NIH NS43798 (DMB); NIH F31 NS058138 (MRD); P30-NS045758 (CBSCR) ve Amerika Felçli Gaziler # 2451 (DMB) ve # 2707 (MRD).

1. Yukarı / Aşağı Plantar Von Frey Test Testin amacı, daha kuvveti uyaran gelen pençe çekme ortaya çıkartılması için gerekli olan kadar ölçerek dokunsal hassasiyeti belirlemektir. 4,56 ve 6,10 olan aralığı arasında ticari olarak mevcut kalibre Von Frey kılı monofilamentlerin pençe teşvik etmek için kullanılır. Görsel veya proprioseptif girişi dayalı yanıtlar geçersiz nedenle uyarıcı veya Propriosepsiyon görselleştirme gibi diğer duyusal girdi dokunsal eşik tedbirleri etkilemesi için. Rat tahıl yemek yaparken cilt dokunmadan monofilament görselleştirme önlemek için, biz sadece test edin. Bu bilişsel çeldiriciye, aynı zamanda tüm sıçanlar konfor Benzer temel düzeyde test edilmesini sağlar. Çok dokunsal girişi daha proprioseptif nedeniyle tepkileri önlemek için, monofilament kaldırır veya pençe hareket çalışmalar dahil değildir. YUKARI-AŞAĞI YAKLAŞIM A. Klorofenoller PROSEDÜRLER <ol><li> Mevcut meyve cereafareler yiyecek ödül tanımak ve aramak çok ev kafeste l. Sıçanlar gentling veya test sürecinde herhangi bir noktada yoksun gıda olması gerekmez. </li><li> Sıçanlar onlar evde kafes içinde meyve tahıl yemek bir kez test ortamı ve prosedürlere acclimated hazırdır. Aklimasyonu her ama daha gerekli olabilir 10 dakika en az 4 seans içinde oluşur. On dakikalık seanslar sıçan oturumun sonuna kadar tok olmazlar böylece kullanılır. </li><li> Meyve tahıl üç adet test odasında sıçan yerleştirin. Ek meyve tahıl yedikleri gibi bir zaman ise bir ile iki sağlayın. Rat yemek yaparken sıçan pençesini aşağıya hareket alışık olur böylece üçüncü oturumunda, tel zemin altında el hareketleri üretir. Dördüncü oturumunda, yaklaşık kez ayaklarında, plantar yüzeyi on sunum olmak üzere toplam bir dakika için 5.18 monofilament geçerlidir. Bir naif sıçan bu alt eşik uyaranlara cevap olmamalıdır. </li><li> Uzun boyluy tüketilen tahıl parçalarını, idrar ve dışkılama, don ve damat davranışların sıklığı. Donma davranış iki şekilde oluşur: a) sıçan arka duvarına yakın genellikle yere çömeldi düşük veya sınav dönük ve hareketsiz kalır b) sıçan kafesi ortasında eğilmiş ve genellikle diş gevezelik . Donma davranışlar uzun süre devam edebilir. </li><li> Test edilmeğe hazır hale A mutedil sıçan 10 dakika boyunca yaklaşık olarak sürekli yiyecek. Bu kafes içinde kolaylıkla hareket ederler ve son tükettikten sonra çok hızlı bir şekilde meyve tahıl arayacak. Önemlisi, sıçan yeme durmayacak ya da tel döşeme veya pençe için monofilament uygulama altında el hareketleri ile avunmak. </li></ol> YUKARI-AŞAĞI YAKLAŞIM B. TEST İŞLEMLERİ <ol><li> Sıçanlar insan işitsel aralık üzerindedir sıkıntı seslenişleri üretmek. Onlar bu voc duyamıyor böylece test için bekleyen Rats ayrı bir odada tutulmalıalizations. </li><li> Von Frey Saç testi yukarı-aşağı için uygun olan omurilik yaralanması olan sıçanlarda uzuvlarıyla birlikte ağırlık taşıyan göstermek zorundadır. Monofilament uygulama saç virajlı önce pençe taşır, çünkü sıçan destek veremiyoruz Limbs güvenilir bir şekilde test edilemez. </li><li> Meyve kabuğu 2 veya 3 adet test odasında sıçan yerleştirin. Sıçanlar her VFH uygulama esnasında yemek gerekir. </li><li> HL ilk test başlatmak belirlemek için bir kalıp döndürün. Hatta numaraları sağ pençe temsil ve tek sayılar sol temsil eder. </li><li> 5.18 monofilament ile test oturumu başlayın. Çekilme tepkiler normal ve SKY sıçanlarda 4.56 den 6.10 kadar oluşabilir ve 5.18 monofilament aralık ortasına düşer. </li><li> Bir sıçan, çömelir donuyor veya yemez ise bir monofilament uygulama yapmayınız. Tester bekler, bazen bu şartları çözeceğini ve testleri devam edebilirsiniz. Sıçan app bu davranışlar ve toplam süreyi görüntüleraratus başından ertesi gün test ve tekrar test durdurmak, 20 dakikadır. Bu gerçekleştikten artabilir olarak bu davranışlar sergileme iken sıçan çıkarmayın. Sıçan, bu davranışların takviye önlemek için dokunmadan önce, bu kalıpları kıran kadar bekleyin. </li><li> Eğilir (Şekil 1A bakınız) kadar ayak pedleri arasında arka ayaklarında, L5 plantar dermatom için monofilament dokunun. Bu pürüzsüz kararlı uygulama yaklaşık bir saniye sonra cilt çıkarın almalıdır. Cilt hassasiyeti bu alanlarda çok daha düşük olduğu gibi ayak pedleri herhangi bir bölümünü dokunmaktan kaçının. Bu tek dokunmatik bir deneme teşkil etmektedir. </li><li> Sıçan hızlı monofilament uzak pençe kaldırır zaman pozitif bir tepki oluşur. Geri çekilme yanıtı monofilament uygulama ile ilişkili olduğunu teyit etmek için monofilament kaldırılır zaman başlatılması gerekir. </li><li> Mo bilincinin diğer kanıtları da hayvan izlegibi seslendirme gibi nofilament dokunmatik, aşağı, geri veya test pençe bakarak pençe, sürekli pençe çekme yalama veya kulak seğirmesi. Bilgi formunda bunları unutmayın. Bu davranışları pençe çekme meydana zaman uyaranın supraspinal algı delil olarak hizmet vermektedir. </li><li> Bir pozitif tepki yoksa, bir sonraki düşük monofilaman uygulanır. Yanıt yok (negatif) varsa, bir sonraki daha yüksek monofilament kadar hareket ettirin. (Adaptasyon) engellemek için yeniden test öncesi bazal ateş geri gelmek duyu reseptörleri için her monofilament uygulama arasında 30 saniye bekleyin. </li><li> Eğer 10 çalışma var kadar olumlu veya olumsuz yanıtlarına göre arka ayak daha yüksek veya daha düşük monofilament uygulamaya devam edilir. Sonra diğer arka ayak üzerinde tekrarlayın. (Örneğin veri bakınız). </li><li> Proprioseptif girdi tanıtılması ve pençe kaldırmadan test edilebilir en yüksek VFH 6.10 olduğunu. Pençe monof önce kaldırır, çünkü 6.45VFH ve daha büyük kullanılmamalıdırilament eğilir. 