JoVE Logo
Yazarlar
Bize Ulaşın

Oturum Aç

Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliği gereklidir. Oturum açın veya ücretsiz deneme sürümünü başlatın.

Bu Makalede

  • Özet
  • Özet
  • Giriş
  • Protokol
  • Sonuçlar
  • Tartışmalar
  • Açıklamalar
  • Teşekkürler
  • Malzemeler
  • Referanslar
  • Yeniden Basımlar ve İzinler

Özet

Burada, bağışıklık hücreleri ışık sayfalık mikroskobu kullanarak üç boyutlu (3D) kolajen dizey içinde gömülü görselleştirmek için bir iletişim kuralı mevcut. Bu iletişim kuralı da hücre göç 3D iz sürmeyi ayrıntılandırdığı. Bu iletişim kuralı 3D Matris hücrelerinde süspansiyon diğer türleri için istihdam edilebilir.

Özet

Vivo, harekete geçirmek, yayılması ve bağışıklık hücreleri tüm fonksiyonu bir ortamında üç boyutlu (3D), örneğin lenf düğümleri veya doku oluşur. Tarihe kadar iki boyutlu (2D) yüzeyler, hücre kültürü plakaları veya coverslips gibi çoğu vitro sistemde güveniyor. En iyi şekilde kopyalama fizyolojik şartlarda vitroiçin biz basit 3D kollajen matris kullanmaktadır. Kollajen hücre dışı matriks (ECM) ana bileşenlerini ve yaygın olarak 3B matrisleri oluşturmak için kullanılan. 3D görüntüleme için (tek uçak aydınlatma mikroskobu da bilinir) son zamanlarda gelişmiş ışık sayfalık mikroskobu teknoloji yüksek satın alma hızı, büyük penetrasyon derinliği, düşük beyazlatma ve photocytotoxicity bulunmamaktadır. Ayrıca, ışık sayfalık mikroskobu özellikle uzun vadeli ölçüm için avantajlıdır. Burada nasıl ayarlamak ve insan bağışıklık hücreleri, Örneğin birincil insan sitotoksik T lenfositler (CTL) işlemek en iyi duruma getirilmiş bir protokolü açıklar ve doğal öldürücü (NK) hücreleri canlı hücre görüntüleme için ışık sayfalık mikroskobu ile kullanım için 3D kollajen matris ve sabit örnekleri. Resim alma ve çözümleme hücre göç prosedürü sunulmaktadır. Belirli bir odak kritik adımlar ve numune hazırlama ve veri analizi için etkenler vurgulamak için verilir. Bu iletişim kuralı bir 3D kollajen Matris hücrelerinde süspansiyon diğer türleri için istihdam ve bağışıklık hücreleri için sınırlı değildir.

Giriş

Geçiş hakkında birçok bilgi hücreleri gelir üzerinden 2D deneyleri1,2,3, hangi normal bir cam veya plastik yüzey bir kültür/görüntüleme yapılmaktadır çanak. Ancak, fizyolojik bir senaryo, çoğu durumda, hücre dışı matriks (ECM) belirleyici bir rol oynayan bir 3D microenvironment gerektirir. ECM sadece uygun hücre morfolojisi korumak için 3D yapısı temel sağlar ama aynı zamanda yaşam sinyalleri veya bir en uygun birçok hücre4,5 / işlemesi için yön ipuçları sunmaktadır. Bu nedenle, bir 3D çevre hücresel işlevler ve davranış fizyolojik içeriği daha iyi yansıtan bir ortamda daha iyi tanımlamak için gereklidir.

