JoVE Logo
Faculty Resource Center

Sign In

Summary

Abstract

Introduction

Protocol

Representative Results

Discussion

Acknowledgements

Materials

References

Biology

Beeldvorming van de hele montage om de perifere lensstructuur, celmorfologie en organisatie te visualiseren en te kwantificeren

Published: January 19th, 2024

DOI:

10.3791/66017

1Department of Biological Sciences, University of Delaware, 2School of Optometry and Vision Science Program, Indiana University, 3Department of Biomedical Engineering, University of Delaware
* These authors contributed equally

De huidige protocollen beschrijven nieuwe beeldvorming van de hele montering voor de visualisatie van perifere structuren in de oculaire lens met methoden voor beeldkwantificering. Deze protocollen kunnen in onderzoeken worden gebruikt om de relatie tussen lensstructuren op microschaal en de ontwikkeling/functie van lenzen beter te begrijpen.

De oculaire lens is een transparant flexibel weefsel dat van vorm verandert om licht van verschillende afstanden op het netvlies te focussen. Afgezien van een basaalmembraan rond het orgaan, de capsule genaamd, is de lens volledig cellulair en bestaat de lens uit een monolaag van epitheelcellen op de voorste hemisfeer en een bulkmassa lensvezelcellen. Gedurende het hele leven vermenigvuldigen epitheelcellen zich in de kiemzone bij de lensevenaar, en equatoriale epitheelcellen migreren, verlengen en differentiëren tot nieuw gevormde vezelcellen. Equatoriale epitheelcellen veranderen de morfologie aanzienlijk van willekeurig opeengepakte geplaveide cellen in uitgelijnde zeshoekige cellen die meridionale rijen vormen. Nieuw gevormde lensvezelcellen behouden de zeshoekige celvorm en strekken zich uit naar de voorste en achterste polen, waardoor een nieuwe schil van cellen wordt gevormd die over eerdere generaties vezels wordt gelegd. Er is weinig bekend over de mechanismen die de opmerkelijke morfogenese van lensepitheelcellen naar vezelcellen aansturen. Om de structuur, ontwikkeling en functie van lenzen beter te begrijpen, zijn nieuwe beeldvormingsprotocollen ontwikkeld om perifere structuren in beeld te brengen met behulp van hele vattingen van oculaire lenzen. Hier worden methoden getoond om de dikte van de capsule, het epitheelceloppervlak, het celkerngebied en de vorm, de volgorde en verpakking van meridionale rijcellen en de breedte van de vezelcellen te kwantificeren. Deze metingen zijn essentieel voor het ophelderen van de cellulaire veranderingen die optreden tijdens levenslange lensgroei en het begrijpen van de veranderingen die optreden met leeftijd of pathologie.

De ooglens is een flexibel, transparant weefsel aan de voorkant van het oog dat functioneert om licht op het netvlies te focussen. Het vermogen van de lens om te functioneren kan gedeeltelijk worden toegeschreven aan de ingewikkelde architectuur en organisatie 1,2,3,4,5,6. Rondom het lensweefsel bevindt zich het kapsel, een basaalmembraan dat essentieel is voor het behoud van de lensstructuur en biomechanische eigenschappen 7,8,9

Log in or to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Muizen zijn gehuisvest in de dierenfaciliteit van de Universiteit van Delaware, gehouden in een pathogeenvrije omgeving. Alle dierproeven, inclusief euthanasie door CO2 -inhalatie, werden uitgevoerd in overeenstemming met goedgekeurde dierprotocollen door de University of Delaware Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC).

1. Voorbereiding en beeldvorming van de gehele lensvatting

  1. Fixatie van lenzen voor beeldvorming op de hele vatting
    1. Na .......

Log in or to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Voorste lenskapsel, epitheelcelgebied en nucleair gebied
Om de dikte van het lenskapsel te analyseren, hebben we lenscapsules, in levende of vaste lenzen, gekleurd met WGA. We identificeerden lensepitheelcellen door membranen te labelen met tdTomato in levende lenzen (Figuur 2A), of via rhodamine-phalloidinekleuring voor F-actine op de celmembranen in vaste lenzen (Figuur 2B). In een orthogonale (XZ) projectie stelt kleuring voor WGA en tdTom.......

Log in or to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

De beschreven protocollen maken visualisatie met hoge ruimtelijke resolutie mogelijk van perifere lensstructuren en cellen in de voorste en equatoriale regio's van de lens. In deze studie werden methoden getoond voor de visualisatie van perifere lensstructuren met behulp van intacte (onder spanning staande of vaste) lenzen waarbij de algehele 3D-lensarchitectuur behouden blijft. Daarnaast werden eenvoudige methoden voor morfometrische kwantitatieve analyse met behulp van openbaar beschikbare FIJI ImageJ-software aangebod.......

Log in or to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Dit werk werd ondersteund door de National Eye Institute Grant R01 EY032056 aan CC en R01 EY017724 aan VMF, evenals het National Institute of General Medical Sciences onder subsidienummer P20GM139760. STI werd ondersteund door NIH-NIGMS T32-GM133395 als onderdeel van het predoctorale opleidingsprogramma Chemistry-Biology Interface, en door een University of Delaware Graduate Scholars Award.

....

