JoVE Logo
Faculty Resource Center

Sign In

Summary

Abstract

Introduction

Protocol

Representative Results

Discussion

Acknowledgements

Materials

References

Biology

Helmonteringsbilleder til visualisering og kvantificering af perifer linsestruktur, cellemorfologi og organisation

Published: January 19th, 2024

DOI:

10.3791/66017

1Department of Biological Sciences, University of Delaware, 2School of Optometry and Vision Science Program, Indiana University, 3Department of Biomedical Engineering, University of Delaware
* These authors contributed equally

De nuværende protokoller beskriver ny helmonteret billeddannelse til visualisering af perifere strukturer i den okulære linse med metoder til billedkvantificering. Disse protokoller kan bruges i undersøgelser til bedre at forstå forholdet mellem linsemikroskalastrukturer og linseudvikling/funktion.

Den okulære linse er et gennemsigtigt fleksibelt væv, der ændrer sin form for at fokusere lys fra forskellige afstande på nethinden. Bortset fra en kældermembran, der omgiver organet, kaldet kapslen, er linsen helt cellulær bestående af et monolag af epitelceller på den forreste halvkugle og en bulkmasse af linsefiberceller. Gennem hele livet spredes epitelceller i den spirende zone ved linseækvator, og ækvatoriale epitelceller migrerer, forlænger og differentierer sig til nydannede fiberceller. Ækvatoriale epitelceller ændrer væsentligt morfologi fra tilfældigt pakkede brostensformede celler til justerede sekskantformede celler, der danner meridionalrækker. Nydannede linsefiberceller bevarer den sekskantede celleform og forlænges mod de forreste og bageste poler og danner en ny skal af celler, der er overlejret på tidligere generationer af fibre. Lidt er kendt om de mekanismer, der driver den bemærkelsesværdige morfogenese af linseepitelceller til fiberceller. For bedre at forstå linsens struktur, udvikling og funktion er der udviklet nye billeddannelsesprotokoller til afbildning af perifere strukturer ved hjælp af hele monteringer af okulære linser. Her vises metoder til kvantificering af kapseltykkelse, epitelcelleareal, cellekerneområde og form, meridional rækkecellerækkefølge og pakning og fibercellebredder. Disse målinger er afgørende for at belyse de cellulære ændringer, der opstår under livslang linsevækst og forstå de ændringer, der opstår med alder eller patologi.

Den okulære linse er et fleksibelt, gennemsigtigt væv placeret i den forreste del af øjet, der fungerer til finfokus lys på nethinden. Linsens evne til at fungere kan delvis tilskrives dens indviklede arkitektur og organisation 1,2,3,4,5,6. Omkring linsevævet er kapslen, en kældermembran, der er afgørende for at opretholde linsestruktur og biomekaniske egenskaber 7,8,9. Linsen sel....

Log in or to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Mus er anbragt i University of Delaware dyrefacilitet, opretholdt i et patogenfrit miljø. Alle dyreforsøg, herunder eutanasi ved CO2 indånding, blev udført i overensstemmelse med godkendte dyreprotokoller af University of Delaware Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC).

1. Forberedelse og billedbehandling af hele objektivmonteringen

  1. Fastgørelse af objektiver til helmonteret billeddannelse
    1. Efter aktiv dødshjælp, enukleatøjne og d.......

Log in or to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Forreste linsekapsel, epitelcelleområde og nukleart område
For at analysere linsekapseltykkelsen farvede vi linsekapsler i enten levende eller faste linser med WGA. Vi identificerede linseepitelceller ved at mærke membraner med tdTomato i levende linser (figur 2A) eller via rhodamin-phalloidinfarvning for F-actin ved cellemembranerne i faste linser (figur 2B). I en ortogonal (XZ) projektion giver farvning til WGA og tdTomato/rhodamin-phall.......

Log in or to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

De beskrevne protokoller muliggør visualisering med høj rumlig opløsning af perifere linsestrukturer og celler i linsens forreste og ækvatoriale regioner. I denne undersøgelse blev der vist metoder til visualisering af objektivets perifere strukturer ved hjælp af intakte (levende eller faste) linser, hvor den overordnede 3D-linsearkitektur bevares. Derudover blev der leveret enkle metoder til morfometrisk kvantitativ analyse ved hjælp af offentligt tilgængelig FIJI ImageJ-software. Hele monteringsvisualiserings- .......

Log in or to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Dette arbejde blev støttet af National Eye Institute Grant R01 EY032056 til CC og R01 EY017724 til VMF samt National Institute of General Medical Sciences under bevillingsnummer P20GM139760. STI blev støttet af NIH-NIGMS T32-GM133395 som en del af Chemistry-Biology Interface predoctoral træningsprogram og af en University of Delaware Graduate Scholars Award.

....