İnsan vücudunda en hücreleri özellikle bağışıklık hücreleri, onların işlevler'in altında bir 3D senaryo uygulamayın. Örneğin, aktive T hücreleri hedef hücreler için arama doku devriye, saf T hücreler lenf düğümleri sırasında geçiş modu ve makine ekstraselüler karşılık gelen için adapte olmuşlardır soydaş antijen sunan hücreler için arama üzerinden göç çevre3,6,7. 3D kollajen jel yaygın bir iyi kurulmuş ve iyi karakterize 3D hücre kültür sistemi8,9,10kullanılmıştır. Önceki çalışmalarımız birincil insan lenfosit son derece mobil ve yaklaşık 4.8 µm/dk % 0.25 kollajen tabanlı matris11' deki ortalama bir hızda geçiş gösterir. Sitoiskeleti düzenlenmesi Hücre geçiş12içinde önemli bir rol oynar. Kanıt biriken lenfosit göç sadece tek bir mod geçerli değildir henüz yer, microenvironment, sitokinler, kemotaktik degradeler bağlı olarak bazı geçiş davranışı arasında geçiş yapabilirsiniz ve ekstraselüler hangi melodi sinyalleri gösterir göçmen davranış farklı yolu 3.

Bağışıklık hücre fonksiyonları ve davranış, örneğin, göç, çıkıntı oluşumu veya veziküler ulaşım, güvenilir bir şekilde çözümlemek için görüntüleri nispeten büyük 3B cilt olarak hızlı ve güvenilir bir şekilde elde edebilmek için büyük avantaj taşımaktadır. 3D görüntüleme için tatmin edici bir çözüm13,14(tek uçak aydınlatma mikroskobu da bilinir) son zamanlarda gelişmiş ışık sayfalık mikroskobu teknoloji sunmaktadır. Edinme görüntüleme sırasında ince bir statik hafif levha örnek aydınlatmak için oluşturulur. Bu şekilde, odak düzlem üzerinde geniş bir alanda aynı anda uçak-hücreleri etkilemeden aydınlatılmış. Bu özellik, bir büyük ölçüde azaltılmış ağartma ve photocytotoxicity ile bir yüksek satın alma hızı sağlar. Bu yazıda, birincil insan bağışıklık hücreleri ışık sayfalık mikroskobu kullanarak görselleştirmek ve 3D senaryosunda geçiş analiz anlatan.

Protokol

Bu çalışmada insan malzeme (lökosit azaltma sistem odaları insan kan bağış) ile yürütülen araştırma Yerel Etik Komitesi (bildirim 16.4.2015 (84/15; dan tarafından yetki Prof. Dr. Rettig-Stürmer)) ve karşılık gelen kuralları izler.

1. hazırlanması etkisiz kollajen çözüm (500 µL)

  1. Soğutulmuş kollajen hisse senedi çözüm (10.4 mg/mL) 400 µL hücre kültür başlık altında bir steril 1,5 mL tüp aktarın. Yavaş yavaş, 50 µL 10 x (pH 7,0-7,3) PBS'ye soğutulmuş kollajen hisse senedi çözüm 400 µL soğutulmuş ekleyin. Çözüm yavaşça tüp fayans tarafından karıştırın.
    Not: Bölüm 1 tüm adımları bir hücre kültür başlık altında yapılmalıdır.
  2. 0.1 M NaOH 8 µL 1.1--dan kolajen çözüm 500 µL ekleyin. pH 7.2-7,6 için ayarlamak için. PH Ölçüm Çubuğu Strip kullanın (pH Aralığı: 6-10) karışımı pH değerini belirlemek için.
    Not: Birimleri kollajen farklı gruplar için farklı olabilir. Yavaş yavaş hava kabarcıklarını önlemek için karışık olması NaOH çözümü vardır. Karışım kollajen jelleşme önlemek için buz üstünde tutulmalıdır.
  3. 2 eklemek son hacim 500 µL. için yapmak için steril GKD2O µL iyice karıştırın ve bu kollajen çözüm (8.32 mg/mL) buz üzerinde veya 4 ° C'de daha fazla kullanmak kadar saklamak.
    Not: Bu durum altında etkisiz kollajen kullanılabilir için 24 h hava kabarcıklarını önlemek için Aliquots tavsiye edilmez.

