Biz Süm Min / + farenin genotiplemeye Ying Yu teşekkür etmek istiyorum. Bu çalışma INSERM fon ve Sağlık Ulusal Enstitüleri hibe (CA057621 ve AI053194) tarafından desteklenmiştir.

NOT: Tüm hayvan deneyleri Kurumsal Hayvan Bakım ve Kullanım Komitesi (IACUC), ucsf tarafından onaylanan prosedürlere uygun olarak yapılmıştır. Tüm görüntüleme deneyleri hayatta olmayan prosedürler ve hayvanların görüntü elde sonunda hemen sonra ötenazi edildi. 1. Farelerin Üretimi Not: Apc genindeki bir mutasyon taşıyan Apc Min / + fareleri, kendiliğinden ince bağırsakta 50-100 adenomlar gelişir. <ol><li> Çapraz Apc Min miyeloid hücreleri tespit etmek için c-fms ihtiva promotör altında EGFP ifade c-fms ihtiva EGFP hattı ile ACTB-eCFP aktin destekçisi altında eCFP ifade hattı, ve bundan başka, birlikte / + fareler. ACTB-eCFP ve c-fms EGFP için heterozigot olan hayvanlar, floresans tespit etmek için kullanılır. </li><li> Görüntü net saptanabilir adenom için 3-4 aylık yaşta fareler kullanın. </li></ol> M 2. HazırlıkAmeliyattan Önce aterials NOT: mikroskop set-up detayları daha önce hiç 6,7 tarif var. <ol><li> Mikroskop <ol><li> Isıtma battaniye açın. 488 nm&#39;de uyarma ve katı hal 405 nm, 561 nm ve 640 nm lazer argon lazer açın. Mikroskop açın, dönen disk kontrol birimi, AOTF, lazer kontrol ünitesi ve kamera denetleyicisi. </li><li> LED kırmızıya döner mikroskop deklanşöre açın. Bilgisayar ve kamera yazılımı açın. </li></ol></li><li> Görüntüleme Platformu <ol><li> Sahne insert temiz olduğundan emin olun. Aksi takdirde, su ve sabun ve daha sonra kuru temiz. </li><li> İki lamelleri al ve insert onları korumak için laboratuvar bandı kullanın. Sahnede parçayı yerleştirin ve alkol mendil ile temizleyin. </li><li> Laboratuvar bant kullanarak, sahnenin sağ tarafına ısıtma battaniye takın. </li><li> Burun konisi üzerindeki kauçuk diyaframın bütünlüğünü doğrulamak ve Mutlaka eğer bunu değiştirmekY. Konumu ve gazlı bez ve laboratuar bant kullanarak hayvana izofluran anestezi teslimat için burun konisi düzeltmek. </li></ol></li><li> İsofluranın Anestezi Sistemi <ol><li> Izofluran tankı doldurun. </li><li> Vakum açın ve / dk 1.2 L ayarlayın. </li><li> Nebulizere damıtılmış su ekleyin ve izofluran sisteme nebulizatörü bağlayın. </li><li> Oksijen analizörü açın ve izofluran sisteme bağlayın. Oksijen deposu açın ve oksijen analizörü% 100 gösterir emin olun. 0,2 l / dk için O 2 akışını ayarlayın. </li><li> Azot tankına açın ve / dk 0.8 L akışını ayarlamak. Oksijen analizörü 21% gösterdiğinden emin olun. </li></ol></li><li> Cerrahi Alet ve Platform Hazırlanması <ol><li> Sabun ve su ile diseksiyon forseps ve makas temiz 2 çift. </li><li> Sıcak boncuk sterilizatör açmak ve 250 ° C ye izin verin. 30 sn için cerrahi aletleri sterilize. Onları soğumasını bekleyin. </li><li> Cerrahi bankta bir laboratuvar sağanak yerleştirin. </li><li> Cerrahi bir platform olarak bir Strafor kapağı kullanın. Laboratuar Batmışın bir parça ile örtün. Fareyi tıraş sonra değiştirmek için laboratuar Batmışın ikinci bir parça hazırlayın. </li><li> Kaplı Strafor kapağındaki anestezi hattı ile burun konisi yerleştirin ve bazı bant ile (değil laboratuar ıslatıcıya üzerine) Strafor kapağına takın ve yerinde tutmak için burun konisi her