기관지 상피 세포의 노출에 사용되는 ZIF-8 및 MIL-160(Al 기반 프레임워크)이 프레임워크의 물리화학적 특성, 즉 소수성, 크기 및 구조적 특성에 따라 세포 반응을 유도한다는 것을 입증했습니다16. 보완적으로, Chen et al. 인간의 정상 간 세포(HL-7702)에 노출된 160μg/mL MIL-100(Fe) 농도가 세포 생존력에 가장 큰 손실을 일으켰으며, 이는 아마도 이 특정 프레임워크의 금속 성분(즉, Fe17)으로 인한 것입니다.
이러한 연구는 물리화학적 특성과 노출 농도에 따라 세포 시스템에 대한 MOF의 유해한 영향을 분류하여 특히 생물 의학 분야에서 프레임워크 구현에 대한 잠재적인 우려를 제기하지만 이러한 평가의 대부분은 단일 시점 비색 분석을 기반으로 합니다. 예를 들어, (3-(4,5-디메틸티아졸-2-일)-2,5-디페닐테트라졸륨 브로마이드) 테트라졸륨(MTT) 및 수용성 테트라졸륨염(WST-1) 분석을 사용했을 때, 이러한 생화학적 시약은 세포가 또한 노출된 입자와의 상호 작용에 대해 위양성을 유발할 수 있는 것으로 나타났습니다18. 테트라졸륨 염 및 중성 적색 시약은 입자 표면에 높은 흡착 또는 결합 친화력을 갖는 것으로 나타났으며, 그 결과 작용제 신호 간섭이 발생하였다19. 또한, 이전에 MOFs20,21에 노출된 세포의 변화를 평가하는 데 사용되는 것으로 나타났던 유세포 분석과 같은 다른 유형의 분석의 경우, 입자의 유해한 영향에 대한 실행 가능한 분석을 고려하려면 주요 문제를 우회해야 하는 것으로 나타났습니다. 특히, 입자 크기의 검출 범위, 특히 MOF에서 제공하는 것과 같은 혼합 집단 또는 세포 변화 전 보정에 사용된 입자의 기준은 해결해야 한다22. 또한 이러한 세포 분석 분석을 위해 세포 표지 중에 사용 된 염료는 세포가 노출 된 나노 입자를 방해 할 수 있음이 밝혀졌습니다23.
이 연구의 목표는 실시간 고처리량 평가 분석을 사용하여 선별된 MOF에 노출되었을 때 세포 행동의 변화를 평가하는 것이었습니다. 실시간 평가는 노출 기간과 관련된 시간 의존적 효과에 대한 통찰력을 제공하는 데 도움이 될 수 있다16. 또한, 세포 - 기질 상호 작용, 세포 형태 및 세포 - 세포 상호 작용의 변화뿐만 아니라 이러한 변화가 관심 물질의 물리 화학적 특성 및 노출 시간24,25에 어떻게 의존하는지에 대한 정보를 제공합니다.
제안된 접근법의 타당성과 적용 가능성을 입증하기 위해 인간 기관지 상피(BEAS-2B) 세포, ZIF-8(제올라이트 이미다졸레이트16의 소수성 프레임워크) 및 전기 세포-기질 임피던스 감지(ECIS)를 사용했습니다. BEAS-2B 세포는 폐 노출에 대한 모델이며(26) 이전에 나노클레이 및 열적으로 분해된 부산물(26,27,28)에 대한 세포 노출 시 변화를 평가하고 단일벽 탄소 나노튜브(SWCNT)18와 같은 나노 물질의 독성을 평가하는 데 사용되었습니다. 또한, 이러한 세포는 폐 상피 기능의 모델로 30년 이상 사용되어 왔다29. ZIF-8은 촉매 작용(catalysis)(30)에서의 광범위한 구현과 바이오이미징 및 약물 전달(32)을 위한 조영제(contrast agent)(31)로서 선택되었으며, 따라서 이러한 적용 동안 폐 노출에 대한 확장된 가능성을 위해 선택되었다. 마지막으로, 비침습적 실시간 기술인 ECIS는 분석물(재료 및 약물 모두)과 노출된 세포 간의 다양한 상호 작용의 결과로 세포 부착, 증식, 운동성 및 형태학의 변화를 실시간으로 평가하는 데 사용되었습니다16,26,28. ECIS는 교류(AC)를 사용하여 금 전극에 고정된 셀의 임피던스를 측정하며, 임피던스 변화는 셀-금 기판 계면의 저항 및 커패시턴스 변화, 셀-셀 상호 작용에 의해 유도된 장벽 기능 및 이러한 금 전극의 과세포 층 커버리지에 대한 통찰력을 제공합니다(33,34). ECIS를 사용하면 비침습적 실시간 방식으로 나노 스케일 분해능으로 정량적 측정이 가능합니다26,34.
이 연구는 단일 지점 분석 평가와 실시간으로 MOF로 인한 세포 행동 변화의 단순성과 평가 용이성을 평가하고 비교합니다. 이러한 연구는 다른 관심 입자에 대한 노출에 대한 반응으로 세포 프로파일을 평가하기 위해 추가로 외삽될 수 있으므로 안전한 설계 입자 테스트를 허용하고 후속 구현을 지원할 수 있습니다. 또한, 이 연구는 단일 지점 평가인 유전 및 세포 분석을 보완할 수 있습니다. 이것은 세포 집단에 대한 입자의 유해한 영향에 대한 보다 정보에 입각한 분석으로 이어질 수 있으며 이러한 입자의 독성을 고처리량 방식으로 스크리닝하는 데 사용될 수 있습니다(16,35,36).