Log in or to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

NameCompanyCatalog NumberComments
3 mm Biopsy PunchAcuderm IncNC9084780
AgaroseApex BioResearch Products20-102GP
Antimycotic/AntibioticCytivaSV30079.01
Bovine Serum Albumin (Fraction V)Prometheus25-529
Delicate task wipesKimwipe
Glass bottomed dish (Fluorodish)World Precision InternationalFD35-100
Hoescht 33342Biotium40046
Laser scanning confocal Microscope 880Zeiss
MatTek Imaging DishMatTek Life SciencesP35G-1.5-14
Paraformaldehyde Electron Microscopy Sciences100503-917
PBSGenClone25-507B
Phenol red-free medium 199Gibco11043023
Rhodamine-PhalloidinThermo Fisher00027
Triton X100Sigma-Aldrich11332481001
WGA-640BiotiumCF 640R

  1. Gokhin, D. S., et al. Tmod1 and CP49 synergize to control the fiber cell geometry, transparency, and mechanical stiffness of the mouse lens. PLoS One. 7 (11), e48734 (2012).
  2. Cheng, C., et al. Age-related changes in eye lens biomechanics, morphology, refractive index and transparency. Aging (Albany NY). 11 (24), 12497-12531 (2019).
  3. Cheng, C., et al. Tropomodulin 1 regulation of actin is required for the formation of large paddle protrusions between mature lens fiber cells. Invest Ophthalmol Vis Sci. 57 (10), 4084-4099 (2016).
  4. Parreno, J., Cheng, C., Nowak, R. B., Fowler, V. M. The effects of mechanical strain on mouse eye lens capsule and cellular microstructure. Mol Biol Cell. 29 (16), 1963-1974 (2018).
  5. Sindhu Kumari, S., et al. Role of Aquaporin 0 in lens biomechanics. Biochem Biophys Res Commun. 462 (4), 339-345 (2015).
  6. Martin, J. B., et al. Arvcf dependent adherens junction stability is required to prevent age-related cortical cataracts. Front Cell Dev Biol. 10, 840129 (2022).
  7. Danysh, B. P., Duncan, M. K. The lens capsule. Exp Eye Res. 88 (2), 151-164 (2009).
  8. Mekonnen, T., et al. The lens capsule significantly affects the viscoelastic properties of the lens as quantified by optical coherence elastography. Front Bioeng Biotechnol. 11, 1134086 (2023).
  9. Fincham, E. F. The function of the lens capsule in the accommodation of the eye. Trans Optical Society. 30 (3), 101 (1929).
  10. Cheng, C., Nowak, R. B., Fowler, V. M. The lens actin filament cytoskeleton: Diverse structures for complex functions. Exp Eye Res. 156, 58-71 (2017).
  11. Bassnett, S., Sikic, H. The lens growth process. Prog Retin Eye Res. 60, 181-200 (2017).
  12. Sikic, H., Shi, Y., Lubura, S., Bassnett, S. A full lifespan model of vertebrate lens growth. R Soc Open Sci. 4 (1), 160695 (2017).
  13. Cheng, C., Ansari, M. M., Cooper, J. A., Gong, X. EphA2 and Src regulate equatorial cell morphogenesis during lens development. Development. 140 (20), 4237-4245 (2013).
  14. Sugiyama, Y., Akimoto, K., Robinson, M. L., Ohno, S., Quinlan, R. A. A cell polarity protein aPKClambda is required for eye lens formation and growth. Dev Biol. 336 (2), 246-256 (2009).
  15. Zampighi, G. A., Eskandari, S., Kreman, M. Epithelial organization of the mammalian lens. Exp Eye Res. 71 (4), 415-435 (2000).
  16. Lovicu, F. J., Robinson, M. L. . Development of the Ocular Lens. , (2011).
  17. Kuszak, J. R., Zoltoski, R. K., Sivertson, C. Fibre cell organization in crystalline lenses. Exp Eye Res. 78 (3), 673-687 (2004).
  18. Cvekl, A., Ashery-Padan, R. The cellular and molecular mechanisms of vertebrate lens development. Development. 141 (23), 4432-4447 (2014).
  19. Vu, M. P., Cheng, C. Preparation and immunofluorescence staining of bundles and single fiber cells from the cortex and nucleus of the eye lens. J Vis Exp. (196), e65638 (2023).
  20. Islam, S. T., Cheng, C., Parreno, J., Fowler, V. M. Nonmuscle myosin IIA regulates the precise alignment of hexagonal eye lens epithelial cells during fiber cell formation and differentiation. Invest Ophthalmol Vis Sci. 64 (4), 20 (2023).
  21. Patel, S. D., Aryal, S., Mennetti, L. P., Parreno, J. Whole mount staining of lenses for visualization of lens epithelial cell proteins. MethodsX. 8, 101376 (2021).
  22. Parreno, J., et al. Methodologies to unlock the molecular expression and cellular structure of ocular lens epithelial cells. Front Cell Dev Biol. 10, 983178 (2022).
  23. Muzumdar, M. D., Tasic, B., Miyamichi, K., Li, L., Luo, L. A global double-fluorescent Cre reporter mouse. Genesis. 45 (9), 593-605 (2007).
  24. Zhang, Y., et al. Mouse models of MYH9-related disease: mutations in nonmuscle myosin II-A. Blood. 119 (1), 238-250 (2012).
  25. Cheng, C., Gokhin, D. S., Nowak, R. B., Fowler, V. M. Sequential application of glass coverslips to assess the compressive stiffness of the mouse lens: Strain and morphometric analyses. J Vis Exp. (111), e53986 (2016).
  26. Riedl, J., et al. Lifeact: a versatile marker to visualize F-actin. Nat Methods. 5 (7), 605-607 (2008).
  27. Lukinavicius, G., et al. Fluorogenic probes for live-cell imaging of the cytoskeleton. Nat Methods. 11 (7), 731-733 (2014).

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Research

Education

ABOUT JoVE

Copyright © 2024 MyJoVE Corporation. All rights reserved