6.10 hiç tepki yoksa daha sonra bir sonraki duruşma yine 6.10 uygulanacaktır. </li><li> Bir yanıt iptal edilmeli ve aşağıdakilerden birini uyaran uygulama veya pençe çekme sırasında oluşursa deneme yeniden test edilmelidir: <ol class="lalpha"><li> Rat sürekli yemek değildir. </li><li> Sıçan imkansız çekilme yanıtı ortaya çıkarır uygulanan kuvveti bilmek yapmak, monofilament eğilme önce uzak VFH uyaran hareket eder. </li><li> Pençe dokunma uyarısına ek olarak proprioseptif sağlayan VFH (önce ya da sonra VFH bükülür ya) tarafından kaldırılmaktadır. </li></ol></li><li> Bir test seansının genellikle her iki arka ayaklarında için en az 15 dakika içinde tamamlanabilir. </li></ol> YUKARI-AŞAĞI YAKLAŞIM C. BİLGİ İŞLEM <ol><li> Başarılı bir testi, her pençe için 10 ardışık denemeler olacaktır. </li><li> Dokunsal eşik değeri &amp; g pençe çekme üretir düşük olan monofilamane; sunumlar ve monofilament 3 veya daha fazla sunum% 50 (örneğin veri, eşikler ıçine edilir bakınız) verilecektir var. </li><li> Sadece 2 toplam çalışma ile monofilament bir deneme pozitif ve bir negatif bile eşik olarak seçilir. Uyaranın Çoklu sunumlar bu kuvvete tepki desen daha iyi göstergelerdir. </li><li> Testlerden en az% 50 üzerinde olumlu yanıtları üreten herhangi bir monofilaman varsa, sıçan 6,45 bir skor verilir. Bu sıçan rastgele şansın ötesinde 6.10 en yüksek sınanabilir monofilament tespit etmedi anlamına gelir. Bu monofilament sınanabilir aralığı daha yüksek sonraki değeri temsil ettiği için 6.45 değeri verilir. </li><li> Gram yürürlüğe sağ ve sol patilerini için eşik değeri dönüştürün. Gram kuvveti değerleri von Frey kılların tedarikçisi tarafından temin edilir. . Ikili yaralanmalar veri için iki pençeleri için eşik gram kuvvet elde etmek için birlikte ortalama edilebilirtek bir puan. </li></ol> 2. Dorsal VON FREY TESTİ Bu testin amacı da tipik plantar VFH yöntemler kullanılarak test edilemez böyle zayıf motor kontrolü ile sıçanlarda dokunma hassasiyeti belirlemektir. Bu dokunma gücü caydırıcı bir yanıt üretmek için gerekli ne kadar rakamlarla. Proprioseptif uyarılara yanıt önlemek için, pençe uygulama sırasında VFH tarafından hareket edildiği çalışmalar dahil değildir. Ayrıca, VFH kayıyor veya ayak dorsal yüzeyi boyunca fırçalanmış olduğu çalışmalar dahil değildir. SIRT VON FREY TESTİ İÇİN A. Klorofenoller PROSEDÜRLER <ol><li> Temel test ve omurilik yaralanması önce 10 dakika her dört seans için Nazik sıçanlar. </li><li> Kıç (Şekil 1B) aşağıda gösterildiği gibi maruz böylece gevşek küçük bir havlu sıçan sarın. Arka pençelerinde hafifçe yüzeyi üzerine oturtulmuş bir tablo içinde sıçan yerleştirin. Aynı kullanınrahat ama sıkı sarın ve her bir rat için basılı tutun. Masanın kenarında kolunuzun Askılama sıçanlar arasında değişkenlik azaltabilir. </li><li> Test için hazır bir mutedil sıçan birkaç ardışık dakika havlu tutuluyor karşı değil, ancak yeniden-sarın sıçan 1 veya arka pençeleri her iki test sırasında 2 kat gerekebilir. </li></ol> SIRT VON FREY TESTİ İÇİN B. TEST İŞLEMLERİ <ol><li> İlk test başlatmak arka hangi uzuv belirlemek için bir kalıp döndürün. Hatta numaraları sağ pençe temsil ve tek sayılar sol temsil eder. </li><li> Gevşek maruz kıç bırakarak havlu sıçan sarın. </li><li> Dokunsal uyaran sıçan en az 10 saniye boyunca sakin ve sessiz ancak sonra uygulanır. </li><li> 4,56 VFH ile başlayarak, (Şekil 1C) müşterek için yaklaşık 1 cm proksimal birinci ve ikinci metatarsal arasında dorsal yüzeyi dik monofilaman uygulanır. Pürüzsüz, ste içinde monofilament uygulayınbir saniye aralığında ady şekilde eğilir sonra çıkarmak kadar. Bu tek dokunmatik bir deneme teşkil etmektedir. </li><li> Sıçan hızlı uyaran uzağa hareket ettirdiğinde pençe pozitif tepkisi oluşur. Hareket yönü arka bacak fleksiyonda önce genellikle posterior veya harici olduğunu. Geri çekilme yanıtı monofilament uygulama ile ilişkili olduğunu teyit etmek için monofilament kaldırılır zaman başlatılması gerekir. </li><li> 4.56 monofilament duyu &quot;windup&quot; önlemek ve duyu reseptörleri (adaptasyon) engellemek için yeniden test önce ateş başlangıca geri gelmek için izin vermek için uygulamalar arasında en az 30 saniye ile iki kez daha uygulayın. </li><li> Bir uyaran testi VFH kayması durumunda yeniden uygulanır