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>&#160;4-[3-(4-idophenyl)-2-(4-nitrophenyl)-2H-5-tetrazolio]-1,3-benzene disulfonate (WST-1 assay)&#160;</td>
			<td>Roche</td>
			<td>5015944001</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>0.25% Trypsin-EDTA (1x)</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>25255-056</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>100 mm plates</td>
			<td>Corning</td>
			<td>430167</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>1300 Series A2 biofume hood</td>
			<td>Thermo Scientific</td>
			<td>323TS</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>2510 Branson bath sonicator</td>
			<td>Process Equipment &#38; Supply, Inc.&#160;</td>
			<td>251OR-DTH</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>2-methylimidazole, 97%</td>
			<td>Alfa Aesar</td>
			<td>693-98-1</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>5 mL sterile microtube</td>
			<td>Argos Technologies</td>
			<td>T2076S-CA</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>50 mL&#160; tubes&#160;</td>
			<td>Falcon</td>
			<td>352098</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>96W10idf well plates</td>
			<td>Applied Biophysics&#160;</td>
			<td>96W10idf PET</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>96-well plates</td>
			<td>Fisherbrand</td>
			<td>FB012931</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Biorender</td>
			<td>Biorender</td>
			<td>N/A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Countess cell counting chamber slides</td>
			<td>Invitrogen</td>
			<td>C10283</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Countess II FL automated cell counter</td>
			<td>Life Technologies</td>
			<td>C0916-186A-0303</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Denton Desk V sputter and carbon coater</td>
			<td>Denton Vacuum</td>
			<td>N/A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dimethly sulfoxide&#160;</td>
			<td>Corning</td>
			<td>25-950-CQC</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>DPBS/Modified</td>
			<td>Cytiva</td>
			<td>SH30028.02</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dulbecco&#39;s modified Eagle medium</td>
			<td>Corning</td>
			<td>10-014-CV</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ECIS-Z&#920;</td>
			<td>Applied Biophysics&#160;</td>
			<td>ABP 1129</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Excel</td>
			<td>Microsoft</td>
			<td>Version 2301</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Falcon tubes (15 mL)</td>
			<td>Corning</td>
			<td>352196</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fetal bovine serum</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>16140-071</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>FLUOstar OPTIMA plate reader</td>
			<td>BMG LABTECH</td>
			<td>413-2132</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>GraphPad Prism Software (9.0.0)</td>
			<td>GraphPad Software, LLC</td>
			<td>Version 9.0.0</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>HERAcell 150i CO2 Incubator</td>
			<td>Thermo Scientific</td>
			<td>50116047</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Hitachi S-4700 Field emission scanning electron microscope equipped with energy dispersive X-ray&#160;</td>
			<td>Hitachi High-Technologies Corporation</td>
			<td>S4700 and EDAX TEAM analysis software</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ImageJ software</td>
			<td>National Institutes of Health</td>
			<td>N/A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Immortalized human bronchial epithelial cells</td>
			<td>American Type Culture Collection</td>
			<td>CRL-9609</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Isotemp freezer</td>
			<td>Fisher Scientific&#160;</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Methanol, 99%</td>
			<td>Fisher Chemical</td>
			<td>67-56-1</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Parafilm sealing film</td>
			<td>The Lab Depot</td>
			<td>HS234526A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Penicillin/Steptomycin</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>15140-122</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sorvall Legend X1R Centrifuge&#160;</td>
			<td>Thermo Scientific</td>
			<td>75004220</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sorvall T 6000B</td>
			<td>DU PONT</td>
			<td>&#160;T6000B</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Trypan blue, 0.4% solution in PBS</td>
			<td>MP Biomedicals, LLC</td>
			<td>1691049</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Vacuum Chamber</td>
			<td>Belart</td>
			<td>999320237</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Zinc Nitrate Hexahydrate, 98% extra pure</td>
			<td>Acros Organic</td>
			<td>101-96-18-9</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