2. numune hazırlama için kılcal kullanarak ışık sayfalık floresans mikroskobu

  1. Fluorescently istenen birincil floresan boyalar15 veya floresan proteinler11 ilgi canlı hücreleri daha önce açıklandığı gibi etiketleyin.
  2. 1 × 106 hücre hücre kültür başlık altında bir steril 1,5 mL tüp içine aktarın. 200 x g 8 dk. atmak için de tüp süpernatant santrifüj kapasitesi ve Pelet kültür orta 200 µL içinde resuspend.
    Not: 5 × 106 hücre/mL hücre yoğunluğu görselleştirme sitotoksik T lenfositler (CTL) ve doğal öldürücü (NK) hücreler için özellikle insan bağışıklık hücre göç için önerilir.
  3. Etkisiz kollajen çözüm 85,9 µL 1,3 ekleyin. 2.2 üzerinden hücre süspansiyon. ve 2.5 mg/mL bir kollajen konsantrasyon ulaşmak için düzgün karıştırın. Hücre/kollajen karışımı buz başlıklı açık bırak.
    Not: kollajen istenen konsantrasyonu N mg/mL olduğunu varsayalım, ses düzeyini nötralize kollajen çözüm (için 200 µL hücre süspansiyon) = 200 × N /(8.32-N)
  4. Daha sonra eşleşen pistonu kılcal damar koymak (iç çap ~ 1 mm) pistonu kılcal dışında 1 mm kadar. Pistonu kültür orta (Şekil 1A) daldırma tarafından ıslak.
    Not: Bu adım kapiller hücre/kollajen karışımı içine daldırma hava kabarcıklarını önlemek için yardımcı. Kılcal damar ve pistonu steril olması gerekmez.
  5. Kılcal 2.3 hücre/kollajen karışımından içine daldırma. Yavaşça çek pistonu geri için 10-20 mm (Şekil 1B). Kılcal dış duvarına kalan kollajen çözümü kaldırmak için % 70 etanol sprey ile nemlendirilmiş bir kağıt havlu ile silin.
  6. Kil 5 mL tüp iç duvarında modelleme ile kılcal dağ ve hücre/kollajen mix kılcal (Şekil 1 c) kenarına doğru itin.
  7. Kılcal 37 ° C % 5 CO2 kollajen polimerizasyon için 1 h için tutun.
  8. Kültür orta (yaklaşık 1-2 mL) 5 mL tüp ekleyin. Dikkatlice dışarı polimerli kollajen çubuk yaklaşık 3/4 Orta (Şekil 1 d) asılı kollajen ortamına basın.
  9. Kılcal böyle, % 5 CO2 orta kollajen demiriyle equilibrate başka bir 30 dk 37 ° C'de tutun.
    Not: Daha sonra kollajen çubuk geri kapiller ve kültürlü daha fazla kullanılmadan önce daha da çekilebilir.

3. resim alma ışık sayfalık mikroskobu kullanarak

  1. Derleme üreticinin yönerge göre örnek odası.
  2. Kuluçka ve 37 ° C (canlı hücre yalnızca görüntüleme için) örnek odasına ısıtmak için mikroskop açın.
  3. Kılcal örnek odasında yerleştirin ve ilgi alanı resim alma için bulmak için örnek bulun.
  4. Karşılık gelen lazer aktif hale getirin. Aşağıdaki ayarları ayarla: lazer güç, pozlama süresi, adım-z-yığın, başlangıç ve bitiş konumları z-yığın ve canlı hücre görüntüleme için zaman aralığı boyutunu.
    Not: Örneğin, Şekil 2 ' deki örnek yansıma her 40 adım büyüklüğü 1 µm ile 37 ° c 6 h s (toplam kalınlığı: 538 µm). Lazer güç 30 Bayan x-y yönünde piksel boyutunda bir çekim hızı ile %1 0,23 µm olduğunu.
  5. Resim alma başlatın.

