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A eletroporação de substrato poroso (PSEP) combina entrega consistente e de alto rendimento com alta viabilidade celular. A introdução de medições de impedância elétrica transepitelial (TEEI) fornece informações sobre os processos intermediários do PSEP e permite a entrega sem rótulos. Este artigo discute um método para realizar experimentos de entrega de PSEP e análise de medição TEEI simultaneamente.
A eletroporação de substrato poroso (PSEP) é um método emergente de eletroporação que fornece alto rendimento e entrega consistente. Como muitos outros tipos de entrega intracelular, o PSEP depende muito de marcadores fluorescentes e microscopia fluorescente para determinar o sucesso da entrega. Para obter informações sobre as etapas intermediárias do processo de eletroporação, foi desenvolvida uma plataforma PSEP com monitoramento integrado de impedância elétrica transepitelial (TEEI). As células são cultivadas em inserções disponíveis comercialmente com membranas porosas. Após um período de incubação de 12 h para permitir a formação de uma monocamada celular totalmente confluente, as inserções são colocadas em meios de transfecção localizados nos poços do dispositivo PSEP. As monocamadas celulares são então submetidas a uma forma de onda definida pelo usuário e a eficiência de entrega é confirmada por microscopia fluorescente. Esse fluxo de trabalho pode ser significativamente aprimorado com medições TEEI entre microscopia pulsante e fluorescente para coletar dados adicionais sobre o processo PSEP, e esses dados TEEI adicionais estão correlacionados com métricas de entrega, como eficiência e viabilidade de entrega. Este artigo descreve um protocolo para a realização de PSEP com medidas TEEI.
A eletroporação é uma técnica na qual as células são expostas a um campo elétrico, criando poros temporários na membrana celular através dos quais cargas, incluindo proteínas, RNA e DNA, podem passar 1,2. A versão mais utilizada é a eletroporação em massa (BEP). A BEP é realizada enchendo uma cubeta com um eletrólito contendo milhões de células, expondo o eletrólito a alta voltagem e permitindo que a carga entre nas células por difusão ou endocitose1. Há muitas vantagens no BEP, incluindo alto rendimento e vários sistemas disponíveis comercialmente. No ....
Os detalhes dos reagentes e do equipamento utilizado no estudo estão listados na Tabela de Materiais.
1. Preparação de reagentes e cultura celular
O protocolo fornecido estabelece um método para usar medições TEEI para examinar os processos intermediários de eletroporação e fazer previsões de entrega, especificamente para a linha celular A431 e carga PI. Embora a modificação deste protocolo seja discutida mais adiante no artigo, é importante observar agora que, embora os valores específicos possam mudar, as tendências gerais na resposta permanecem consistentes. Por exemplo, os dados TEEI que caem abaixo da linha de base.......
A Figura 2C demonstra que os aumentos de TEEI do mínimo e as diminuições da linha de base são plotados para cada tensão da forma de onda PSEP. O aumento do TEEI cria um arco parabólico, atingindo um pico de cerca de 20 volts antes de reduzir, enquanto a diminuição do TEEI da linha de base aumenta exponencialmente à medida que a tensão aumenta. A eficiência de entrega e as porcentagens de morte na Figura 2D refletem es.......
Os autores declaram não haver conflito de interesses.
Reconhecemos o apoio financeiro da NSF (Awards 1826135, 1936065, 2143997), dos Institutos Nacionais de Ciências Médicas Gerais do NIH P20GM113126 (Centro de Comunicação Biomolecular Integrada de Nebraska) e P30GM127200 (Centro de Nanomedicina de Nebraska), da Iniciativa Colaborativa de Nebraska e do Apoio à Bioengenharia Voelte-Keegan. O dispositivo foi fabricado no NanoEngineering Research Core Facility (NERCF), que é parcialmente financiado pela Nebraska Research Initiative.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
15 mL Conical Centrifuge Tube | Thermo Scientific | 339651 | |
2-Chip Disposable Hemocytometer | Bulldog Bio | DHC-N01 | |
75 cm2 Tissue Culture Flask | fisherbrand | FB012937 | |
A431 Cells | ATCC | CRL-1555 | |
Calcein AM | Invitrogen | C3099 | |
Class II Type A2 Biosafety Cabinet | Labgard | NU-543-600 | |
Custom Components | YangLab | https://github.com/YangLabUNL/PSEP-TEEI | |
Disposable Centrifuge Tube (50 mL) | fisherbrand | 05-539-6 | |
DMEM | Gibco | 11965092 | |
Fetal Bovine Serum | Gibco | A5670401 | |
Fluid Aspiration System | vacuubrand | 20727403 | |
HERACELL 240i | Thermo Scientific | 51026331 | |
Hoechst 33342 | Thermo Scientific | 62249 | |
Human Plasma Fibronectin | Sigma-Aldrich | FIBRP-RO | |
Inverted Fluorescent Microscope | Zeiss | 491916-0001-000 | |
Inverted Microscope | Labomed | TCM 400 | |
PBS | cytiva | SH30256.02 | |
PCR Tube 200 µL | Sarstedt | 72.737 | |
Penicillin / Streptomycin | Gibco | 15140148 | |
Pipette (0.2-2 µL) | fisherbrand Elite | FBE00002 | |
Pipette (100-1000 µL) | fisherbrand Elite | FBE01000 | |
Pipette (20-200 µL) | fisherbrand Elite | FBE00200 | |
Pipette (2-20 µL) | fisherbrand Elite | FBE00020 | |
Propidium Iodide | Invitrogen | P1304MP | |
Reaction Tube 1.5 mL | Sarstedt | 72.690.300 | |
Sorvall ST 16R Centrifuge | Thermo Scientific | 75004240 | |
Thincert (24-well) | Greiner Bio-One | 662 641 | 0.4 µm pore diameter, 2x106 cm-2 pore density, transparent PET |
Tissue Culture Plate (24-well) | fisherbrand | FB012929 | |
Trypan Blue Solution | Sigma-Aldrich | T8154-20mL | |
Trypsin | Gibco | 15090046 |
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