JoVE Logo
Faculty Resource Center

Sign In

Summary

Abstract

Introduction

Protocol

Representative Results

Discussion

Acknowledgements

Materials

References

Biology

Helmonteringsavbildning for å visualisere og kvantifisere perifer linsestruktur, cellemorfologi og organisasjon

Published: January 19th, 2024

DOI:

10.3791/66017

1Department of Biological Sciences, University of Delaware, 2School of Optometry and Vision Science Program, Indiana University, 3Department of Biomedical Engineering, University of Delaware
* These authors contributed equally

De foreliggende protokollene beskriver ny helmonteringsavbildning for visualisering av perifere strukturer i okularlinsen med metoder for bildekvantifisering. Disse protokollene kan brukes i studier for å bedre forstå forholdet mellom linsemikroskalastrukturer og linsens utvikling/funksjon.

Den okulære linsen er et gjennomsiktig, fleksibelt vev som endrer form for å fokusere lys fra forskjellige avstander på netthinnen. Bortsett fra en kjellermembran som omgir orgelet, kalt kapselen, er linsen helt cellulær bestående av et monolag av epitelceller på den fremre halvkule og en bulkmasse av linsefiberceller. Gjennom livet prolifererer epitelceller i den spirende sonen ved linseekvator, og ekvatoriale epitelceller migrerer, forlenger og differensierer til nydannede fiberceller. Ekvatoriale epitelceller endrer vesentlig morfologi fra tilfeldig pakkede brosteinformede celler til justerte sekskantformede celler som danner meridionale rader. Nydannede linsefiberceller beholder den sekskantede celleformen og strekker seg mot de fremre og bakre polene, og danner et nytt skall av celler som er lagt på tidligere generasjoner av fibre. Lite er kjent om mekanismene som driver den bemerkelsesverdige morfogenesen av linseepitelceller til fiberceller. For bedre å forstå linsestruktur, utvikling og funksjon, har nye bildebehandlingsprotokoller blitt utviklet for å avbilde perifere strukturer ved hjelp av hele monteringer av okulære linser. Her vises metoder for å kvantifisere kapseltykkelse, epitelcelleareal, cellekjerneområde og form, meridional radcelleorden og pakking, og fibercellebredder. Disse målingene er avgjørende for å belyse de cellulære endringene som skjer under livslang linsevekst og forstå endringene som skjer med alder eller patologi.

Den okulære linsen er et fleksibelt, gjennomsiktig vev som ligger i den fremre delen av øyet som fungerer for å finfokusere lys på netthinnen. Linsens evne til å fungere kan delvis tilskrives dens intrikate arkitektur og organisasjon 1,2,3,4,5,6. Rundt linsevevet er kapselen, en kjellermembran som er avgjørende for å opprettholde linsestruktur og biomekaniske egenskaper 7,8,9. Lin....

Log in or to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Mus er plassert i University of Delaware dyreavdeling, opprettholdt i et patogenfritt miljø. Alle dyreprosedyrer, inkludert eutanasi ved CO2 -innånding, ble utført i samsvar med godkjente dyreprotokoller fra University of Delaware Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC).

1. Klargjøring og avbildning av hele objektivfatningen

  1. Fiksering av linser for bildebehandling med hele fatningen
    1. Etter eutanasi, enucleate øyne og dissekere linser.......

Log in or to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Fremre linsekapsel, epitelcelleområde og nukleært område
For å analysere linsekapseltykkelsen farget vi linsekapsler, enten i levende eller faste linser, med WGA. Vi identifiserte linseepitelceller ved å merke membraner med tdTomato i levende linser (figur 2A), eller via rhodamin-falloidinfarging for F-aktin ved cellemembranene i faste linser (figur 2B). I en ortogonal (XZ) projeksjon lar farging for WGA og tdTomat / rhodamin-falloidin o.......

Log in or to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

De beskrevne protokollene muliggjør visualisering av høy romlig oppløsning av perifere linsestrukturer og celler i linsens fremre og ekvatoriale regioner. I denne studien ble det vist metoder for visualisering av linsens perifere strukturer ved bruk av intakte (levende eller faste) linser der den generelle 3D-linsearkitekturen er bevart. I tillegg ble enkle metoder for morfometrisk kvantitativ analyse ved hjelp av offentlig tilgjengelig FIJI ImageJ-programvare gitt. Hele monteringsvisualiserings- og kvantifiseringsmet.......

Log in or to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Dette arbeidet ble støttet av National Eye Institute Grant R01 EY032056 til CC og R01 EY017724 til VMF, samt National Institute of General Medical Sciences under tilskuddsnummer P20GM139760. STI ble støttet av NIH-NIGMS T32-GM133395 som en del av Chemistry-Biology Interface predoctoral training program, og av en University of Delaware Graduate Scholars Award.

....