4. otomatik izleme çözümlemesi

  1. Dosya dönüştürücüsünü açıkken, (*.ims) yazılım dosya biçimine dönüştürmek için görüntü dosyaları seçmek için Dosya Ekle'yi tıklatın. Gözat ' ı tıklatın ve dönüştürülmüş dosyaları kaydetmek için bir klasör seçin. Tüm Başlat' ı tıklatın.
  2. Analiz yazılımı açın. Aşmak' ı tıklatın. Dosya gidin ve Aç' ı tıklatın, ardından çözümlenmesi için görüntü dosyasını seçin.
    Not: dosya boyutu büyük ise bu adım zaman alabilir. 1 terabayt (TB) büyük dosyaları tavsiye edilmez tek bir deneme için işlem olarak böyle büyük dosyalardır son derece Hesaplamalı kapasite talep.
  3. Yeni noktalar Ekleseçeneğini tıklatın. İşlemi tüm görüntü sonundakutuyu işaretleyin. İleri' yi tıklatın.
  4. X için koordinatları girin ve y (için piksel) bölgenin ilgi tanımlamak için. (Zaman ve z-pozisyon) çözümlemek için kare sayısını girin. İleri' yi tıklatın.
  5. İzlenmesi gereken nesneleri içerir, hedef kanal Kaynak kanalıaşağı açılan listesinde seçin. Tahmini xy çapı (µm) girin. İleri' yi tıklatın.
    Not: Tahmini xy çapı ortalama çap x-y boyut izlenmesi gereken nesneler olduğunu.
  6. Kalitesi' ni tıklatın. (Nesneler) hücrelerin çoğu dahil edilecek bir eşik ayarlamak. İleri' yi tıklatın.
  7. İstenen algoritma (Autoregressive hareketli önerilir) seçin. Maksimum uzaklığı girin (20 µm önerilir) ve maksimum boşluk boyutu (3 veya 2 önerilir). İşlemi tüm görüntü son olarak'ıtıklatın.
    Not: Max mesafe ve en büyük boşluk boyutu parça kırmak için iki eşikleri vardır. Aynı nesne arasındaki uzaklığı Max mesafe aştığında daha ayrıntılı olarak, iki sürekli çerçevelerde bu nesne daha sonra çerçeve içinde yeni bir nesne olarak kabul edilecektir. Bazen satın alma sırasında aynı nesne için birkaç kare kaybolur ve tekrar ortaya. Bu durumda, yalnızca bu nesne içinde en büyük boşluk boyutu yeniden görüntülenir zaman, aynı nesne olarak değerlendirilir.
  8. Filtre türü tıklatın ve istenmeyen parçaları dışlamak için seçeneği seçin.
    Not: Bu isteğe bağlı bir adımdır.
  9. İleri ' yi tıklatın ve sonra son' u tıklatın.
    Not: Bu adımı saat bilgisayar performansına bağlı olarak gün kadar sürebilir.
  10. Parça Düzenle'yi tıklatın ve Doğru Driftseçin. (Translasyonel Drift önerilir) uygun algoritma seçin. İstediğiniz Sonuç veri kümesi boyutu seçin (Yeni boyutu geçerli boyutuna eşit tavsiye edilir). Tamam' ı tıklatın.
    Not: Bu sadece bir adımdır gerekli resim alma sırasında kolajen sürüklendi.
  11. İstatistikler ' i tıklatın ve Yapılandırdığınız liste, görünür istatistik değerleriseçin. Kontrol seçenekleri ilgi olmak (koordinatları, hız ve benzeri gibi) ihraç. Tamam' ı tıklatın.
  12. Tüm istatistiklerini dosyasına dışa aktar'ı tıklatın ve dosya adı girin.