iki tarafında iki iğne kullanın. </li><li> Betadine, alkol mendil, steril gazlı bez, süper yapıştırıcı, mikroskop slaytlar, elektrikli tıraş makinesi, ve laboratuvar bant 4 adet birleştirin. </li></ol></li></ol> Enjeksiyonlar 3. hazırlanması <ol><li> Kapağın altında, bir insülin şırıngası hazırlanması (28 g x ½ cm) 2,000 kDa rodamin-dekstran (4 mg / ml 100 ul stok içine AF647 konjuge edilmiş Ly-6G (Gr1) antikoru (1 mg / ml), 7 ul ) retro-orbital enjeksiyon için. Bu hayvanlarda gelişen anemi kuyruk damarları difficu yapar bu yana retro-orbital enjeksiyon Süm Min / + farelerde tavsiye edilirlt deri yoluyla algılamak için. </li><li> Bağırsağın peristaltik hareketlerini azaltmak için görüntüleme önce 1 mg / kg deri altından (sc), 150 ul PBS içinde seyreltilmiş atropin enjeksiyonu ile bir ikinci insülin şırınga hazırlayın. </li></ol> Görüntüleme için Bağırsak 4. hazırlanması <ol><li> Indüksiyon odasına anestezi hattı açık ve cerrahi masa ve mikroskop çizgiler kapalı olduğunu doğrulayın. </li><li> Anestezi odasına hayvan aktarın. Anestezi odasına kapatın ve (% 21 O 2)% 4 izofluran açın. </li><li> Fare derinden ve yavaş yavaş (5-6 dakika sonra) nefes aldığında, onun kanadında cerrahi sahneye aktarmak ve Gr1 antikor çözüm ve / veya dekstran solüsyonu, retro-orbital enjekte. </li><li> Cerrahi platforma bağlı anestezi hattını açın. Anestezi odasına hattını kapatın ve anestezi koni onun burun sırtında fare koymak. </li><li> Izofluran azaltın% 4 den% 2.5 &#39;e konsantrasyonu. </li><li> Fare de onun Kapkaççı tutup kornea refleks testi ile anestezi doğrulayın. </li><li> Anestezi altında iken kuruluğunu önlemek için gözleri oftalmik yağlama merhem ekleyin. </li><li> Laboratuvar bant ekleyerek cerrahi aşamasına fare bacaklarda sabitleyin. </li><li> Elektrikli tıraş makinesi ile ventral yüzeyi saç çıkarın. Ayrıca satın önce oksimetreden konumlandırmak için sol arka bacağındaki saç kaldırmak. Cerrahi aşamasından laboratuvar Sağanak çıkarın ve saç kontaminasyonu önlemek için temiz bir biri ile değiştirin. </li><li> Alkol mendil ve betadin ventral yüzeyi dezenfekte edin. </li><li> Fare bir böğrüne sc (3.2) atropin çözüm enjekte. </li><li> Deri yoluyla 1 cm ventral orta hat kesi ve kullanarak makas ile periton ve forseps bir çift olun. Dikkatle bağırsak 3-4 cm çekin ve görüntü bir veya birkaç tümörleri tespit. </li><li> Cam MICR almakOscope slayt pozisyonu ve üst kısmında bir tümör ile üzerine bağırsağın bir döngü. </li><li> Slayt takmak için bağırsak boyunca birkaç yerde bazı süper yapıştırıcı ekleyin. Tutkal kuruması için bir dakika bekleyin. Konfokal ile lokalizasyon kolaylaştırmak için tümöre işaret sürgü üzerinde bir çizgi çizmek için bir işaretçiye kullanın. </li></ol> 5. Konumlandırma Sahne üzerinde Fare ve Hazırlık Image Acquisition için <ol><li> Bacaklarda laboratuvar bandı çıkarın. </li><li> Mikroskop sahneye anestezi hattını açın ve cerrahi platforma birini kapatın. </li><li> Aşağı ventral yüzü ve burun konisi burnunun ile mikroskop aşamasında dikkatlice fare aktarın. Bazı laboratuvar bant ile anestezi hattını sabitleyin. </li><li> Yeniden konumlandırmak kapak astarlı pencerelerden birinin merkezinde bağırsak olması için fare ve / veya slayt. Yavaşça laboratuvar bant