electric cell-substrate sensing for real-time evaluation of metal-organic framework toxicological profiles

금속-유기 프레임워크(MOF)는 유기 용매에서 금속 이온과 유기 링커의 배위를 통해 형성된 하이브리드입니다. 생물 의학 및 산업 응용 분야에서 MOF의 구현은 안전성에 대한 우려를 불러일으켰습니다. 본원에서, 선택된 MOF, 제올라이트 이미다졸 프레임워크의 프로파일을 인간 폐 상피 세포에의 노출시에 평가하였다. 평가를 위한 플랫폼은 실시간 기술(즉, 전기 전지-기판 임피던스 감지[ECIS])이었습니다. 이 연구는 노출된 세포에 대한 선택된 MOF의 유해한 영향 중 일부를 식별하고 논의합니다. 또한, 이 연구는 포괄적인 세포 평가를 위해 다른 생화학적 분석에 비해 실시간 방법을 사용하는 이점을 보여줍니다. 이 연구는 관찰된 세포 행동의 변화가 다양한 물리화학적 특성의 MOF에 노출될 때 유발될 수 있는 독성과 사용되는 프레임워크의 용량을 암시할 수 있다고 결론지었습니다. 세포 행동의 변화를 이해함으로써 물리화학적 특성을 구체적으로 조정하여 생물 의학 응용 분야에 사용되는 MOF의 안전한 설계 전략을 개선할 수 있는 능력을 예측할 수 있습니다.