5. fiksasyon ve ayirt kollajen matrisler hücrelerinin boyama

  1. %4 paraformaldehyde (PFA, PBS) 1.000 µL kimyasal bir başlık altında 5 mL tüp içine aktarın.
    Not: PFA oda sıcaklığına dengeli olmalıdır.
  2. Kılcal 2,9 dan polimerli kollajen ile daldırma. İngiltere'de yılın çözüm içine (için ~ 5 mm) ve kılcal ( Şekil 1 ciçinde gösterildiği gibi) kil modelleme ile 5 mL tüp iç duvara monte edin.
  3. Kollajen çubuk yarısı asılı 's kadar İngiltere'de yılın çözüm (Şekil 1 d) pistonu hafifçe bastırın. Tüp, oda sıcaklığında 20 dakika tutun.
  4. Kılcal damar içinde kollajen oltayı getir pistonu geri çek. Kılcal almak ve İngiltere'de yılın atın.
  5. Kılcal damar taze bir tüp dağ ve PBS 1 mL ekleyin. Kılcal PBS içinde dalmış emin olun.
  6. Kollajen çubuk yarısı asılı 's kadar çözümde pistonu hafifçe bastırın. Kılcal kil modelleme ile iç duvar bağlama.
  7. Tüp 5 min için oda sıcaklığında tutmak.
  8. 5.4 yineleyin. -5.7 için başka bir 2 kere.
  9. Kılcal damar içinde kollajen oltayı getir pistonu geri çek. PBS atmak. Engelleme/permeabilization arabellek (PBS + % 1 BSA + %0,1 non-iyonik yüzey aktif) 1-2 mL tüp içine aktarmak ve 5.6 tekrarlayın.
    Not: BSA (% 1) %5 serum ikincil Ab içinde büyüdü hayvan tarafından değiştirilebilir.
  10. Tüp 30-60 dakika oda sıcaklığında tutmak.
  11. Kılcal damar içinde kollajen oltayı getir pistonu geri çek. Permeabilization arabellek atmak. 200-500 µL engelleme/permeabilization tampon birincil antikor, transfer ve çözüm içine çubuk ihraç etti.
  12. Tüp 1 h için oda sıcaklığında tutmak.
  13. Kollajen çubuk 3 kez ile PBST (PBS + % 0,1 - iyonik olmayan yüzey aktif) 5.4 içinde açıklandığı gibi yıkayın. -5,8.
  14. Oda sıcaklığında 1 h için engelleme/permeabilization arabellekte ikincil antikor çubuk kuluçkaya. Işıktan tutun.
  15. Kollajen çubuk 3 kez PBS ile 5.4 içinde açıklandığı gibi yıkayın. -5,8.
  16. Kılcal damar içinde kollajen oltayı getir pistonu geri çek. Örnekleri PBS içinde görüntüleme kadar tutun.
  17. Örnekleri 3'te açıklandığı gibi inceden inceye gözden geçirmek.

Sonuçlar

Çıkıntı oluşumu T hücre göç sırasında aktin bağımlı olan son derece dinamik bir süreçtir. Birincil insan CTL oluşumu çıkıntı görselleştirmek için geçici11' den önce açıklandığı gibi CTL aktin sitoiskeleti etiketlemek için erimiş mEGFP protein transfected. Bir gün transfection sonra hücreleri kollajen matris içinde gömülü. Görüntü yığınları alınan her 40 s ışık sayfalık mikroskobu kullanılarak 37 ° C'de 1 µm boyut...

Tartışmalar

Vivo hücreleri, özellikle bağışıklık hücreleri, çoğunlukla bir 3D microenvironment deneyim, ancak çoğu vitro deneyleri bir 2D yüzeyi, hücre kültürü kaplamalar, Petri yemekler veya coverslips, örneğin devam etmektedir. Kanıt ortaya çıkan geçiş desen bağışıklık hücrelerinin 2D ve 3D senaryoları17arasında farklılık gösterir. Ayrıca, tümör hücrelerinin ifade profilleri de 2D ve 3D kültürlü doku18,

Açıklamalar

Yazarlar hiçbir mali veya ticari çıkar çatışması beyan ederim.

Teşekkürler

Biz klinik Hemostaseology Enstitüsü ve kan nakli tıp donör kan sağlamak için teşekkür ederiz; Carmen Hässig ve Cora hoca mükemmel teknik yardım için. Biz için değiştirilmiş değerleri vektör Jens Rettig (Saarland Üniversitesi), Roland Wedlich-Söldner (Münster Üniversitesi) orijinal LifeAct-yakut inşa etmek için ve Christian Junker (Saarland Üniversitesi) LifeAct-mEGFP yapı oluşturmak için teşekkür ederiz. Bu proje Sonderforschungsbereich 1027 (proje A2 BQ) ve 894 (projeye A1 M.H.) tarafından finanse edildi. Işık sayfalık mikroskop DFG tarafından finanse edildi (GZ: INST 256/4 19-1 FUGG).