ile slayt aşağı bantlayın. </li><li> Farenin sol bacağa için oksimetre probu takınonun kalp ve solunum hızı ve oksijen satürasyonu düzeylerini izleyin. </li><li> Hipotermi önlemek için ısıtma battaniye ile fareyi örtün. </li><li> Görüntüleme için 1-1.5% 2,5 den% izofluran konsantrasyonu azaltır. </li></ol> ΜManager Yazılımı Kullanarak Görüntüleri 6. kazanılması <ol><li> Yapılandırma Ayarlar görüntü kalitesini iyileştirmek için 2.500 rpm CSUX hızını artırın. </li><li> 10X 0.5 NA veya 20X 0.75 NA Fluar objektif hedefi seçmek için Amaç açılır menüsünü kullanın. </li><li> Renk açılır menüden lazer 405 nm seçin. </li><li> Live tıklayın ve mikroskop ile odağı ayarlayın. </li><li> Otomatik olarak görüntüdeki aşırı piksel değerlerine dayanan Ekrandaki görüntünün maksimum ve minimum piksel yoğunlukları ayarlamak için Otomatik tıklayın. Ekran görüntüsünün piksel yoğunluğunun bir histogram Ana Pencere alt kısmında grafikte sunulmuştur. </li><li> Tarafından Piper Denetim Masası penceresinde kamera pozu ayarlayınsaatlerin sayısını (Bir saat 33.333 msn&#39;dir) değişiyor. </li><li> Sinyal düşük pozlama ile çok parlak ise, mikroskop kontrol birimini kullanarak lazer yoğunluğunu azaltmak. </li><li> 488 nm, 561 nm ve 640 nm lazer çizgileri için sinyal yoğunluğu kontrol edin. Lazerin kendi kontrol ünitesi (488 nm ve 561 nm) veya mikroskop kontrol ünitesi ile lazer yoğunluğunu ayarlayın. </li><li> Çoklu D Toplama penceresinde, Zaman noktaları kutusunu işaretleyin ve zaman noktalarının sayısını ve istenilen zaman aralığını yazın. </li><li> , Z-yığınlarının kutusunu işaretleyin &quot;göreli Z&quot; seçin ve mevcut konumda Z-start ve Z-uç göreli tanımlar. NOT: 10X veya 20X hedefi için ayrı sırasıyla 3 Z uçakları, 8 mm veya 4 mikron ile başlar. </li><li> Çeşitli yerlerde görüntüleme için birden çok pozisyonlar (XY) onay kutusunu, ardından Düzen pozisyon listesini tıklatın 4 ila 6 farklı pozisyonlar işaretleyin. </li><li> Kanallar kutusunu işaretleyin ve Yeni kanalları ekleyebilir ve lazer yazıcılarını açılır menü ve typ satırları seçin(33.333 msn adedi) her kanal için maruz e. </li><li> &quot;Çoklu D kazanım&quot; penceresinde Kaydet görüntüleri kontrol edin. </li><li> Bir klasörü seçin ve elde edilen tüm görüntüleri otomatik olarak verilen isim öneki ile bu klasöre kaydedilir. NOT: Her sürekli tedarik her zaman noktasında her renkte her Z dilim için ayrı tiff dosyaları olarak ayrı bir alt klasörde kaydedilir. </li><li> Çoklu D Toplama penceresinde Ayarları kaydet tıklayarak tüm ayarları kaydedin. </li><li> Edinimi başlatmak için Çok boyutlu Toplama penceresinde Al&#39;ı tıklatın. </li><li> Oksimetre probu kullanılmaz ya da durması halinde (darbe sabit veya tespit etmek zor değil olduğunda), Kapkaççı tutup kornea refleksi kontrol ederek anestezi verimi görüntüleme işlemi sırasında her 15 dakikada bir kontrol edin. Fare bu uyaranlara duyarlı ise, anestezi ayarlayın. </li><li> Aldıktan sonra, izofluran yoğunlaşan artırarak fare euthanize% 5 oranı. Hiçbir solunum hareketleri saptanabilir olduğu, sahneden fare kaldırmak ve servikal çıkık gerçekleştirin. </li></ol> Imaris Yazılımı Kullanarak Görüntüleri 7. Analiz <ol><li> Dönüşüm Dosyaları (Ek Şekil 1A) .ims için <ol><li> , Kamera yazılımı