Metal-organic frameworks (MOFs) are hybrids formed through the combination of metal ions and organic linkers1,2 in organic solvents. Due to the variety of such combinations, MOFs possess structural diversity3, tunable porosity, high thermal stability, and high surface areas4,5. Such characteristics make them attractive candidates in a variety of applications, from gas storage6,7 to catalysis8,9, and from contrast agents10,11 to drug delivery units12,13. However, the implementation of MOFs into such applications has raised concerns relative to their safety to both the users and the environment. Preliminary studies have shown, for instance, that cellular function and growth change upon the exposure of cells to metal ions or linkers used for MOF synthesis1,14,15. For instance, Tamames-Tabar et al. demonstrated that ZIF-8 MOF, a Zn-based MOF, was leading to more cellular changes in a human cervical cancer cell line (HeLa) and a mouse macrophage cell line (J774) relative to Zr-based and Fe-based MOFs. Such effects were&#160;presumably due to the metal component of ZIF-8 (i.e., Zn), which could potentially induce cell apoptosis upon framework disintegration and Zn ion release1. Similarly, Gandara-Loe et al. demonstrated that HKUST-1, a Cu-based MOF, caused the highest reduction in mouse retinoblastoma cell viability when used at concentrations of 10 &#181;g/mL or greater. This was presumably due to the Cu metal ion incorporated during the synthesis of this framework, which, once released, could induce oxidative stress in the exposed cells15.
Moreover, analysis showed that the exposure&#160;to MOFs with different physicochemical characteristics could lead to varying responses of exposed cells. For instance, Wagner et al. demonstrated that ZIF-8 and MIL-160 (an Al-based framework), used in the exposure of an immortalized human bronchial epithelial cell, led to cellular responses dependent on frameworks&#39; physicochemical properties, namely hydrophobicity, size, and structural characteristics16. Complementarily, Chen et al. demonstrated that a concentration of 160 &#181;g/mL MIL-100(Fe) exposed to human normal liver cells (HL-7702) caused the largest loss in cellular viability, presumably due to the metal component of this specific framework (i.e., Fe17).
While these studies categorize MOFs&#39; deleterious effects on cellular systems based on their physicochemical characteristics and exposure concentrations, thus raising potential concerns with framework implementation, especially in biomedical fields, most of these evaluations are based on single time point colorimetric assays. For instance, it was shown that when (3-(4,5-dimethylthiazol-2-yl)-2,5-diphenyltetrazolium bromide) tetrazolium (MTT) and water-soluble tetrazolium salt (WST-1) assays were used, these biochemical reagents could lead to false positives upon&#160;their&#160;interactions with the particles that the cells were also exposed to18. The tetrazolium salt and neutral red reagents were&#160;shown to possess a high adsorption or binding affinity onto the surfaces of the particles, resulting to agent signal interference19. Moreover, for other types of assays, such as flow cytometry, which was previously shown to be used for assessing changes in cells exposed to MOFs20,21, it was shown that major issues have to be circumvented if a viable analysis of particles&#39; deleterious effects is to be considered. In particular, detection ranges of the particles&#39; sizes, especially in mixed populations like the ones offered by MOFs or references of the particles used for calibration before cellular changes, have to be addressed22. It was also shown that the dye used during cell labeling for such cytometry assays could also interfere with the nanoparticles that the cells were exposed to23.
The goal of this study was to use a real-time, high-throughput evaluation assay to assess changes in cell behavior upon exposure to a select MOF. Real-time evaluations can help provide insights into time-dependent effects, as related to the windows of exposures16. Further, they provide information on changes in cell-substrate interactions, cell morphology, and cell-cell interactions, as well as how such changes depend on the physicochemical properties of the materials of interest and exposure times24,25 respectively.
To demonstrate the validity and applicability of the proposed approach, human bronchial epithelial (BEAS-2B) cells, ZIF-8 (a hydrophobic framework of zeolitic imidazolate16), and electric cell-substrate impedance sensing (ECIS) were used. BEAS-2B cells represent a model for lung exposure26 and have been previously used to evaluate changes upon the exposure of cells to nanoclays and their thermally degraded byproducts26,27,28,&#160;as well as assess the toxicity of nanomaterials, such as single-walled carbon nanotubes (SWCNTs)18. Furthermore, such cells have been used for more than 30 years as a model for pulmonary epithelial function29. ZIF-8 was chosen due to its wide implementation&#160;in catalysis30 and as contrast agents31 for bioimaging and drug delivery32, and thus for the extended potential for lung exposure during such applications. Lastly, ECIS, the noninvasive, real-time technique, was previously used to evaluate changes in cell adherence, proliferation, motility, and morphology16,26 as a result of a variety of interactions between analytes (both materials and drugs) and exposed cells in real-time16,18,28. ECIS uses an alternating current (AC) to measure the impedance of cells immobilized on gold electrodes, with the impedance changes giving insights into changes in resistance and capacitance at the&#160;cell-gold substrate interface, barrier function as induced by cell-cell interactions, and over-cell layer coverage of such gold electrodes33,34. Using ECIS allows quantitative measurements at a nanoscale resolution in a noninvasive, real-time manner26,34.
This study assesses and compares the simplicity and ease of evaluation of MOF-induced changes in cellular behavior in real-time with single-point assay evaluations. Such a study could be further extrapolated for evaluating cell profiles in response to exposure to other particles of interest, thus allowing for safe-by-design particle testing and subsequent helping with&#160;implementation. Moreover, this study could complement genetic and cellular assays that are single-point evaluations. This could lead to a more informed analysis of the deleterious effects of particles on the cellular population and could be used for screening such particles&#39; toxicity in a high-throughput manner16,35,36.