ve nazikçe bir fırçalama ya da daha doğrusu sivri bir kişi daha süpürme gücü teslimat fazla yapma, cildin grazes edilmelidir. </li><li> 4.56 monofilament 2 (yani 1 ya da 0) daha az olumlu tepkiler varsa, bir sonraki büyük VFH 3 uygulanırAynı şekilde kez. </li><li> Bu şekilde, iki ya da daha pozitif yanıtları gerçekleşinceye kadar 5,88 yoluyla 4.56 den daha büyük VFHs aşamalı olarak uygulanır ya da büyük VFH ulaşılana kadar. </li><li> Pençe çekme eşiği 3 denemeler dışında en az 2 pozitif tepkiler ortaya çıkarır düşük VFH olduğunu. </li><li> Diğer pençe tekrarlayın. </li><li> Bir test seansının genellikle arka pençeleri her ikisi için de 15 dakika içinde tamamlanabilir. </li></ol> 3. Temsilcisi Sonuçlar Başarılı bir testi eklem (Şekil 1C) gelen orta plantar bölgeye (Şekil 1A) veya 1. ve 2. metatars 1 cm arasında dorsal yüzeye dik uygulanan VFH için arka ayak derhal, tempolu geri alınmasına yol açar . Bu tepkiler her arkadaki pençeyi için dokunsal eşik türetmek için sayımı edilir. Plantar VFH eşikleri elde akut SKY dorsal VFH testlerden Tactile eşikleri mükemmel bir vefa gösterdiKronik kez (Şekil 2) d. Plantar veya dorsal testlerden elde dokunsal eşikleri düşüşler dereceli SCI (Şekil 3 3,5) oluşabilir. Bu aşırı duyarlılık SKY sonrası gibi erken 7 gün olarak tezahür eder ve deney 3-4,6 süresince korunur. SCI şiddeti bir dizi pençe dokunma duyu eşikleri etkilemez iken, eşikler düşüşler daha şiddetli SCI (Şekil 3) oluşur. Önemlisi, aşağıda düzey allodini gelişimi lezyon merkez üssünde beyaz cevherde fazla% 60 bir kayıp olduğunda meydana gelen bir ya hep ya hiç yanıttır. (Şekil 4 3). Dokunsal eşikleri çürümeye ve düşük VFH kuvvetlerine yapay yanıtlar üretebilir. En az iki koşul eşik çürümesine üretebilir - hızla uyaran uygulamalar arasında yeterince uzun süre bekleyen bir alay ya da batıcı tarzda cilde VFH uygulayarak ya da değil. Emin olmakdokunma eşikleri gerçek vardır, bakım benzer bir düşük hız yaklaşım ve interstimulus aralığı en az 30 saniye olmalıdır kullanan her VFH uygulamaya alınmalıdır. Ayrıca yeme davranışı eşik çürümesi 5 azalttığını göstermiştir. <img alt="Şekil 1" src="/files/ftp_upload/3247/3247fig1.jpg" /> Şekil 1. Plantar ve dorsal von Frey saç (VFH) test için VFH stimülasyon konumunu gösteren şematik ve fotoğraf. A) plantar VFH testi için, von Frey saç, yavaş ile orta parmak kemiği (as sıçanın sol arka ayağını plantar yüzeyi şemada kırmızı kutu ile gösterilir) yaklaşık 1 cm posterior orta plantar sıçanın sol arka ayağını dik uygulanmalıdır tutarlı hız bükülecek kadar. Fotoğrafını gösterildiği gibi dorsal VFH teknik için B ve C), sıçan gevşek cerrahi bir havlu sarılır. VFH birinci ve ikinci metatarsal approximatel arasında pençenin dorsal yüzeyi uygulanıreklem proksimalinde y 1 cm. <img alt="Şekil 2" src="/files/ftp_upload/3247/3247fig2.jpg" /> Şekil 2. Dorsal von Frey Saç duyusal eşikler standart plantar VFH ile bağlantılıdır. (N-44; Pearson katsayısı = 0,503, p &lt;0.01, r2 = 0.67). Kesik çizgiler Dorsal VFH veya plantar VFH teknikleri kullanarak allodinik hissi için kesim eşik değerinin göstermek ve Dorsal VFH testi kullanılarak SKY 7 gün sonra allodinik eşikleri plantar VFH yöntemlerle belirlenen kronik aşağıda düzey allodini tahmin olduğunu göstermektedir. <img alt="Şekil 3" src="/files/ftp_upload/3247/3247fig3.jpg" /> Şekil 3. Erken dorsal von Frey Saç duyu eşikleri daha sonra timepoints az yaralanma şiddeti karşısında allodinik ve non-allodinik dokunma hassasiyeti tahmin. Karşılaştırılabilir duyusal eşikler 7 gün sonrası SKY Dorsal VFH ve 28 gün sonrası SKY plantar VFH önlemler arasında oluştu. Olağanüstü bir benzerlik için oluştu<html> önemli allodini ile SKY geniş, orta şiddetli SCI (diğer tüm gruplara göre p &lt;.05 1.1 mm deplasman) kaydedildi. <img alt="Şekil 4" src="/files/ftp_upload/3247/3247fig4.jpg" /> Şekil 4. SKY sonrasında 6 hafta sıçanın sol arka ayağını allodini gösteren laminektomi (hiçbir SCI) alan sıçan ve SKY grupların yüzdesi. Allodini sadece dokunma uyarısına orta veya şiddetli SCI (OSU ESCID cihaz 0.9, 1.1, 1.25, 1.3 mm kablo deplasmanları) hafif SKY ratlarda (0.3, 0.5, 0.7 mm omurilik deplasmanları) sergilenen, normal süre ve yanıtları ile sıçanlarda görüldü. Temsilcisi koronal omurilik bölümleri laminektomi için lezyon merkez üssü (yaralanmamış kontrolü) de miyelin için boyanan, hafif (0.5 mm deplasman), orta (1.1 mm deplasman) ve ağır (1.3 mm deplasman) spinal kord kontüzyonları aksonal derecesini göstermek için dahil edilmiştir Bu aşırı duyarlılık ile ilişkili olduğu koruyucu. (Ölçek çubuğu = 0,5 mm). k &quot;&gt; <img alt="Şekil 5," src="/files/ftp_upload/3247/3247fig5.jpg" /> Şekil 5. Yukarı-aşağı von Frey saç testi için örnek bir veri sayfası. Saç değeri ve sonuç (pozitif veya negatif) her bir deneme için kaydedilmektedir. Test supraspinal farkındalık Endikasyonları belirtilmiştir. Testin sonunda her bir saç değerde yanıtları sayımı edilir. Örneğin veri için seçilen eşik değerini daire edilir.