açın Dosya daha sonra Batch Converter tıklayın. </li><li> Tıklayın dosya ekleme ve ilk pozisyonun ilk dosyayı seçin. Her pozisyon için tekrarlayın. </li><li> Yüklenen her dosya için, Ayarlar üzerine tıklayın ve Z-yığınları için Zaman Kanallarının için, &quot;c&quot; ve &quot;z&quot; için ayarlar &quot;t&quot; bu sırayla görünür doğrulayın. </li><li> İstediğiniz klasöre kaydedin. İnsanlar ve dönüştürülmüş olarak yeni bir dosya oluşturun. </li><li> Tüm için Set tıklayın ve başlayın. </li></ol></li><li> Düzeltmeler (Ek Şekil 1B) <ol><li> Belirli Dönüştürülen klasörüne gidin ve ilk dosyasını açın. </li><li> Ekran Ayarı penceresinde, arka plan ayarlamakGerekirse her kanal için Min numarasını değiştirerek sinyal kesme. </li><li> Gerekirse, Çok sayıda (en alt Çok sayıda yüksek sinyalin yoğunluğu) değiştirerek, sinyal yoğunluğu ayarlayın. NOT: sinyal yoğunluğu / kontrast ayarlamaları güzel bir görselleştirme olması için bir hücre davranışı ya da bir bölmesinin vurgulamak etkinleştirin. Bu sonuç kendisi değişmez. </li><li> Düzen ve Görüntü Özellikleri tıklayın. </li><li> X, y, ve z değerlerini değiştirin (10X objektif, x ve y = 0,712, z = 8 mikron için, bir 20X objektif için: x ve y = 0.36, z = 4 mikron). </li><li> Zaman noktalarını ayarlamak için tüm eşit mesafede tıklayın. Başlangıç ​​tarihini ekleyin ve satın alma başlangıç ​​zamanı. Bitiş tarihini ekleyin ve iktisap (Ek Şekil 1C) zaman sonuna. </li><li> Film izlemek için Oynat düğmesine tıklayın. </li><li> Düzenle&#39;yi tıklatın ve bulanık görüntüleri silmek için zaman noktaları silin. </li><li> İki ayrı satın almalar Toge katılmak içinther bir film içine, ilk filmin son kez noktasına gidin ve Düzenle üzerine tıklayın&gt; ikinci bir dosya eklemek için zaman puan ekleyin. </li></ol></li><li> Bir film olarak kaydetme (Ek Şekil 1D) <ol><li> , Record tıklayın .mov uzantısı ve 0 bir sıkıştırma faktörü seçin. </li><li> Kaydet butonuna tıklayın. </li></ol></li></ol>

<ol><li>Hanahan, D., Weinberg, R. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hallmarks+of+cancer%3A+the+next+generation%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Hallmarks of cancer: the next generation.</a> Cell. 144 (5), 646-674 (2011).</li>
<li>Hanahan, D., Coussens, L. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Accessories+to+the+crime%3A+functions+of+cells+recruited+to+the+tumor+microenvironment%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Cell%22%5BJournal%5D)">Accessories to the crime: functions of cells recruited to the tumor microenvironment.</a> Cancer Cell. 21 (3), 309-322 (2012).</li>
<li>Schouppe, E., De Baetselier, P., Van Ginderachter, J. A., Sarukhan, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Instruction+of+myeloid+cells+by+the+tumor+microenvironment%3A+Open+questions+on+the+dynamics+and+plasticity+of+different+tumor-associated+myeloid+cell+populations%5BTitle%5D)+AND+%22Oncoimmunology%22%5BJournal%5D)">Instruction of myeloid cells by the tumor microenvironment: Open questions on the dynamics and plasticity of different tumor-associated myeloid cell populations.</a> Oncoimmunology. 1 (7), 1135-1145 (2012).</li>