저자 스포트라이트: Advances in Evaluating Human Lung Epithelial Cells' Response to Metal-Organic Frameworks (금속-유기 프레임워크에 대한 인간 폐 상피 세포의 반응 평가의 발전) 

금속-유기 프레임워크 독성 프로파일의 실시간 평가를 위한 전기 전지-기질 감지

My research aims to evaluate changes in human lung epithelial cells'behavior upon exposure to metal organic framework, hybrids formed by combining metal ions in organic linkers in organic solvents. This research demonstrated that the physical and chemical composition of metal organic frameworks, as well as their cellular exposure ratios, affects the behavior of human lung epithelial cells in a time and dose-dependent manner. This can be recorded in a high throughput in real time fashion.Our research helps to evaluate, understand the mechanisms of toxicity of metal organic frameworks upon exposure to cellular systems. The current method allows continuous cell monitoring in a real time and in high throughput manner. Additionally, this method does not rely on any external reagents, and thus it reduces any possible interference they could have with the frameworks used for exposure.Our laboratory will continue to focus on understanding and evaluating the mechanisms of toxicity associated with nanomaterials exposures, as well as using such information to synthesize new and safe systems that could be implemented in biomedical applications at minimum risks to the user or the environment.

이 연구는 일반적인 시험관 내 모델 세포주39 (BEAS-2B)를 사용하여 실험실에서 합성된 MOF에 노출되었을 때 세포 행동의 변화를 평가하기 위한 ECIS의 타당성과 적용 가능성을 입증하는 것을 목표로 했습니다. 이러한 변화 평가는 종래의 비색 분석을 통한 분석에 의해 보완되었다.
프레임워크의 물리화학적 특성은 사용된 방법의 재현성, 얻은 결과의 타당...

Watch this Scientific Journal Video about Advances in Evaluating Human Lung Epithelial Cells' Response to Metal-Organic Frameworks at JoVE.com

다음 연구는 실시간 고처리량 스크리닝 기술인 전기 전지-기질 임피던스 감지(ECIS)를 활용하여 선택된 금속-유기 프레임워크의 독성학적 프로파일을 평가합니다.

Metal-organic frameworks (MOFs) are hybrids formed through the coordination of metal ions and organic linkers in organic solvents. The implementation of ...

저의 연구는 유기 용매의 유기 링커에서 금속 이온을 결합하여 형성된 하이브리드인 금속 유기 프레임워크에 노출되었을 때 인간 폐 상피 세포의 행동 변화를 평가하는 것을 목표로 합니다. 이 연구는 금속 유기 골격의 물리적, 화학적 조성과 세포 노출 비율이 시간 및 용량 의존적 방식으로 인간 폐 상피 세포의 행동에 영향을 미친다는 것을 입증했습니다. 이를 실시간으로 높은 처리량으로 기록할 수 있습니다.우리의 연구는 세포 시스템에 노출되었을 때 금속 유기 골격의 독성 메커니즘을 평가하고 이해하는 데 도움이 됩니다. 현재의 방법은 실시간으로 높은 처리량 방식으로 지속적인 셀 모니터링을 가능하게 합니다. 또한 이 방법은 외부 시약에 의존하지 않으므로 노출에 사용되는 프레임워크에 발생할 수 있는 간섭을 줄입니다.우리 실험실은 나노 물질 노출과 관련된 독성 메커니즘을 이해하고 평가하는 데 계속 초점을 맞출 뿐만 아니라 이러한 정보를 사용하여 사용자 또는 환경에 대한 위험을 최소화하면서 생물 의학 응용 분야에서 구현할 수 있는 새롭고 안전한 시스템을 합성하는 데 계속 집중할 것입니다.

금속-유기 프레임워크 독성 프로파일의 실시간 평가를 위한 전기 전지-기질 감지

Abstract