Malzemeler

NameCompanyCatalog NumberComments
Fibricol, bovine collagen solutionAdvanced Biomatrix #5133-20MLCollagen matrix
0.5 M NaOH SolutionMerck1091381000for neutralizing Fibricol solution
Ultra-Low melting agaroseAffymetrix32821-10GMSample preparation in low c[Col]
Dynabeads Untouched Human CD8 T Cells KitThermo Fisher11348DIsolation of primary human CD8+ T cells from PBMC
Dynabeads Human T-Activator CD3/CD28 for T Cell Expansion and ActivationThermo Fisher11132DActivation of CTL populations
Human recombinant interleukin-2Thermo FisherPHC0023Stimulation of cultured CTL
P3 Primary solution kitLonzaV4XP-30XXTransfection
α-PFN1 antibody, rabbit, IgGAbcamab124904IF
Alexa Fluor 633 PhalloidinThermo FisherA22284IF
CellMask Orange Plasma membrane StainThermo FisherC10045Fluorescent cell label
Tween 20SigmaP1379-250mLIF
Triton X-100Eurobio018774IF
DPBS Dulbecco's phopsphate buffered salineThermo Fisher14190250IF
Bovine serum albuminSigmaA9418-100GIF
Goat α Rabbit 568, IgG, rabbitThermo FisherA-11011IF
Lightsheet Z.1 (Light-sheet microscopy)ZeissN.A.
Cell culture hoodThermo FisherHeraSafe KS
Cell culture incubator HERACell 150i Thermo FisherN.A.
Centrifuge 5418 and 5452EppendorfN.A.
PippettesEppendorf3123000039, 3123000020, 3123000063
Pippette tipsVWR89079-444, 89079-436, 89079-452 
15 mL tubesSarstedt 62.554.002
Capillaries 50 µLVWR (Brand)613-3373Zeiss LSFM sample preparation
Plunger for capillariesVWR (Brand)BRND701934"Stamps with Teflon tip" LSFM sample preparation
MColorPhast pH stipsMerck1095430001to test pH of neutralized Fibricol
BD Plastipak 1mL syringesBDZ230723 ALDRICHAlternative sample preparation
Modeling clay (Hasbro Play-Doh A5417EU7)Play-DohN.A.
Imaris file converterBitplaneavailable at http://www.bitplane.com Convert imaging files to Imaris file format
Imaris 8.1.2 (MeasurementPro, Track, Vantage)Bitplaneavailable at http://www.bitplane.com Analysis of 3D and 4D imaging data

