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Este protocolo detalha a utilização de um método de extração assistida por micro-ondas à base de poliol para extrair compostos fenólicos e antioxidantes naturais, representando uma abordagem prática e ambientalmente sustentável para o desenvolvimento de extratos prontos para uso.
A utilização de polióis como solventes verdes para extração de compostos bioativos de materiais vegetais tem ganhado atenção devido à sua segurança e comportamento inerte com produtos químicos bioativos vegetais. Este estudo explora a extração sustentável de compostos fenólicos e antioxidantes naturais da casca de café usando o método de extração assistida por micro-ondas (MAE) com solventes à base de poliol: glicerina, propilenoglicol (PG), butilenoglicol (BG), metilpropanodiol (MPD), isopentildiol (IPD), pentilenoglicol, 1,2-hexanodiol e hexilenoglicol (HG). Foi realizada uma análise comparativa de extrações com solventes convencionais e não convencionais, com foco em seu impacto nos compostos bioativos do MAE, englobando parâmetros como conteúdo fenólico total (TPC), teor total de flavonoides (TFC) e atividades antioxidantes como o ensaio de sequestro de radicais 1,1-difenil-2-picrilhidrazil (DPPH), o ensaio de sequestro de radicais 2,2′-azino-bis(-3-etilbenzotiazolina-6-ácido sulfônico) (ABTS) e o ensaio de poder antioxidante redutor férrico (FRAP). Os maiores valores foram observados para TPC com extração aquosa de 1,2-hexanodiol (amostra de 52,0 ± 3,0 mg GAE/g), TFC com extração aquosa de 1,2-hexanodiol (amostra de 20,0 ± 1,7 mg QE/g), DPPH com extração aquosa de HG (amostra de 13,6 ± 0,3 mg TE/g), ABTS com extração aquosa de pentilenoglicol (amostra de 8,2 ± 0,1 mg TE/g) e FRAP com extração aquosa de HG (amostra de 21,1 ± 1,3 mg Fe (II) E/g). Esta pesquisa visa avançar a tecnologia de extração ecologicamente correta por meio de componentes naturais de plantas, promovendo a sustentabilidade ao minimizar o uso de produtos químicos perigosos e reduzir o tempo e o consumo de energia, com aplicações potenciais em cosméticos.
Atualmente, há uma tendência global de conscientização ambiental na indústria da beleza, levando os fabricantes a se concentrarem em tecnologia verde para extração de componentes vegetais usando alternativas sustentáveis1. Normalmente, solventes tradicionais, como etanol, metanol e hexano, são usados para extrair componentes fenólicos vegetais e antioxidantes naturais2. No entanto, a presença de resíduos de solventes nos extratos vegetais representa um risco potencial para a saúde humana, induzindo irritação cutânea e ocular3, particularmente no que diz respeito à sua aplicação em cosméticos. Cons....
Os detalhes dos reagentes e dos equipamentos utilizados neste estudo estão listados na Tabela de Materiais.
1. Preparação experimental
Efeito de solventes polióis e solventes convencionais sobre o conteúdo de fenólicos totais, teor de flavonóides totais, ensaios antioxidantes DPPH, FRAP e ABTS
A polaridade do solvente deve ser compatível com a das moléculas ativas direcionadas para melhorar a eficiência de extração de substâncias bioativas das plantas22. Experimentos foram conduzidos usando vários solventes (água, etanol, glicerina, propilenoglicol, butilenoglicol, metilpropanodiol, isopentildiol, .......
Vários fatores desempenham um papel crucial na implementação bem-sucedida do MAE, como o conteúdo fitoquímico dos componentes da planta, duração da extração, temperatura, potência de micro-ondas, relação sólido-líquido e concentração de solvente13. As plantas normalmente exibem perfis variados de fitoquímicos; Assim, a seleção de plantas naturais ricas em antioxidantes e compostos fenólicos é essencial23. Além disso, constituintes bioativos distintos e.......
Os autores não têm nada a divulgar.
Este estudo foi financiado pela Universidade Mae Fah Luang. Os autores gostariam de agradecer ao Instituto de Chá e Café da Universidade Mae Fah Luang por facilitar a conexão entre os pesquisadores e os agricultores locais em relação à aquisição de amostras de casca de prata de café.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
1,2-Hexanediol | Chanjao Longevity Co., Ltd. | ||
2,2 -Azino-bis 3 ethylbenzothiazoline-6-sulfonic acid diammonium salt (ABTS) | Sigma | A1888 | |
2,2-Diphenyl-1-picrylhydrazyl (DPPH) | Sigma | D9132 | |
2,4,6-Tri(2-pyridyl)-s-triazine (TPTZ) | Sigma | 93285 | |
2-Digital balance | Ohaus | Pioneer | |
4-Digital balance | Denver | SI-234 | |
6-hydroxy-2,5,7,8 tetramethylchroman -2-carboxylic acid (Trolox) | Sigma | 238813 | |
96-well plate | SPL Life Science | ||
Absolute ethanol | RCI Labscan | 64175 | |
Acetic acid | RCI Labscan | 64197 | |
Aluminum chloride | Loba Chemie | 898 | |
Automatic pipette | Labnet | Biopett | |
Butylene glycol | Chanjao Longevity Co., Ltd. | ||
Ethos X advanced microwave extraction | Milestone Srl, Sorisole, Italy | ||
Ferrous sulfate | Ajex Finechem | 3850 | |
Folin-Ciocalteu's reagent | Loba Chemie | 3870 | |
Freezer SF | Sanyo | C697(GYN) | |
Gallic acid | Sigma | 398225 | |
Grinder | Ou Hardware Products Co.,Ltd | ||
Hexylene glycol | Chanjao Longevity Co., Ltd. | ||
Hydrochloric acid (37%) | RCI Labscan | AR1107 | |
Iron (III) chloride | Loba Chemie | 3820 | |
Isopentyldiol | Chanjao Longevity Co., Ltd. | ||
Methanol | RCI Labscan | 67561 | |
Methylpropanediol | Chanjao Longevity Co., Ltd. | ||
Pentylene glycol | Chanjao Longevity Co., Ltd. | ||
Potassium persulfate | Loba Chemie | 5420 | |
Propylene glycol | Chanjao Longevity Co., Ltd. | ||
Quercetin | Sigma | Q4951 | |
Refrigerated centrifuge | Hettich | ||
Sodium acetate | Loba Chemie | 5758 | |
Sodium carbonate | Loba Chemie | 5810 | |
Sodium hydroxide | RCI Labscan | AR1325 | |
Sodium nitrite | Loba Chemie | 5954 | |
SPECTROstar Nano microplate reader | BMG- LABTECH | ||
SPSS software | IBM SPSS Statistics 20 | ||
Tray dryer | France Etuves | XUE343 |
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