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Gli organoidi sono diventati strumenti preziosi per la modellazione delle malattie. La matrice extracellulare (ECM) guida il destino cellulare durante la generazione degli organoidi e l'utilizzo di un sistema che assomiglia al tessuto nativo può migliorare l'accuratezza del modello. Questo studio confronta la generazione di organoidi intestinali umani derivati da cellule staminali pluripotenti indotte in ECM di origine animale e idrogel privi di xeno.
La matrice extracellulare (ECM) svolge un ruolo fondamentale nel comportamento e nello sviluppo cellulare. Gli organoidi generati da cellule staminali pluripotenti indotte umane (hiPSC) sono sotto i riflettori di molte aree di ricerca. Tuttavia, la mancanza di segnali fisiologici nei materiali classici per colture cellulari ostacola un'efficiente differenziazione delle iPSC. L'integrazione della MEC disponibile in commercio nella coltura di cellule staminali fornisce spunti fisici e chimici utili per il mantenimento delle cellule. I prodotti di membrana basale di origine animale disponibili in commercio sono composti da proteine ECM e fattori di crescita che supportano il mantenimento cellulare. Poiché la ECM possiede proprietà tessuto-specifiche in grado di modulare il destino cellulare, le matrici prive di xeno vengono utilizzate per accelerare la traduzione verso gli studi clinici. Sebbene le matrici disponibili in commercio siano ampiamente utilizzate nel lavoro su hiPSC e organoidi, l'equivalenza di queste matrici non è stata ancora valutata. Qui, è stato condotto uno studio comparativo del mantenimento dell'hiPSC e della generazione di organoidi intestinali umani (hIO) in quattro diverse matrici: Matrigel (Matrix 1-AB), Geltrex (Matrix 2-AB), Cultrex (Matrix 3-AB) e VitroGel (Matrix 4-XF). Sebbene le colonie mancassero di una forma perfettamente rotonda, c'era una differenziazione spontanea minima, con oltre l'85% delle cellule che esprimevano il marcatore delle cellule staminali SSEA-4. La matrice 4-XF ha portato alla formazione di grumi rotondi 3D. Inoltre, l'aumento della concentrazione di integratori e fattori di crescita nei terreni utilizzati per produrre la soluzione di idrogel Matrix 4-XF ha migliorato l'espressione di SSEA-4 da parte di hiPSC di 1,3 volte. La differenziazione della hiPSC mantenuta con Matrix 2-AB ha portato a un minor numero di rilasci di sferoidi durante lo stadio medio/posteriore dell'intestino rispetto alle altre membrane basali di origine animale. Rispetto ad altre, la matrice di organoidi xeno-free (Matrix 4-O3) porta a hIO più grandi e più mature, suggerendo che le proprietà fisiche degli idrogel xeno-free possono essere sfruttate per ottimizzare la generazione di organoidi. Nel complesso, i risultati suggeriscono che le variazioni nella composizione di diverse matrici influenzano le fasi di differenziazione dell'IO. Questo studio aumenta la consapevolezza sulle differenze nelle matrici disponibili in commercio e fornisce una guida per l'ottimizzazione delle matrici durante il lavoro iPSC e IO.
La matrice extracellulare (ECM) è un componente dinamico e multifunzionale dei tessuti che svolge un ruolo centrale nella regolazione del comportamento e dello sviluppo cellulare. Essendo una rete complessa, fornisce supporto strutturale, ligandi adesivi cellulari1 e immagazzinamento di fattori di crescita e citochine che regolano la segnalazione cellulare. Ad esempio, durante la guarigione delle ferite, la MEC funge da impalcatura per le cellule in migrazione e da serbatoio di fattori di crescita coinvolti nella riparazione dei tessuti2. Allo stesso modo, la disregolazione nella MEC può portare ad un aumento della gravi....
1. Manutenzione hiPSC
ATTENZIONE: Tutto il lavoro viene svolto in una cabina di biosicurezza (BSC) seguendo tecniche asettiche standard. Deve seguire gli standard di sicurezza OSHA per i laboratori, incluso l'uso corretto di dispositivi di protezione individuale come camici da laboratorio, guanti e occhiali.
Seguendo questo protocollo, le membrane basali disponibili in commercio e un sistema di idrogel privo di xeno sono stati utilizzati con successo per coltivare cellule hiPSC e differenziarle in hIO. L'obiettivo principale di questi esperimenti era quello di valutare sistematicamente l'equivalenza di matrici provenienti da varie fonti per il lavoro su hiPSC e hIO. La prima sezione di questo protocollo si è concentrata sul mantenimento e la caratterizzazione di una coltura sana di iPSC che produca un'efficiente generazione.......