Referanslar

  1. Decaestecker, C., Debeir, O., Van Ham, P., Kiss, R. Can anti-migratory drugs be screened in vitro? A review of 2D and 3D assays for the quantitative analysis of cell migration. Med Res Rev. 27 (2), 149-176 (2007).
  2. Doyle, A. D., Petrie, R. J., Kutys, M. L., Yamada, K. M. Dimensions in cell migration. Curr Opin Cell Biol. 25 (5), 642-649 (2013).
  3. Krummel, M. F., Bartumeus, F., Gerard, A. T cell migration, search strategies and mechanisms. Nat Rev Immunol. 16 (3), 193-201 (2016).
  4. Entschladen, F., et al. Analysis methods of human cell migration. Exp Cell Res. 307 (2), 418-426 (2005).
  5. Meredith, J. E., Fazeli, B., Schwartz, M. A. The extracellular matrix as a cell survival factor. Mol Biol Cell. 4 (9), 953-961 (1993).
  6. Friedl, P., Wolf, K. Plasticity of cell migration: a multiscale tuning model. J Cell Biol. 188 (1), 11-19 (2010).
  7. Ridley, A. J., et al. Cell migration: integrating signals from front to back. Science. 302 (5651), 1704-1709 (2003).
  8. Shamir, E. R., Ewald, A. J. Three-dimensional organotypic culture: experimental models of mammalian biology and disease. Nat Rev Mol Cell Biol. 15 (10), 647-664 (2014).
  9. Ravi, M., Paramesh, V., Kaviya, S. R., Anuradha, E., Solomon, F. D. 3D cell culture systems: advantages and applications. J Cell Physiol. 230 (1), 16-26 (2015).
  10. Fang, Y., Eglen, R. M. Three-Dimensional Cell Cultures in Drug Discovery and Development. SLAS Discov. 22 (5), 456-472 (2017).
  11. Schoppmeyer, R., et al. Human profilin 1 is a negative regulator of CTL mediated cell-killing and migration. Eur J Immunol. 47 (9), 1562-1572 (2017).
  12. Mogilner, A., Oster, G. Cell motility driven by actin polymerization. Biophys J. 71 (6), 3030-3045 (1996).
  13. Santi, P. A. Light sheet fluorescence microscopy: a review. J Histochem Cytochem. 59 (2), 129-138 (2011).
  14. Power, R. M., Huisken, J. A guide to light-sheet fluorescence microscopy for multiscale imaging. Nat Methods. 14 (4), 360-373 (2017).
  15. Zhou, X., et al. Bystander cells enhance NK cytotoxic efficiency by reducing search time. Sci Rep. 7, 44357 (2017).
  16. Lammermann, T., et al. Rapid leukocyte migration by integrin-independent flowing and squeezing. Nature. 453 (7191), 51-55 (2008).
  17. Petrie, R. J., Yamada, K. M. At the leading edge of three-dimensional cell migration. J Cell Sci. 125 (Pt 24), 5917-5926 (2012).
  18. Imamura, Y., et al. Comparison of 2D- and 3D-culture models as drug-testing platforms in breast cancer). Oncol Rep. 33 (4), 1837-1843 (2015).
  19. Lee, J. M., et al. A three-dimensional microenvironment alters protein expression and chemosensitivity of epithelial ovarian cancer cells in vitro. Lab Invest. 93 (5), 528-542 (2013).
  20. Luca, A. C., et al. Impact of the 3D microenvironment on phenotype, gene expression, and EGFR inhibition of colorectal cancer cell lines. PLoS One. 8 (3), e59689 (2013).
  21. Jemielita, M., Taormina, M. J., Delaurier, A., Kimmel, C. B., Parthasarathy, R. Comparing phototoxicity during the development of a zebrafish craniofacial bone using confocal and light sheet fluorescence microscopy techniques. J Biophotonics. 6 (11-12), 920-928 (2013).
  22. Graf, B. W., Boppart, S. A. Imaging and analysis of three-dimensional cell culture models. Methods Mol Biol. 591, 211-227 (2010).
  23. Helmchen, F., Denk, W. Deep tissue two-photon microscopy. Nat Methods. 2 (12), 932-940 (2005).
  24. Huisken, J., Swoger, J., Del Bene, F., Wittbrodt, J., Stelzer, E. H. Optical sectioning deep inside live embryos by selective plane illumination microscopy. Science. 305 (5686), 1007-1009 (2004).
  25. Verveer, P. J., et al. High-resolution three-dimensional imaging of large specimens with light sheet-based microscopy. Nat Methods. 4 (4), 311-313 (2007).
  26. Truong, T. V., Supatto, W., Koos, D. S., Choi, J. M., Fraser, S. E. Deep and fast live imaging with two-photon scanned light-sheet microscopy. Nat Methods. 8 (9), 757-760 (2011).
  27. Haycock, J. W. 3D cell culture: a review of current approaches and techniques. Methods Mol Biol. 695, 1-15 (2011).
  28. Mestas, J., Hughes, C. C. Of mice and not men: differences between mouse and human immunology. J Immunol. 172 (5), 2731-2738 (2004).

Yeniden Basımlar ve İzinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya resimlerini yeniden kullanma izni talebi

Izin talebi

Daha Fazla Makale Keşfet

mm noloji ve enfeksiyonsay 136k sayfal k mikroskobuu ak k mikroskobuinsan ba kl k h crelerido al katil h crelersitotoksik T lenfositlerizleme h cre3D g r nt lemecanl h cre h cre fiksasyonu kollajen g r nt leme

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Gizlilik

Kullanım Şartları

İlkeler

Bize Ulaşın

KÜTÜPHANEYE TAVSİYE ET

JoVE HABER BÜLTENLERİ

Araştırma

Eğitim

Yazarlar

Kütüphaneciler

JoVE Hakkında

Telif Hakkı © 2020 MyJove Corporation. Tüm hakları saklıdır