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Este protocolo descreve um novo método para quantificar espécies reativas de oxigênio (ROS) intracelulares usando diidroetídio (DHE) como sonda de fluorescência usando uma abordagem de triagem de alto rendimento. O protocolo descreve os métodos para avaliação quantitativa das espécies reativas de oxigênio (EROs) intracelulares nas três diferentes linhagens celulares de carcinoma hepatocelular.
As espécies reativas de oxigênio (EROs) desempenham um papel fundamental na regulação do metabolismo celular em processos fisiológicos e patológicos. A produção fisiológica de ERO desempenha um papel central na modulação espacial e temporal de funções celulares normais, como proliferação, sinalização, apoptose e senescência. Em contraste, a superprodução crônica de ERO é responsável por um amplo espectro de doenças, como câncer, doenças cardiovasculares e diabetes, entre outras. Quantificar os níveis de ROS de forma precisa e reprodutível é, portanto, essencial para entender a funcionalidade celular normal. Métodos baseados em imagens de fluorescência para caracterizar espécies intracelulares de ROS é uma abordagem comum. Muitos dos protocolos de imagem ROS na literatura utilizam o corante diacetato de 2'-7'-diclorodihidrofluoresceína (DCFH-DA). No entanto, este corante sofre de limitações significativas em seu uso e interpretabilidade. O protocolo atual demonstra o uso de uma sonda fluorescente de diidroetídio (DHE) como um método alternativo para quantificar a produção total de ROS em um ambiente de alto rendimento. A plataforma de geração de imagens de alto rendimento, CX7 Cellomics, foi usada para medir e quantificar a produção de ROS. Este estudo foi realizado em três linhagens de células de câncer hepatocelular - HepG2, JHH4 e HUH-7. Este protocolo fornece uma descrição detalhada dos vários procedimentos envolvidos na avaliação de ROS dentro das células, incluindo - preparação de solução de DHE, incubação de células com solução de DHE e medição da intensidade de DHE necessária para caracterizar a produção de ROS. Este protocolo demonstra que o corante fluorescente DHE é uma escolha robusta e reprodutível para caracterizar a produção intracelular de ROS de forma de alto rendimento. Abordagens de alto rendimento para medir a produção de ROS provavelmente serão úteis em uma variedade de estudos, como toxicologia, rastreamento de drogas e biologia do câncer.
Espécies reativas de oxigênio (ROS) são um grupo de radicais químicos de ocorrência natural, altamente reativos e temporalmente instáveis formados como parte do metabolismo celular normal nas células. As ERO desempenham um papel fundamental e essencial na modulação dos processos fisiológicos e bioquímicos normais que ocorrem nas células 1,2. A principal fonte de produção de ERO nas células é a via da cadeia de transporte de elétrons mitocondrial (ETC) como parte do ciclo bioenergético normal. Fontes adicionais significativas de produção de ROS incluem reações enzimáticas como NADPH oxidases celulares em célula....
1. Cultura celular
Diidroetídio (DHE) é um corante de fluorescência responsivo a superóxidos que fornece informações específicas sobre os estados de ROS intracelulares. O corante DHE emite intrinsecamente fluorescência azul no citoplasma. Entretanto, ao interagir com radicais superóxido, é transformado em 2-hidroxietídio, que emite fluorescência nos comprimentos de onda vermelho (>550 nm) (Figura 1). O corante DHE é facilmente transportado para as células e o núcleo. A fluorescência emitida pod.......
Neste estudo, um protocolo para avaliar a produção de espécies reativas de oxigênio (EROs) intracelulares impulsionadas por superóxido usando corante de fluorescência diidroetídio (DHE) foi estabelecido em um sistema de triagem de alto conteúdo. A maioria dos protocolos atuais disponíveis na literatura utiliza a DCFH-DA como sonda de imagem de fluorescência para quantificar espécies de ROS. No entanto, vários estudos têm demonstrado que a DCFH-AD não é uma sonda ideal para a mensuração de ERO intracelula.......
Os autores declaram não ter interesses concorrentes.
RK e RRG foram apoiados por uma bolsa do UNM Center for Metals in Biology and Medicine (CMBM) através da bolsa P20 do NIH NIGMS GM130422. O RRG foi apoiado por um prêmio piloto da bolsa NM-INSPIRES P30 1P30ES032755. O suporte ao núcleo de imagem para o instrumento CX7 Cellomics foi fornecido por meio dos núcleos do centro AIM financiados pelo NIH grant P20GM121176. Gostaríamos de agradecer à Dra. Sharina Desai e ao Dr. Li Chen por sua inestimável assistência com questões técnicas relacionadas ao uso da plataforma de imagem CX7 Cellomics.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
1.5 mL centrifuge tubes | VWR | 20170-038 | |
96- well plate | Corning Costar | 07-200-90 | |
Cellomics Cx7 | ThermoFisher | HCSDCX7LEDPRO | |
Collagen | Advanced Biomatrix | 5056 | |
DHE (Dihydroethidium) | ThermoFisher | D1168 | |
DMEM | Sigma | 6046 | |
FBS | VWR | 97068-085 | |
GraphPad Prism | GraphPad | Version 6.0 | |
HepG2 cell line | ATCC | ||
Hoechst | ThermoFisher | 33342 | |
HUH7 cell line | ATCC | ||
Hydrogen Peroxide | Sigma | 88597 | |
JHH4 cell line | ATCC | ||
Menadione | Sigma | M5625 |
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