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* These authors contributed equally
本研究提出了二维 (2D) 划痕伤口迁移测定和三维 (3D) 球状体发芽测定,以及它们各自的下游分析方法,包括 RNA 提取和免疫细胞化学,作为研究 体外血管生成的合适测定。
血管生成在体内的生理和病理过程中起着至关重要的作用,包括肿瘤生长或新生血管性眼病。详细了解潜在的分子机制和可靠的筛选模型对于有效靶向疾病和开发新的治疗方案至关重要。已经开发了几种 体外 检测来模拟血管生成,利用受控环境提供的机会在分子水平上阐明血管生成驱动因素并筛选治疗靶点。
本研究介绍了使用人脐静脉内皮细胞 (HUVEC) 在体外 研究血管生成的工作流程。我们详细介绍了利用活细胞成像系统在 2D 环境中测量内皮细胞迁移的划痕伤口迁移测定,以及在胶原蛋白基质提供的 3D 环境中评估内皮细胞发芽的球状体发芽测定。此外,我们概述了样品制备策略,以实现进一步的分子分析,例如转录组学,特别是在 3D 环境中,包括 RNA 提取和免疫细胞化学。总而言之,该框架为科学家提供了一个可靠且多功能的工具集,用于进行 体外 血管生成测定的科学研究。
血管生成是指从预先存在的血管中形成新血管1,是生理发育和病理状况过程中的关键过程。它对于为高度代谢活跃的组织(如视网膜2 或发育中的中枢神经系统3)以及受损组织4 的愈合提供能量是必不可少的。另一方面,异常的血管生成是许多疾病的基础。实体瘤,如结直肠癌或非小细胞肺癌,通过促进血管生成来促进其生长和必要的能量供应5。除了癌症外,糖尿病性视网膜病变或年龄相关性黄斑变性等眼部新生血管疾病是发达国家失明的主要原因,也是由异常血管生长引起的 6,7。详细了解潜在的病理机制对于理解如何增强生理性血管生成至关重要,例如,在伤口愈合中,同时更好地控制血管增生性眼病等病理状况。
在细胞水平上,血管内皮细胞在血管生成过程中被各种信号分子激活,从而启动细胞增殖和迁移8。细胞随后组织成层次结构,未增殖的尖端细胞在发育中的血管分支的前缘形成丝状伪足8。此外,快速增殖的柄细胞跟踪尖端细胞,有助于形成新兴血管。随后,募集其他细胞类型,如周细胞或平滑肌细胞,以进....
1. HUVEC 细胞培养
注意:在无菌工作条件(无菌工作台)下执行以下所有步骤。
对于迁移测定,彻底检查在 t = 0 h 时间点捕获的图像以确保系统准确检测完全形成的细胞单层的存在至关重要(图 1B)。此外,应确认划痕边界的清晰度和直线度(图 1B)。无细胞区域应该在很大程度上没有碎屑。在测定结束时,例如,用 25 ng/mL VEGF 作为阳性对照刺激的一组应该显示成功迁移到原始划痕区域(图 1B)。技术问题?.......
在本报告中,我们提出了一系列具有功能和分子读数的技术,用于研究 体外血管生成。
迁移测定代表了一种成熟的技术,用于湿实验室工作的所有领域。我们选择了市售的活细胞成像方法,以利用适用于筛选和剂量反应实验的 96 孔格式、由 WoundMaker 工具创建的标准化和可重复的伤口大小、通过延时成像观察迁移动力学的机会长达 24 小时以及自动图像量化软件。然而.......
作者感谢 Sophie Krüger 和 Gabriele Prinz 的出色技术支持。我们感谢 Sebastian Maier 开发了 ImageJ 插件来量化球状体芽,并感谢弗莱堡大学医院医学第一部 Zentrum für Translationale Zellforschung (ZTZ) 的 Lighthouse 核心设施使用 IncuCyte 系统。图形是使用 biorender.com 创建的。这项工作得到了德国研究基金会 [Bu3135/3-1 + Bu3135/3-2 至 F.B.]、阿尔伯特-路德维希斯-弗莱堡大学 [Berta-Ottenstein-F.B. 临床医生科学家和高级临床医生科学家计划]、Else Kröner-Fresenius-Stiftung [2021_EKEA.80 至 F.B.]、德国癌症联盟 [CORTEX 临床科学家奖学金 J.R.] 和 Volker Homann Stiftung [J.N.+F.B.] 和“Freunde der Universitäts-Augenklinik Freiburge.V.”[对 P.L.]
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
10x Medium 199 | Sigma-Aldrich | M0650 | |
2-(4-(2-Hydroxyethyl)1-piperazinyl)-ethan-sulfonsäure | PAN-Biotec | P05-01100 | HEPES |
Alexa Fluor 647-conjugated AffiniPure F(ab)‘2-Fragment | Jackson IR | 115-606-072 | |
Axio Vert. A1 | Zeiss | ||
CapturePro 2.10.0.1 | JENOTIK Optical Systems | ||
Collagen Type 1 rat tail | Corning | 354236 | |
Collagenase D | Roche | 11088858001 | |
Endothelial Cell Basal Medium | Lonza | CC-3156 | EBM |
Endothelial Cell Growth Medium | Lonza | CC-3162 | EGM |
Ethylenediaminetetraacetic acid | Serva | 11290.02 | EDTA |
Fetal bovine serum | Bio&SELL | S 0615 | FBS |
Human Umbilical Vein Endothelial Cells, pooled | Lonza | C2519A | HUVEC |
IncuCyte ImageLock 96-well plates | Sartorius | 4379 | |
Incucyte S3 Live-Cell Analysis System | Sartorius | ||
Methocel | Sigma | m-0512 | |
Microvascular Endothelial Cell Medium with 10% FBS | PB-MH-100-4090-GFP | PELOBiotech | |
NaOH | Carl Roth | P031.2 | |
Phalloidin-Fluorescein Isothiocyanate Labeled (0.5 mg/mL Methanol) | Sigma-Aldrich | P5282-.1MG | Phalloidin-FITC |
Phosphate-buffered saline | Thermo Fisher Scientfic | 14190-094 | PBS |
Primary Human Retinal Microvascular Endothelial Cells | Cell Systems | ACBRI 181 | |
ProLong Glass Antifade Mountant with NucBlue | Invitrogen by ThermoFisher Scientific | 2260939 | |
QIAzol Lysis Reagent | QIAGEN | 79306 | |
recombinant human Vascular Endothelial Growth Factor | PeproTech | 100-20 | VEGF |
Squared petri dish | Greiner | 688102 | |
Trizol | Qiagen | 79306 | |
Trypsin | PAN-Biotec | P10-024100 | |
VEGF-R2 (monoclonal) | ThermoFisher Scientific Inc. | B.309.4 | |
WoundMaker | Sartorius | 4493 |
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