La selezione del microambiente ottimale per il lavoro con cellule staminali e organoidi è un primo passo fondamentale quando si utilizzano queste piattaforme per un'ampia gamma di applicazioni. I nostri risultati rappresentativi mostrano che la matrice 4-XFO3, in combinazione con una maggiore concentrazione di fattori di crescita, porta a organoidi più grandi, suggerendo che le proprietà fisiche degli idrogel privi di xeno possono essere sfruttate per ottimizzare la generazione di organoidi utilizzando questi sistemi........
Gli autori riconoscono la formazione precedente e le raccomandazioni generali riguardanti l'inizio del lavoro su hiPSC e organoidi da parte dei dottori Christina Pacak, Silveli Susuki-Hatano e Russell D'Souza. Ringraziano la dottoressa Chelsey Simmons per la sua guida nell'utilizzo dei sistemi di idrogel per il lavoro di coltura cellulare in vitro . Inoltre, gli autori desiderano ringraziare i dottori Christine Rodriguez e Thomas Allison di STEMCELL Technologies per la loro guida sulla coltura hiPSC. Gli autori ringraziano anche TheWell Bioscience per aver coperto i costi di pubblicazione.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
24-Well Plate (Culture treated, sterile) | Falcon | 353504 | |
37 °C water bath | VWR | ||
96-well plate | Fisher Scientific | FB012931 | |
Advanced DMEM/F12 | Life Technologies | 12634 | |
Anti-adherence Rinsing Solutio | STEMCELL Technologies | 7010 | |
Biological safety cabinet (BSC) | Labconco | Logic | |
Brightfield Microscope | Echo Rebel | REB-01-E2 | |
BXS0116 | ATCC | ACS-1030 | |
Centrifuge with temperature control (4 °C capabilities) | ThermoScientific | 75002441 | |
Conical tubes, 15 mL, sterile | Thermo Fisher Scientific | 339650 | |
Conical tubes, 50 mL, sterile | Thermo Fisher Scientific | 339652 | |
Cultrex RGF BME, Type 2 | Bio-techne | 3533-005-02 | |
Cultrex Stem Cell Qualified RGF BME | Bio-techne | 3434-010-02 | |
D-PBS (Without Ca++ and Mg++) | Thermo Fisher Scientific | 14190144 | |
GeltrexLDEV-Free, hESC-Qualified Reduce Growth Factor | Gibco | A14133-02 | |
GlutaMAX Supplement | Thermo Fischer Scientific | 35050-061 | |
Guava Muse Cell Analyzer or another flow cytometry equipment (optional) | Luminex | 0500-3115 | |
HEPES buffer solution | Thermo Fischer Scientific | 15630-056 | |
Heralcell Vios Cell culture incubator (37 °C, 5% CO2) | Thermo Scientific | 51033775 | |
JMP Software | SAS Institute | JMP 16 | |
MATLAB | MathWorks, Inc | R2022b | |
Matrigel Growth Factor Reduced (GFR) Basement Membrane Matrix LDEV free | Corning | 356231 | |
Matrigel Matrix High Concentration (HC), Growth Factor Reduced (GFR) LDEV-free | Corning | 354263 | |
mTeSR Plus Medium | STEMCELL Technologies | 100-0276 | |
Nunclon Delta surface treated 24-well plate | Thermo Scientific | 144530 | |
PE Mouse Anti-human CD326 (EpCAM) | BD Pharmingen | 566841 | |
PE Mouse Anti-human CDX2 | BD Pharmingen | 563428 | |
PE Mouse Anti-human FOXA2 | BD Pharmingen | 561589 | |
PerCP-Cy 5.5 Mouse Anti-human SSEA4 | BD Pharmingen | 561565 | |
ReLeSR | STEMCELL | 5872 | |
SCTi003-A | STEMCELL Technologies | 200-0510 | |
Serological pipettes (10 mL) | Fisher Scientific | 13-678-11E | |
Serological pipettes (5 mL) | Fisher Scientific | 13-678-11D | |
STEMdiff Intestinal Organoid Growth Medium | STEMCELL Technologies | 5145 | |
STEMdiff Intestinal Organoid Kit | STEMCELL Technologies | 5140 | |
Vitrogel Hydrogel Matrix | TheWell Bioscience | VHM01 | |
VitroGel ORGANOID Discovery Kit | TheWell Bioscience | VHM04-K |
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