<ol>
	<li>Cruz-Almeida, Y., Felix, E. R., Martinez-Arizala, A., Widerstrom-Noga, E. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Pain+symptom+profiles+in+persons+with+spinal+cord+injury.">Pain symptom profiles in persons with spinal cord injury.</a> Pain Med. 10, 1246-1259 (2009).</li><li>Hulsebosch, C. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=From+discovery+to+clinical+trials:+treatment+strategies+for+central+neuropathic+pain+after+spinal+cord+injury.">From discovery to clinical trials: treatment strategies for central neuropathic pain after spinal cord injury.</a> Curr. Pharm. Des. 11, 1411-1420 (2005).</li><li>Kloos, A. D., Fisher, L. C., Detloff, M. R., Hassenzahl, D. L., Basso, D. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Stepwise+motor+and+all-or-none+sensory+recovery+is+associated+with+nonlinear+sparing+after+incremental+spinal+cord+injury+in+rats.">Stepwise motor and all-or-none sensory recovery is associated with nonlinear sparing after incremental spinal cord injury in rats.</a> Exp. Neurol. 191, 251-265 (2005).</li><li>Detloff, M. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Remote+activation+of+microglia+and+pro-inflammatory+cytokines+predict+the+onset+and+severity+of+below-level+neuropathic+pain+after+spinal+cord+injury+in+rats.">Remote activation of microglia and pro-inflammatory cytokines predict the onset and severity of below-level neuropathic pain after spinal cord injury in rats.</a> Exp. Neurol. 212, 337-347 (2008).</li><li>Detloff, M. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Validity+of+acute+and+chronic+tactile+sensory+testing+after+spinal+cord+injury+in+rats.">Validity of acute and chronic tactile sensory testing after spinal cord injury in rats.</a> Exp. Neurol. 225, 366-376 (2010).</li><li>Hutchinson, K. J., Gomez-Pinilla, F., Crowe, M. J., Ying, Z., Basso, D. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Three+exercise+paradigms+differentially+improve+sensory+recovery+after+spinal+cord+contusion+in+rats.">Three exercise paradigms differentially improve sensory recovery after spinal cord contusion in rats.</a> Brain. 127, 1403-1414 (2004).</li><li>Carlton, S. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Peripheral+and+central+sensitization+in+remote+spinal+cord+regions+contribute+to+central+neuropathic+pain+after+spinal+cord+injury.">Peripheral and central sensitization in remote spinal cord regions contribute to central neuropathic pain after spinal cord injury.</a> Pain. 147, 265-276 (2009).</li><li>Lindsey, A. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=An+analysis+of+changes+in+sensory+thresholds+to+mild+tactile+and+cold+stimuli+after+experimental+spinal+cord+injury+in+the+rat.">An analysis of changes in sensory thresholds to mild tactile and cold stimuli after experimental spinal cord injury in the rat.</a> Neurorehabil. Neural Repair. 14, 287-300 (2000).</li><li>Basso, D. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Behavioral+testing+after+spinal+cord+injury:+congruities,+complexities,+and+controversies.">Behavioral testing after spinal cord injury: congruities, complexities, and controversies.</a> J. Neurotrauma. 21, 395-404 (2004).</li><li>Langford, D. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Social+modulation+of+pain+as+evidence+for+empathy+in+mice.">Social modulation of pain as evidence for empathy in mice.</a> Science. 312, 1967-1970 (2006).</li></ol>

