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Qui, presentiamo i protocolli per lavorare con Limosilactobacillus reuteri DSM20016, dettagliando la crescita, la trasformazione plasmidica, la PCR delle colonie, la misurazione della proteina reporter fluorescente e la mini-preparazione limitata del plasmide, nonché problemi comuni e risoluzione dei problemi. Questi protocolli consentono la misurazione delle proteine reporter in DSM20016, o la conferma tramite colony PCR se nessun reporter è coinvolto.
Lactobacillus erano un genere incredibilmente grande e diversificato di batteri comprendente 261 specie, molte delle quali erano ceppi commensali con il potenziale per l'uso come telaio per sforzi biologici sintetici all'interno del tratto gastrointestinale. L'ampia variazione fenotipica e genotipica osservata all'interno del genere ha portato a una recente riclassificazione e all'introduzione di 23 nuovi generi.
A causa dell'ampiezza delle variazioni all'interno dei vecchi generi, i protocolli dimostrati in un membro potrebbero non funzionare come pubblicizzato con altri membri. La mancanza di informazioni centralizzate su come manipolare esattamente ceppi specifici ha portato a una serie di approcci ad hoc , spesso adattati da altre famiglie batteriche. Ciò può complicare le cose per i ricercatori che iniziano sul campo, che potrebbero non sapere quali informazioni si applicano o meno al ceppo scelto.
In questo articolo, miriamo a centralizzare una serie di protocolli con dimostrato successo, in particolare nella designazione del ceppo F275 di Limosilactobacillus reuteri (altri numeri di raccolta: DSM20016, ATCC23272, CIP109823), insieme a consigli per la risoluzione dei problemi e problemi comuni che si possono incontrare. Questi protocolli dovrebbero consentire a un ricercatore con poca o nessuna esperienza di lavoro con L. reuteri DSM20016 di trasformare un plasmide, confermare la trasformazione e misurare il feedback del sistema in un lettore di piastre tramite una proteina reporter.
Il genere Lactobacillus è stato storicamente classificato come gram-positivo, a forma di bastoncello, non sporigeno, anaerobi facoltativi o microaerofili che scompongono gli zuccheri per produrre principalmente acido lattico1. Questi criteri sciolti hanno portato Lactobacillus ad essere, fenotipicamente e genotipicamente, un genere estremamente diversificato. Questa ampia categorizzazione ha portato alla riclassificazione del genere, introducendo 23 nuovi generi nel 20202.
Il vecchio e più ampio genere comprendeva le principali specie commensali e probiotiche generalmente con....
1. Preparazione di L. reuteri DSM20016 cellule elettrocompetenti
NOTA: Questo si basa su un protocollo di Berthier et al.17, con velocità di centrifugazione informate da Rattanachaikunsopon et al.18.
Efficienza di trasformazione
L. reuteri non richiede un plasmide dcm-/dam- non metilato, come osservato per altre Lactobacillaceae19,20 (vedere Figura 1). L'elettroporazione di L. reuteri DSM20016 con 10 μL del pTRKH3_mCherry2 plasmidico da 8,5 kb (origine della replicazione di pAMβ1 theta) dovrebbe fornire efficienze di trasformazione di circa 80 unità formanti .......
Il passo più critico per la trasformazione di L. reuteri DSM20016 è la generazione di condizioni di crescita anaerobica dopo che le trasformazioni sono state placcate; le colonie acquisite in condizioni aerobiche sono solo molto occasionali e generalmente non riescono a crescere quando inoculate nel brodo MRS. Placcare l'intero volume di recupero dovrebbe anche essere praticato per massimizzare la probabilità di crescita della colonia. Anche con queste due fasi critiche, l'efficienza della trasformazione è a.......
Apprezziamo molto i preziosi consigli forniti dal Prof. J.P. van Pijkeren (Università del Wisconsin-Madison), la cui guida sul lavoro con L. reuteri ATCC PTA 6475 ha fornito una base per i metodi qui descritti.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
1 kb Plus DNA Ladder | NEB | N3200L | |
1mL Spectrophotometer cuvettes | Thomas Scientific | 1145J12 | |
Agarose | BioShop | AGR001 | |
Allegra X-15R (refrigerated centrifuge) | Beckman Allegra | N/A | No longer in production |
AnaeroGen 2.5 L Sachet | Thermo Scientific | OXAN0025A | |
BTX, ECM 399 electroporation system | VWR | 58017-984 | |
Centrifuge tubes (50 mL) | FroggaBio | TB50-500 | |
DNA gel x6 loading dye | NEB | B7024S | |
Electroporation cuvette | Fisherbrand | FB101 | |
Erythromycin | Millipore Sigma | E5389-5G | |
Gel electroporation bath/dock | VWR | 76314-748 | |
Glycerol | BioShop | GLY001 | |
Limosilactobacillus reuteri | Leibniz Institute DSMZ | DSM20016 | Strain designation F275 |
Lysozyme | BioShop | LYS702.5 | |
Microcentrifuge tubes (1.7 mL) | FroggaBio | LMCT1.7B | |
Miniprep kit (Qiagen) | Qiagen | 27106 | slpGFP replaced with constitutive, codon optimised, mCherry2 reporter protein |
MRS Broth (Dehydrated) | Thermo Scientific | CM0359B | |
Mutanolysin | Millipore Sigma | M9901-5KU | |
NaOH | Millipore Sigma | 1064691000 | |
P100 Pipette | Eppendorf | 3123000047 | |
P1000 Pipette | Eppendorf | 3123000063 | |
P2.5 Pipette | Eppendorf | 3123000012 | |
P20 Pipette | Eppendorf | 3123000039 | |
P200 Pipette | Eppendorf | 3123000055 | |
PCR tubes | FroggaBio | STF-A120S | |
Personal benchtop microcentrifuge | Genlantis | E200100 | |
Petri dishes | VWR | 25384-088 | |
PTC-150 Thermal Cycler | MJ Research | N/A | No longer in production |
pTRKH3_slpGFP (modified) | Addgene | 27168 | |
SPECTRONIC 200 Spectrophotometer | Thermo Scientific | 840-281700 | |
Storage microplate | Fisher Scientific | 14-222-225 | |
Sucrose | BioShop | SUC507 | |
TAE Buffer 50x | Thermo Scientific | B49 | |
Vortex | VWR | 58816-121 | No longer in production |
VWR 1500E incubator | VWR | N/A | No longer in production |
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