JoVE Logo
Faculty Resource Center

Sign In

Summary

Abstract

Introduction

Protocol

Representative Results

Discussion

Acknowledgements

Materials

References

Biology

Helmonterad avbildning för att visualisera och kvantifiera perifer linsstruktur, cellmorfologi och organisation

Published: January 19th, 2024

DOI:

10.3791/66017

1Department of Biological Sciences, University of Delaware, 2School of Optometry and Vision Science Program, Indiana University, 3Department of Biomedical Engineering, University of Delaware
* These authors contributed equally

De aktuella protokollen beskriver nya helfattningsavbildningar för visualisering av perifera strukturer i den okulära linsen med metoder för bildkvantifiering. Dessa protokoll kan användas i studier för att bättre förstå förhållandet mellan linsstrukturer i mikroskala och linsutveckling/funktion.

Ögonlinsen är en genomskinlig flexibel vävnad som ändrar sin form för att fokusera ljus från olika avstånd på näthinnan. Bortsett från ett basalmembran som omger organet, kallat kapseln, är linsen helt cellulär och består av ett monolager av epitelceller på den främre halvklotet och en bulkmassa av linsfiberceller. Under hela livet förökar sig epitelceller i den groende zonen vid linsens ekvator, och ekvatoriella epitelceller migrerar, förlängs och differentieras till nybildade fiberceller. Ekvatoriella epitelceller förändrar väsentligt morfologin från slumpmässigt packade kullerstensformade celler till inriktade hexagonformade celler som bildar meridionala rader. Nybildade linsfiberceller behåller den sexkantiga cellformen och förlängs mot de främre och bakre polerna och bildar ett nytt skal av celler som läggs ovanpå tidigare generationer av fibrer. Lite är känt om de mekanismer som driver den anmärkningsvärda morfogenesen av linsepitelceller till fiberceller. För att bättre förstå linsens struktur, utveckling och funktion har nya avbildningsprotokoll utvecklats för att avbilda perifera strukturer med hjälp av hela fästen av okulära linser. Här visas metoder för att kvantifiera kapseltjocklek, epitelcellarea, cellkärnarea och form, meridional radcellordning och packning samt fibercellbredder. Dessa mätningar är viktiga för att belysa de cellulära förändringar som uppstår under livslång linstillväxt och förstå de förändringar som uppstår med ålder eller patologi.

Den okulära linsen är en flexibel, genomskinlig vävnad som ligger i ögats främre region och som fungerar för att finfokusera ljuset på näthinnan. Linsens förmåga att fungera kan delvis tillskrivas dess intrikata arkitektur och organisation 1,2,3,4,5,6. Runt linsvävnaden finns kapseln, ett basalmembran som är nödvändigt för att upprätthålla linsens struktur och biomekaniska egenskaper 7,8,9

Log in or to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Möss hålls i University of Delawares djuranläggning, som hålls i en patogenfri miljö. Alla djurförsök, inklusive avlivning genom inandning av CO2 , utfördes i enlighet med godkända djurprotokoll från University of Delaware Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC).

1. Förberedelse och avbildning av hela objektivfattningen

  1. Fixering av objektiv för helfattningsavbildning
    1. Efter eutanasi ska ögon och dissekeras som tidigare beskri.......

Log in or to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Främre linskapsel, epitelcellområde och kärnområde
För att analysera linskapselns tjocklek färgade vi linskapslar, antingen i levande eller fasta linser, med WGA. Vi identifierade linsepitelceller genom att märka membran med tdTomat i levande linser (Figur 2A), eller via rodamin-falloidinfärgning för F-aktin vid cellmembranen i fasta linser (Figur 2B). I en ortogonal (XZ) projektion gör färgning för WGA och tdTomato/rhodamin-fallo.......

Log in or to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

De beskrivna protokollen möjliggör visualisering med hög rumslig upplösning av perifera linsstrukturer och celler vid linsens främre och ekvatoriella regioner. I denna studie visades metoder för visualisering av perifera strukturer med hjälp av intakta (levande eller fasta) linser där den övergripande 3D-linsarkitekturen bevaras. Dessutom tillhandahölls enkla metoder för morfometrisk kvantitativ analys med hjälp av offentligt tillgänglig FIJI ImageJ-programvara. Hela monteringsvisualiserings- och kvantifieri.......

Log in or to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Detta arbete stöddes av National Eye Institute Grant R01 EY032056 till CC och R01 EY017724 till VMF, samt National Institute of General Medical Sciences under anslagsnummer P20GM139760. STI stöddes av NIH-NIGMS T32-GM133395 som en del av Chemistry-Biology Interface predoktorala utbildningsprogram och av ett University of Delaware Graduate Scholars Award.

....