Yazarlar ifşa hiçbir şey yok.

VFH test yöntemleri hassas ve sıçan SKY modellerinde kullanılmak üzere geçerli olan iki test paradigmaları temsil sunuldu. Önemlisi, dorsal VFH testi fareler kendi kıç üstünde duramayabilirsiniz zaman akut orta torasik SKY sonrasında arka pençelerinin dokunsal kurtarma değerlendirilmesi için oluşturuldu. Sıçanlarda kendi ağırlığı destek ve servikal SCI&#39;de arka bacak için yeteneği geri kazanmak Bu test paradigma da kullanılabilir. İki paradigma burada her bir a...

<table border="1"><tbody><tr><td> Reaktif Adı </td><td> Şirket </td><td> Katalog numarası </td><td> Yorumlar </td></tr><tr><td> Semmes-Weinstein monofilament </td><td> Co Stoelting </td><td> 58011 </td><td></td></tr><tr><td> Balık Damızlık Kutusu </td><td> Akvaryum Tedarik Mağaza </td><td></td><td> Delik tahıl teslimat için yan açılmış </td></tr><tr><td> Artmış hasır (1/4 &quot;X 1/4&quot; grid) </td><td> Donanım Mağaza </td><td></td><td></td></tr><tr><td> Elastik bir yerde balık damızlık kutusu tutmak için </td><td> El Sanatları Mağazası </td><td></td><td></td></tr><tr><td> Şekerli Tahıl </td><td> Bakkal </td><td></td><td></td></tr><tr><td> Cerrahi Huck Havlu 16 &quot;x 23&quot; </td><td> Tıbbi Sarf Malzeme Mağazası </td><td></td><td></td></tr></tbody></table><pclass = &quot;jove_content&quot;&gt;

acute and chronic tactile sensory testing after spinal cord injury in rats

Spinal kord yaralanması (SKY) allodini 1-8 neden duyu sistemleri bozar. Duyarlı allodini hücresel ve moleküler nedenleri ve sıçan SKY modellerinde geçerli duyusal test belirlemek için gereklidir. Bu standart metotlar laboratuarlar arasında uygulamaya henüz böylece Ancak, yakın zamana kadar, tek bir test yaklaşımı SKY için valide edilmiştir. Ek olarak, mevcut test yöntemleri akut uygulanamamıştır veya ağır motor bozukluk mevcut olduğunda, SCI indüklenen allodynia 3 geliştirilmesi çalışmaları önlenmesi. Burada SKY 4-5 sonra dokunsal duyu eşikleri değişiklikleri ölçmek von Frey Saç (VFH) monofilamentler kullanılarak iki valide duyusal test yöntemleri sunuyoruz. Bir testi kronik 5 test farklı SCI şiddeti arasında yüksek duyarlılık ve özgüllük gösteren köklü Yukarı-Aşağı testtir. Diğer test SKY sonra akut olarak uygulanabilir yeni geliştirilmiş dorsal VFH testi olduğundallodynia önce motor iyileşme 4-5, geliştirir. Bükülecek kadar arka ayaklarında, cilde dokunduğunda Her VFH monofilament kalibre edilmiş bir kuvvet uygular. Yukarı-aşağı yönteminde, yüksek veya düşük güçlerin alternatif VFHs fleksör çekilmesi eşikleri belirginleştiren plantar L5 dermatomunda kullanılır. Çekme kuvveti daha düşük VFHs çekilmesi geçene kadar kullanılır sonra oluşana dek gittikçe daha yüksek güçler uygulanır. Dokunsal eşik uyaranların% 50 geri çekilme ortaya çıkarmak için gerekli kuvvet yansıtır. Sıçan uzman tarafından desteklenirken yeni bir test için, her VFH pençenin dorsal L5 dermatomunda uygulanır. VFH stimülasyon belirli bir kuvvet az 3 uygulamaların en az 2 pençe çekme üretir kadar yürürlükte artan sırasında oluşur. Dokunsal duyu eşik zaman çekilmesi% 66 ortaya çıkartılması için en düşük güç. Aklimasyon, test ve puanlama işlemleri açıklanmıştır. Bir tekrar ve tipik çalışma gerektiren anormal denemeler tanımlandığı gibidir. Hayvan kullanımı wgibi Ohio Devlet Üniversitesi Hayvan Bakımı ve Kullanımı Komitesi tarafından onaylandı.

Watch this Scientific Journal Video about Acute and Chronic Tactile Sensory Testing after Spinal Cord Injury in Rats at JoVE.com

Acute and Chronic Tactile Sensory Testing after Spinal Cord Injury in Rats

Biz ratlarda spinal kord yaralanmasının akut veya kronik dönemlerde iki dokunma duyusal test yöntemleri açıklanmaktadır. Bu onaylanmış prosedürler allodini gibi duyumların geliştirme ve bakım algılayabilir.

Sıçanlarda Spinal Kord Yaralanma sonrası Akut ve Kronik Dokunsal Duyu Testi

Spinal cord injury (SCI) impairs sensory systems causing allodynia1-8. To identify cellular and molecular causes of allodynia, sensitive and valid sensory ...

acute-chronic-tactile-sensory-testing-after-spinal-cord-injury

Research

JoVE Journal

Medicine

23.5K Görüntüleme.  School of Allied Medical Professions, The Ohio State University. Biz ratlarda spinal kord yaralanmasının akut veya kronik dönemlerde iki dokunma duyusal test yöntemleri açıklanmaktadır. Bu onaylanmış prosedürler allodini gibi duyumların geliştirme ve bakım algılayabilir.

Video: Acute and Chronic Tactile Sensory Testing after Spinal Cord Injury in Rats

Longitudinal Evaluation of Mouse Hind Limb Bone Loss After Spinal Cord Injury using Novel, in vivo, Methodology

Spinal cord injury (SCI) is often accompanied by osteoporosis in the sublesional regions of the pelvis and lower extremities, leading to a higher frequency of fractures 1. As these fractures often occur in regions that have lost normal sensory function, the patient is at a greater risk of fracture-dependent pathologies, including death. SCI-dependent loss in both bone mineral density (BMD, grams/cm2) and bone mineral content (BMC, grams) has been attributed to mechanical disuse 2, aberrant neuronal signaling 3 and hormonal changes 4. The use of rodent models of SCI-induced osteoporosis can provide invaluable information regarding the mechanisms underlying the development of osteoporosis following SCI as well as a test environment for the generation of new therapies 5-7 (and reviewed in 8). Mouse models of SCI are of great interest as they permit a reductionist approach to mechanism-based assessment through the use of null and transgenic mice. While such models have provided important data, there is still a need for minimally-invasive, reliable, reproducible, and quantifiable methods in determining the extent of bone loss following SCI, particularly over time and within the same cohort of experimental animals, to improve diagnosis, treatment methods, and/or prevention of SCI-induced osteoporosis.
An ideal method for measuring bone density in rodents would allow multiple, sequential (over time) exposures to low-levels of X-ray radiation. This study describes the use of a new whole-animal scanner, the IVIS Lumina XR (Caliper Instruments) that can be used to provide low-energy (1-3 milligray (mGy)) high-resolution, high-magnification X-ray images of mouse hind limb bones over time following SCI. Significant bone density loss was seen in the tibiae of mice by 10 days post-spinal transection when compared to uninjured, age-matched control (na&iuml;ve) mice (13% decrease, p&lt;0.0005). Loss of bone density in the distal femur was also detectable by day 10 post-SCI, while a loss of density in the proximal femur was not detectable until 40 days post injury (7% decrease, p&lt;0.05). SCI-dependent loss of mouse femur density was confirmed post-mortem through the use of Dual-energy X-ray Absorptiometry (DXA), the current "gold standard" for bone density measurements. We detect a 12% loss of BMC in the femurs of mice at 40 days post-SCI using the IVIS Lumina XR. This compares favorably with a previously reported BMC loss of 13.5% by Picard and colleagues who used DXA analysis on mouse femurs post-mortem 30 days post-SCI 9. Our results suggest that the IVIS Lumina XR provides a novel, high-resolution/high-magnification method for performing long-term, longitudinal measurements of hind limb bone density in the mouse following SCI.