Log in or to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

NameCompanyCatalog NumberComments
3 mm Biopsy PunchAcuderm IncNC9084780
AgaroseApex BioResearch Products20-102GP
Antimycotic/AntibioticCytivaSV30079.01
Bovine Serum Albumin (Fraction V)Prometheus25-529
Delicate task wipesKimwipe
Glass bottomed dish (Fluorodish)World Precision InternationalFD35-100
Hoescht 33342Biotium40046
Laser scanning confocal Microscope 880Zeiss
MatTek Imaging DishMatTek Life SciencesP35G-1.5-14
Paraformaldehyde Electron Microscopy Sciences100503-917
PBSGenClone25-507B
Phenol red-free medium 199Gibco11043023
Rhodamine-PhalloidinThermo Fisher00027
Triton X100Sigma-Aldrich11332481001
WGA-640BiotiumCF 640R

  1. Gokhin, D. S., et al. Tmod1 and CP49 synergize to control the fiber cell geometry, transparency, and mechanical stiffness of the mouse lens. PLoS One. 7 (11), e48734 (2012).
  2. Cheng, C., et al. Age-related changes in eye lens biomechanics, morphology, refractive index and transparency. Aging (Albany NY). 11 (24), 12497-12531 (2019).
  3. Cheng, C., et al. Tropomodulin 1 regulation of actin is required for the formation of large paddle protrusions between mature lens fiber cells. Invest Ophthalmol Vis Sci. 57 (10), 4084-4099 (2016).
  4. Parreno, J., Cheng, C., Nowak, R. B., Fowler, V. M. The effects of mechanical strain on mouse eye lens capsule and cellular microstructure. Mol Biol Cell. 29 (16), 1963-1974 (2018).
  5. Sindhu Kumari, S., et al. Role of Aquaporin 0 in lens biomechanics. Biochem Biophys Res Commun. 462 (4), 339-345 (2015).
  6. Martin, J. B., et al. Arvcf dependent adherens junction stability is required to prevent age-related cortical cataracts. Front Cell Dev Biol. 10, 840129 (2022).
  7. Danysh, B. P., Duncan, M. K. The lens capsule. Exp Eye Res. 88 (2), 151-164 (2009).
  8. Mekonnen, T., et al. The lens capsule significantly affects the viscoelastic properties of the lens as quantified by optical coherence elastography. Front Bioeng Biotechnol. 11, 1134086 (2023).
  9. Fincham, E. F. The function of the lens capsule in the accommodation of the eye. Trans Optical Society. 30 (3), 101 (1929).
  10. Cheng, C., Nowak, R. B., Fowler, V. M. The lens actin filament cytoskeleton: Diverse structures for complex functions. Exp Eye Res. 156, 58-71 (2017).
  11. Bassnett, S., Sikic, H. The lens growth process. Prog Retin Eye Res. 60, 181-200 (2017).
  12. Sikic, H., Shi, Y., Lubura, S., Bassnett, S. A full lifespan model of vertebrate lens growth. R Soc Open Sci. 4 (1), 160695 (2017).
  13. Cheng, C., Ansari, M. M., Cooper, J. A., Gong, X. EphA2 and Src regulate equatorial cell morphogenesis during lens development. Development. 140 (20), 4237-4245 (2013).
  14. Sugiyama, Y., Akimoto, K., Robinson, M. L., Ohno, S., Quinlan, R. A. A cell polarity protein aPKClambda is required for eye lens formation and growth. Dev Biol. 336 (2), 246-256 (2009).
  15. Zampighi, G. A., Eskandari, S., Kreman, M. Epithelial organization of the mammalian lens. Exp Eye Res. 71 (4), 415-435 (2000).
  16. Lovicu, F. J., Robinson, M. L. . Development of the Ocular Lens. , (2011).
  17. Kuszak, J. R., Zoltoski, R. K., Sivertson, C. Fibre cell organization in crystalline lenses. Exp Eye Res. 78 (3), 673-687 (2004).
  18. Cvekl, A., Ashery-Padan, R. The cellular and molecular mechanisms of vertebrate lens development. Development. 141 (23), 4432-4447 (2014).
  19. Vu, M. P., Cheng, C. Preparation and immunofluorescence staining of bundles and single fiber cells from the cortex and nucleus of the eye lens. J Vis Exp. (196), e65638 (2023).
  20. Islam, S. T., Cheng, C., Parreno, J., Fowler, V. M. Nonmuscle myosin IIA regulates the precise alignment of hexagonal eye lens epithelial cells during fiber cell formation and differentiation. Invest Ophthalmol Vis Sci. 64 (4), 20 (2023).
  21. Patel, S. D., Aryal, S., Mennetti, L. P., Parreno, J. Whole mount staining of lenses for visualization of lens epithelial cell proteins. MethodsX. 8, 101376 (2021).
  22. Parreno, J., et al. Methodologies to unlock the molecular expression and cellular structure of ocular lens epithelial cells. Front Cell Dev Biol. 10, 983178 (2022).
  23. Muzumdar, M. D., Tasic, B., Miyamichi, K., Li, L., Luo, L. A global double-fluorescent Cre reporter mouse. Genesis. 45 (9), 593-605 (2007).
  24. Zhang, Y., et al. Mouse models of MYH9-related disease: mutations in nonmuscle myosin II-A. Blood. 119 (1), 238-250 (2012).
  25. Cheng, C., Gokhin, D. S., Nowak, R. B., Fowler, V. M. Sequential application of glass coverslips to assess the compressive stiffness of the mouse lens: Strain and morphometric analyses. J Vis Exp. (111), e53986 (2016).
  26. Riedl, J., et al. Lifeact: a versatile marker to visualize F-actin. Nat Methods. 5 (7), 605-607 (2008).
  27. Lukinavicius, G., et al. Fluorogenic probes for live-cell imaging of the cytoskeleton. Nat Methods. 11 (7), 731-733 (2014).

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Research

Education

ABOUT JoVE

Copyright © 2024 MyJoVE Corporation. All rights reserved