Log in or to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

NameCompanyCatalog NumberComments
3 mm Biopsy PunchAcuderm IncNC9084780
AgaroseApex BioResearch Products20-102GP
Antimycotic/AntibioticCytivaSV30079.01
Bovine Serum Albumin (Fraction V)Prometheus25-529
Delicate task wipesKimwipe
Glass bottomed dish (Fluorodish)World Precision InternationalFD35-100
Hoescht 33342Biotium40046
Laser scanning confocal Microscope 880Zeiss
MatTek Imaging DishMatTek Life SciencesP35G-1.5-14
Paraformaldehyde Electron Microscopy Sciences100503-917
PBSGenClone25-507B
Phenol red-free medium 199Gibco11043023
Rhodamine-PhalloidinThermo Fisher00027
Triton X100Sigma-Aldrich11332481001
WGA-640BiotiumCF 640R

  1. Gokhin, D. S., et al. Tmod1 and CP49 synergize to control the fiber cell geometry, transparency, and mechanical stiffness of the mouse lens. PLoS One. 7 (11), e48734 (2012).
  2. Cheng, C., et al. Age-related changes in eye lens biomechanics, morphology, refractive index and transparency. Aging (Albany NY). 11 (24), 12497-12531 (2019).
  3. Cheng, C., et al. Tropomodulin 1 regulation of actin is required for the formation of large paddle protrusions between mature lens fiber cells. Invest Ophthalmol Vis Sci. 57 (10), 4084-4099 (2016).
  4. Parreno, J., Cheng, C., Nowak, R. B., Fowler, V. M. The effects of mechanical strain on mouse eye lens capsule and cellular microstructure. Mol Biol Cell. 29 (16), 1963-1974 (2018).
  5. Sindhu Kumari, S., et al. Role of Aquaporin 0 in lens biomechanics. Biochem Biophys Res Commun. 462 (4), 339-345 (2015).
  6. Martin, J. B., et al. Arvcf dependent adherens junction stability is required to prevent age-related cortical cataracts. Front Cell Dev Biol. 10, 840129 (2022).
  7. Danysh, B. P., Duncan, M. K. The lens capsule. Exp Eye Res. 88 (2), 151-164 (2009).
  8. Mekonnen, T., et al. The lens capsule significantly affects the viscoelastic properties of the lens as quantified by optical coherence elastography. Front Bioeng Biotechnol. 11, 1134086 (2023).
  9. Fincham, E. F. The function of the lens capsule in the accommodation of the eye. Trans Optical Society. 30 (3), 101 (1929).
  10. Cheng, C., Nowak, R. B., Fowler, V. M. The lens actin filament cytoskeleton: Diverse structures for complex functions. Exp Eye Res. 156, 58-71 (2017).
  11. Bassnett, S., Sikic, H. The lens growth process. Prog Retin Eye Res. 60, 181-200 (2017).
  12. Sikic, H., Shi, Y., Lubura, S., Bassnett, S. A full lifespan model of vertebrate lens growth. R Soc Open Sci. 4 (1), 160695 (2017).
  13. Cheng, C., Ansari, M. M., Cooper, J. A., Gong, X. EphA2 and Src regulate equatorial cell morphogenesis during lens development. Development. 140 (20), 4237-4245 (2013).
  14. Sugiyama, Y., Akimoto, K., Robinson, M. L., Ohno, S., Quinlan, R. A. A cell polarity protein aPKClambda is required for eye lens formation and growth. Dev Biol. 336 (2), 246-256 (2009).
  15. Zampighi, G. A., Eskandari, S., Kreman, M. Epithelial organization of the mammalian lens. Exp Eye Res. 71 (4), 415-435 (2000).
  16. Lovicu, F. J., Robinson, M. L. . Development of the Ocular Lens. , (2011).
  17. Kuszak, J. R., Zoltoski, R. K., Sivertson, C. Fibre cell organization in crystalline lenses. Exp Eye Res. 78 (3), 673-687 (2004).
  18. Cvekl, A., Ashery-Padan, R. The cellular and molecular mechanisms of vertebrate lens development. Development. 141 (23), 4432-4447 (2014).
  19. Vu, M. P., Cheng, C. Preparation and immunofluorescence staining of bundles and single fiber cells from the cortex and nucleus of the eye lens. J Vis Exp. (196), e65638 (2023).
  20. Islam, S. T., Cheng, C., Parreno, J., Fowler, V. M. Nonmuscle myosin IIA regulates the precise alignment of hexagonal eye lens epithelial cells during fiber cell formation and differentiation. Invest Ophthalmol Vis Sci. 64 (4), 20 (2023).
  21. Patel, S. D., Aryal, S., Mennetti, L. P., Parreno, J. Whole mount staining of lenses for visualization of lens epithelial cell proteins. MethodsX. 8, 101376 (2021).
  22. Parreno, J., et al. Methodologies to unlock the molecular expression and cellular structure of ocular lens epithelial cells. Front Cell Dev Biol. 10, 983178 (2022).
  23. Muzumdar, M. D., Tasic, B., Miyamichi, K., Li, L., Luo, L. A global double-fluorescent Cre reporter mouse. Genesis. 45 (9), 593-605 (2007).
  24. Zhang, Y., et al. Mouse models of MYH9-related disease: mutations in nonmuscle myosin II-A. Blood. 119 (1), 238-250 (2012).
  25. Cheng, C., Gokhin, D. S., Nowak, R. B., Fowler, V. M. Sequential application of glass coverslips to assess the compressive stiffness of the mouse lens: Strain and morphometric analyses. J Vis Exp. (111), e53986 (2016).
  26. Riedl, J., et al. Lifeact: a versatile marker to visualize F-actin. Nat Methods. 5 (7), 605-607 (2008).
  27. Lukinavicius, G., et al. Fluorogenic probes for live-cell imaging of the cytoskeleton. Nat Methods. 11 (7), 731-733 (2014).

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Research

Education

ABOUT JoVE

Copyright © 2024 MyJoVE Corporation. All rights reserved