Longitudinal Evaluation of Mouse Hind Limb Bone Loss After Spinal Cord Injury using Novel, in vivo, Methodology

A longitudinal examination of bone loss in the femurs and tibiae of adult mice was performed following spinal cord injury using sequential low-dose X-ray scans. Tibia bone loss was detected throughout the study, while bone loss in the femur was not detected until 40 days post injury.

Roman kullanarak Spinal Kord Yaralanması sonra Fare Hind Ekstremite Kemik Kaybı Boyuna değerlendirilmesi, In vivo, Metodolojisi

Spinal cord injury (SCI) is often accompanied by osteoporosis in the sublesional regions of the pelvis and lower extremities, leading to a higher ...

Tıp

Chronic Constriction of the Sciatic Nerve and Pain Hypersensitivity Testing in Rats

Chronic neuropathic pain, resulting from damage to the central or peripheral nervous system, is a prevalent and debilitating condition, affecting 7-18% of the population1,2. Symptoms include spontaneous (tingling, burning, electric-shock like) pain, dysaesthesia, paraesthesia, allodynia (pain resulting from normally non-painful stimuli) and hyperalgesia (an increased response to painful stimuli). The sensory symptoms are co-morbid with behavioural disabilities, such as insomnia and depression. To study chronic neuropathic pain several animal models mimicking peripheral nerve injury have been developed, one of the most widely used is Bennett and Xie's (1988) unilateral sciatic nerve chronic constriction injury (CCI)3 (Figure 1). Here we present a method for performing CCI and testing pain hypersensitivity.
CCI is performed under anaesthesia, with the sciatic nerve on one side exposed by making a skin incision, and cutting through the connective tissue between the gluteus superficialis and biceps femoris muscles. Four chromic gut ligatures are tied loosely around the sciatic nerve at 1 mm intervals, to just occlude but not arrest epineural blood flow. The wound is closed with sutures in the muscle and staples in the skin. The animal is then allowed to recover from surgery for 24 hrs before pain hypersensitivity testing begins.
For behavioural testing, rats are placed into the testing apparatus and are allowed to habituate to the testing procedure. The area tested is the mid-plantar surface of the hindpaw (Figure 2), which falls within the sciatic nerve distribution. Mechanical withdrawal threshold is assessed by mechanically stimulating both injured and uninjured hindpaws using an electronic dynamic plantar von Frey aesthesiometer or manual von Frey hairs4. The mechanical withdrawal threshold is the maximum pressure exerted (in grams) that triggers paw withdrawal. For measurement of thermal withdrawal latency, first described by Hargreaves et al (1988), the hindpaw is exposed to a beam of radiant heat through a transparent glass surface using a plantar analgesia meter5,6. The withdrawal latency to the heat stimulus is recorded as the time for paw withdrawal in both injured and uninjured hindpaws. Following CCI, mechanical withdrawal threshold, as well as thermal withdrawal latency in the injured paw are both significantly reduced, compared to baseline measurements and the uninjured paw (Figure 3). The CCI model of peripheral nerve injury combined with pain hypersensitivity testing provides a model system to investigate the effectiveness of potential therapeutic agents to modify chronic neuropathic pain. In our laboratory, we utilise CCI alongside thermal and mechanical sensitivity of the hindpaws to investigate the role of neuro-immune interactions in the pathogenesis and treatment of neuropathic pain.

Due to the simplicity of surgery and the robust behavioural outcome, chronic constriction of the sciatic nerve is one of the pre-eminent animal models of neuropathic pain. Within 24 hrs following surgery, pain hypersensitivity is established and can be quantitatively measured using a von Frey aesthesiometer (mechanical test) and plantar analgesia meter (thermal test).

Siyatik Sinir Sıçanlarda Ağrı aşırı duyarlılık Test Kronik daraltma

Chronic neuropathic pain, resulting from damage to the central or peripheral nervous system, is a prevalent and debilitating condition, affecting 7-18% of ...

Controlled Cervical Laceration Injury in Mice

Use of genetically modified mice enhances our understanding of molecular mechanisms underlying several neurological disorders such as a spinal cord injury (SCI). Freehand manual control used to produce a laceration model of SCI creates inconsistent injuries often associated with a crush or contusion component and, therefore, a novel technique was developed. Our model of cervical laceration SCI has resolved inherent difficulties with the freehand method by incorporating 1) cervical vertebral stabilization by vertebral facet fixation, 2) enhanced spinal cord exposure, and 3) creation of a reproducible laceration of the spinal cord using an oscillating blade with an accuracy of &plusmn;0.01 mm in depth without associated contusion. Compared to the standard methods of creating a SCI laceration such as freehand use of a scalpel or scissors, our method has produced a consistent lesion. This method is useful for studies on axonal regeneration of corticospinal, rubrospinal, and dorsal ascending tracts.

A novel technique to create a reproducible in vivo model of cervical spinal cord laceration injury in the mouse is described. This technique is based on spine stabilization by fixation of the cervical facets and laceration of the spinal cord using an oscillating blade with an accuracy of &plusmn;0.01 mm.

Farelerde Kontrollü Servikal yırtığı Sakatlık

Use of genetically modified mice enhances our  understanding of molecular mechanisms underlying several neurological disorders  such as a spinal cord ...