Log in or to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

NameCompanyCatalog NumberComments
3 mm Biopsy PunchAcuderm IncNC9084780
AgaroseApex BioResearch Products20-102GP
Antimycotic/AntibioticCytivaSV30079.01
Bovine Serum Albumin (Fraction V)Prometheus25-529
Delicate task wipesKimwipe
Glass bottomed dish (Fluorodish)World Precision InternationalFD35-100
Hoescht 33342Biotium40046
Laser scanning confocal Microscope 880Zeiss
MatTek Imaging DishMatTek Life SciencesP35G-1.5-14
Paraformaldehyde Electron Microscopy Sciences100503-917
PBSGenClone25-507B
Phenol red-free medium 199Gibco11043023
Rhodamine-PhalloidinThermo Fisher00027
Triton X100Sigma-Aldrich11332481001
WGA-640BiotiumCF 640R

  1. Gokhin, D. S., et al. Tmod1 and CP49 synergize to control the fiber cell geometry, transparency, and mechanical stiffness of the mouse lens. PLoS One. 7 (11), e48734 (2012).
  2. Cheng, C., et al. Age-related changes in eye lens biomechanics, morphology, refractive index and transparency. Aging (Albany NY). 11 (24), 12497-12531 (2019).
  3. Cheng, C., et al. Tropomodulin 1 regulation of actin is required for the formation of large paddle protrusions between mature lens fiber cells. Invest Ophthalmol Vis Sci. 57 (10), 4084-4099 (2016).
  4. Parreno, J., Cheng, C., Nowak, R. B., Fowler, V. M. The effects of mechanical strain on mouse eye lens capsule and cellular microstructure. Mol Biol Cell. 29 (16), 1963-1974 (2018).
  5. Sindhu Kumari, S., et al. Role of Aquaporin 0 in lens biomechanics. Biochem Biophys Res Commun. 462 (4), 339-345 (2015).
  6. Martin, J. B., et al. Arvcf dependent adherens junction stability is required to prevent age-related cortical cataracts. Front Cell Dev Biol. 10, 840129 (2022).
  7. Danysh, B. P., Duncan, M. K. The lens capsule. Exp Eye Res. 88 (2), 151-164 (2009).
  8. Mekonnen, T., et al. The lens capsule significantly affects the viscoelastic properties of the lens as quantified by optical coherence elastography. Front Bioeng Biotechnol. 11, 1134086 (2023).
  9. Fincham, E. F. The function of the lens capsule in the accommodation of the eye. Trans Optical Society. 30 (3), 101 (1929).
  10. Cheng, C., Nowak, R. B., Fowler, V. M. The lens actin filament cytoskeleton: Diverse structures for complex functions. Exp Eye Res. 156, 58-71 (2017).
  11. Bassnett, S., Sikic, H. The lens growth process. Prog Retin Eye Res. 60, 181-200 (2017).
  12. Sikic, H., Shi, Y., Lubura, S., Bassnett, S. A full lifespan model of vertebrate lens growth. R Soc Open Sci. 4 (1), 160695 (2017).
  13. Cheng, C., Ansari, M. M., Cooper, J. A., Gong, X. EphA2 and Src regulate equatorial cell morphogenesis during lens development. Development. 140 (20), 4237-4245 (2013).
  14. Sugiyama, Y., Akimoto, K., Robinson, M. L., Ohno, S., Quinlan, R. A. A cell polarity protein aPKClambda is required for eye lens formation and growth. Dev Biol. 336 (2), 246-256 (2009).
  15. Zampighi, G. A., Eskandari, S., Kreman, M. Epithelial organization of the mammalian lens. Exp Eye Res. 71 (4), 415-435 (2000).
  16. Lovicu, F. J., Robinson, M. L. . Development of the Ocular Lens. , (2011).
  17. Kuszak, J. R., Zoltoski, R. K., Sivertson, C. Fibre cell organization in crystalline lenses. Exp Eye Res. 78 (3), 673-687 (2004).
  18. Cvekl, A., Ashery-Padan, R. The cellular and molecular mechanisms of vertebrate lens development. Development. 141 (23), 4432-4447 (2014).
  19. Vu, M. P., Cheng, C. Preparation and immunofluorescence staining of bundles and single fiber cells from the cortex and nucleus of the eye lens. J Vis Exp. (196), e65638 (2023).
  20. Islam, S. T., Cheng, C., Parreno, J., Fowler, V. M. Nonmuscle myosin IIA regulates the precise alignment of hexagonal eye lens epithelial cells during fiber cell formation and differentiation. Invest Ophthalmol Vis Sci. 64 (4), 20 (2023).
  21. Patel, S. D., Aryal, S., Mennetti, L. P., Parreno, J. Whole mount staining of lenses for visualization of lens epithelial cell proteins. MethodsX. 8, 101376 (2021).
  22. Parreno, J., et al. Methodologies to unlock the molecular expression and cellular structure of ocular lens epithelial cells. Front Cell Dev Biol. 10, 983178 (2022).
  23. Muzumdar, M. D., Tasic, B., Miyamichi, K., Li, L., Luo, L. A global double-fluorescent Cre reporter mouse. Genesis. 45 (9), 593-605 (2007).
  24. Zhang, Y., et al. Mouse models of MYH9-related disease: mutations in nonmuscle myosin II-A. Blood. 119 (1), 238-250 (2012).
  25. Cheng, C., Gokhin, D. S., Nowak, R. B., Fowler, V. M. Sequential application of glass coverslips to assess the compressive stiffness of the mouse lens: Strain and morphometric analyses. J Vis Exp. (111), e53986 (2016).
  26. Riedl, J., et al. Lifeact: a versatile marker to visualize F-actin. Nat Methods. 5 (7), 605-607 (2008).
  27. Lukinavicius, G., et al. Fluorogenic probes for live-cell imaging of the cytoskeleton. Nat Methods. 11 (7), 731-733 (2014).

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Research

Education

ABOUT JoVE

Copyright © 2024 MyJoVE Corporation. All rights reserved