A Contusion Model of Severe Spinal Cord Injury in Rats

The translational potential of novel treatments should be investigated in severe spinal cord injury (SCI) contusion models. A detailed methodology is described to obtain a consistent model of severe SCI. Use of a stereotactic frame and computer controlled impactor allows for creation of reproducible injury. Hypothermia and urinary tract infection pose significant challenges in the post-operative period. Careful monitoring of animals with daily weight recording and bladder expression allows for early detection of post-operative complications. The functional results of this contusion model are equivalent to transection models. The contusion model can be utilized to evaluate the efficacy of both neuroprotective and neuroregenerative approaches.

A contusion model of severe spinal cord injury is described. Detailed pre-operative, operative and post-operative steps are described to obtain a consistent model.

Sıçanlarda Şiddetli Spinal Kord Yaralanması bir bere modeli

The translational potential of novel treatments should be investigated in severe spinal cord injury (SCI) contusion models. A detailed methodology is ...

Evaluation of Respiratory Muscle Activation Using Respiratory Motor Control Assessment (RMCA) in Individuals with Chronic Spinal Cord Injury

During breathing, activation of respiratory muscles is coordinated by integrated input from the brain, brainstem, and spinal cord. When this coordination is disrupted by spinal cord injury (SCI), control of respiratory muscles innervated below the injury level is compromised1,2 leading to respiratory muscle dysfunction and pulmonary complications. These conditions are among the leading causes of death in patients with SCI3. Standard pulmonary function tests that assess respiratory motor function include spirometrical and maximum airway pressure outcomes: Forced Vital Capacity (FVC), Forced Expiratory Volume in one second (FEV1), Maximal Inspiratory Pressure (PImax) and Maximal Expiratory Pressure (PEmax)4,5. These values provide indirect measurements of respiratory muscle performance6. In clinical practice and research, a surface electromyography (sEMG) recorded from respiratory muscles can be used to assess respiratory motor function and help to diagnose neuromuscular pathology. However, variability in the sEMG amplitude inhibits efforts to develop objective and direct measures of respiratory motor function6. Based on a multi-muscle sEMG approach to characterize motor control of limb muscles7, known as the voluntary response index (VRI)8, we developed an analytical tool to characterize respiratory motor control directly from sEMG data recorded from multiple respiratory muscles during the voluntary respiratory tasks. We have termed this the Respiratory Motor Control Assessment (RMCA)9. This vector analysis method quantifies the amount and distribution of activity across muscles and presents it in the form of an index that relates the degree to which sEMG output within a test-subject resembles that from a group of healthy (non-injured) controls. The resulting index value has been shown to have high face validity, sensitivity and specificity9-11. We showed previously9 that the RMCA outcomes significantly correlate with levels of SCI and pulmonary function measures. We are presenting here the method to quantitatively compare post-spinal cord injury respiratory multi-muscle activation patterns to those of healthy individuals.

Evaluation of Respiratory Muscle Activation Using Respiratory Motor Control Assessment RMCA in Individuals with Chronic Spinal Cord Injury

The purpose of this publication is to present our original work on a multi-muscle surface electromyographic approach to quantitatively characterize respiratory muscle activation patterns in individuals with chronic spinal cord injury using vector-based analysis.

Kronik Spinal Kord Yaralanması Bireylerde Solunum Motor Kontrol Değerlendirmesi (RMCA) kullanarak Solunum Kas Aktivasyon Değerlendirilmesi

During breathing, activation of respiratory muscles is coordinated by integrated input from the brain, brainstem, and spinal cord. When this coordination ...

Controlled Cortical Impact Model for Traumatic Brain Injury

Every year over a million Americans suffer a traumatic brain injury (TBI). Combined with the incidence of TBIs worldwide, the physical, emotional, social, and economical effects are staggering. Therefore, further research into the effects of TBI and effective treatments is necessary. The controlled cortical impact (CCI) model induces traumatic brain injuries ranging from mild to severe. This method uses a rigid impactor to deliver mechanical energy to an intact dura exposed following a craniectomy. Impact is made under precise parameters at a set velocity to achieve a pre-determined deformation depth. Although other TBI models, such as weight drop and fluid percussion, exist, CCI is more accurate, easier to control, and most importantly, produces traumatic brain injuries similar to those seen in humans. However, no TBI model is currently able to reproduce pathological changes identical to those seen in human patients. The CCI model allows investigation into the short-term and long-term effects of TBI, such as neuronal death, memory deficits, and cerebral edema, as well as potential therapeutic treatments for TBI.

Traumatic brain injuries (TBIs) remain a serious health problem. Using the controlled cortical impact surgery model, research on the effects of TBI and possible treatment methods may be performed.

Travmatik Beyin Hasarı için Kontrollü Kortikal Etki Modeli

Every year over a million Americans suffer a traumatic brain injury (TBI).  Combined with the incidence of TBIs worldwide, the physical, emotional, ...

A Radio-telemetric System to Monitor Cardiovascular Function in Rats with Spinal Cord Transection and Embryonic Neural Stem Cell Grafts

High thoracic or cervical spinal cord injury (SCI) can lead to cardiovascular dysfunction. To monitor cardiovascular parameters, we implanted a catheter connected to a radio transmitter into the femoral artery of rats that underwent a T4 spinal cord transection with or without grafting of embryonic brainstem-derived neural stem cells expressing green fluorescent protein. Compared to other methods such as cannula insertion or tail-cuff, telemetry is advantageous to continuously monitor blood pressure and heart rate in freely moving animals. It is also capable of long term multiple data acquisitions. In spinal cord injured rats, basal cardiovascular data under unrestrained condition and autonomic dysreflexia in response to colorectal distension were successfully recorded. In addition, cardiovascular parameters before and after SCI can be compared in the same rat if a transmitter is implanted before a spinal cord transection. One limitation of the described telemetry procedure is that implantation in the femoral artery may influence the blood supply to the ipsilateral hindlimb.

We present a protocol for using a radio-telemetric system to record cardiovascular parameters in T4 spinal cord transected rats eight weeks after embryonic brainstem neural stem cell grafting into the lesion site. Telemetry is an advanced technique to accurately evaluate cardiovascular function in conscious freely moving spinal cord injured rats.

A Radyo-telemetrik Sistemi Omurilik transeksiyonu ve Embriyonik Nöral Hücre Greftler Kök Sıçanlarda Kardiyovasküler Fonksiyonu Monitör

High thoracic or cervical spinal cord injury (SCI) can lead to cardiovascular dysfunction. To monitor cardiovascular parameters, we implanted a catheter ...

Calibrated Forceps Model of Spinal Cord Compression Injury

Compression injuries of the murine spinal cord are valuable animal models for the study of spinal cord injury (SCI) and spinal regenerative therapy. The calibrated forceps model of compression injury is a convenient, low cost, and very reproducible animal model for SCI. We used a pair of modified forceps in accordance with the method published by Plemel et al. (2008) to laterally compress the spinal cord to a distance of 0.35 mm. In this video, we will demonstrate a dorsal laminectomy to expose the spinal cord, followed by compression of the spinal cord with the modified forceps. In the video, we will also address issues related to the care of paraplegic laboratory animals. This injury model produces mice that exhibit impairment in sensation, as well as impaired hindlimb locomotor function. Furthermore, this method of injury produces consistent aberrations in the pathology of the SCI, as determined by immunohistochemical methods. After watching this video, viewers should be able to determine the necessary supplies and methods for producing SCI of various severities in the mouse for studies on SCI and/or treatments designed to mitigate impairment after injury.

Spinal cord injury models should be highly reproducible. We demonstrate that the calibrated forceps compression model of spinal cord injury is an easy to use surgical method for generating reproducible injuries to the murine spinal cord.

Omurilik Sıkıştırma Yaralanma Kalibre Forseps Modeli

Compression injuries of the murine spinal cord are valuable animal models for the study of spinal cord injury (SCI) and spinal regenerative therapy. The ...

Contrast Enhanced Ultrasound Imaging for Assessment of Spinal Cord Blood Flow in Experimental Spinal Cord Injury

Reduced spinal cord blood flow (SCBF) (i.e., ischemia) plays a key role in traumatic spinal cord injury (SCI) pathophysiology and is accordingly an important target for neuroprotective therapies. Although several techniques have been described to assess SCBF, they all have significant limitations. To overcome the latter, we propose the use of real-time contrast enhanced ultrasound imaging (CEU). Here we describe the application of this technique in a rat contusion model of SCI. A jugular catheter is first implanted for the repeated injection of contrast agent, a sodium chloride solution of sulphur hexafluoride encapsulated microbubbles. The spine is then stabilized with a custom-made 3D-frame and the spinal cord dura mater is exposed by a laminectomy at ThIX-ThXII. The ultrasound probe is then positioned at the posterior aspect of the dura mater (coated with ultrasound gel). To assess baseline SCBF, a single intravenous injection (400 &#181;l) of contrast agent is applied to record its passage through the intact spinal cord microvasculature. A weight-drop device is subsequently used to generate a reproducible experimental contusion model of SCI. Contrast agent is re-injected 15 min following the injury to assess post-SCI SCBF changes. CEU allows for real time and in-vivo assessment of SCBF changes following SCI. In the uninjured animal, ultrasound imaging showed uneven blood flow along the intact spinal cord. Furthermore, 15 min post-SCI, there was critical ischemia at the level of the epicenter while SCBF remained preserved in the more remote intact areas. In the regions adjacent to the epicenter (both rostral and caudal), SCBF was significantly reduced. This corresponds to the previously described &#8220;ischemic penumbra zone&#8221;. This tool is of major interest for assessing the effects of therapies aimed at limiting ischemia and the resulting tissue necrosis subsequent to SCI.

Contrast Enhanced Ultrasound imaging is a reliable in-vivo tool for quantifying spinal cord blood flow in an experimental rat spinal cord injury model. This paper contains a comprehensive protocol for application of this technique in association with a contusion model of thoracic spinal cord injury.

Deneysel Spinal Kord Yaralanmalarında Omurilik Kan Akımının Değerlendirilmesi için geliştirilmiş Ultrason Görüntüleme Kontrast

Reduced spinal cord blood flow (SCBF) (i.e., ischemia) plays a key role in traumatic spinal cord injury (SCI) pathophysiology and is accordingly an ...

A Neonatal Mouse Spinal Cord Compression Injury Model

Spinal cord injury (SCI) typically causes devastating neurological deficits, particularly through damage to fibers descending from the brain to the spinal cord. A major current area of research is focused on the mechanisms of adaptive plasticity that underlie spontaneous or induced functional recovery following SCI. Spontaneous functional recovery is reported to be greater early in life, raising interesting questions about how adaptive plasticity changes as the spinal cord develops. To facilitate investigation of this dynamic, we have developed a SCI model in the neonatal mouse. The model has relevance for pediatric SCI, which is too little studied. Because neural plasticity in the adult involves some of the same mechanisms as neural plasticity in early life1, this model may potentially have some relevance also for adult SCI. Here we describe the entire procedure for generating a reproducible spinal cord compression (SCC) injury in the neonatal mouse as early as postnatal (P) day 1. SCC is achieved by performing a laminectomy at a given spinal level (here described at thoracic levels 9-11) and then using a modified Yasargil aneurysm mini-clip to rapidly compress and decompress the spinal cord. As previously described, the injured neonatal mice can be tested for behavioral deficits or sacrificed for ex vivo physiological analysis of synaptic connectivity using electrophysiological and high-throughput optical recording techniques1. Earlier and ongoing studies using behavioral and physiological assessment have demonstrated a dramatic, acute impairment of hindlimb motility followed by a complete functional recovery within 2 weeks, and the first evidence of changes in functional circuitry at the level of identified descending synaptic connections1.

This article describes a method for generating a reproducible spinal cord compression injury (SCI) in the neonatal mouse. The model provides an advantageous platform for studying mechanisms of adaptive plasticity that underlie spontaneous functional recovery.

Bir Yenidoğan Fare Omurilik Sıkıştırma Yaralanması Modeli

Spinal cord injury (SCI) typically causes devastating neurological deficits, particularly through damage to fibers descending from the brain to the spinal ...