<li>Egeblad, M., Nakasone, E. S., Werb, Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tumors+as+organs%3A+complex+tissues+that+interface+with+the+entire+organism%5BTitle%5D)+AND+%22Dev+Cell%22%5BJournal%5D)">Tumors as organs: complex tissues that interface with the entire organism.</a> Dev Cell. 18 (6), 884-901 (2010).</li>
<li>Lohela, M., Werb, Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intravital+imaging+of+stromal+cell+dynamics+in+tumors%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Opin+Genet+Dev%22%5BJournal%5D)">Intravital imaging of stromal cell dynamics in tumors.</a> Curr Opin Genet Dev. 20 (1), 72-78 (2010).</li>
<li>Egeblad, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Visualizing+stromal+cell+dynamics+in+different+tumor+microenvironments+by+spinning+disk+confocal+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Dis+Model+Mech%22%5BJournal%5D)">Visualizing stromal cell dynamics in different tumor microenvironments by spinning disk confocal microscopy.</a> Dis Model Mech. 1 (2-3), discussion 165 155-167 (2008).</li>
<li>Ewald, A. J., Werb, Z., Egeblad, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dynamic+long-term+in+vivo+imaging+of+tumor-stroma+interactions+in+mouse+models+of+breast+cancer+using+spinning-disk+confocal+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Cold+Spring+Harb+Protoc%22%5BJournal%5D)">Dynamic long-term in vivo imaging of tumor-stroma interactions in mouse models of breast cancer using spinning-disk confocal microscopy.</a> Cold Spring Harb Protoc. 2011 (2), pdb top97 (2011).</li>
<li>Ewald, A. J., Werb, Z., Egeblad, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Monitoring+of+vital+signs+for+long-term+survival+of+mice+under+anesthesia%5BTitle%5D)+AND+%22Cold+Spring+Harb+Protoc%22%5BJournal%5D)">Monitoring of vital signs for long-term survival of mice under anesthesia.</a> Cold Spring Harb Protoc. 2011 (2), pdb prot5563 (2011).</li>
<li>Ewald, A. J., Werb, Z., Egeblad, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preparation+of+mice+for+long-term+intravital+imaging+of+the+mammary+gland%5BTitle%5D)+AND+%22Cold+Spring+Harb+Protoc%22%5BJournal%5D)">Preparation of mice for long-term intravital imaging of the mammary gland.</a> Cold Spring Harb Protoc. 2011 (2), pdb prot5562 (2011).</li>
<li>Nakasone, E. S., Askautrud, H. A., Egeblad, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Live+imaging+of+drug+responses+in+the+tumor+microenvironment+in+mouse+models+of+breast+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Live imaging of drug responses in the tumor microenvironment in mouse models of breast cancer.</a> J Vis Exp. (73), e50088(2013).</li>
<li>Nakasone, E. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Imaging+tumor-stroma+interactions+during+chemotherapy+reveals+contributions+of+the+microenvironment+to+resistance%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Cell%22%5BJournal%5D)">Imaging tumor-stroma interactions during chemotherapy reveals contributions of the microenvironment to resistance.</a> Cancer Cell. 21 (4), 488-503 (2012).</li>
<li>Walther, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genetic+prognostic+and+predictive+markers+in+colorectal+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Cancer%22%5BJournal%5D)">Genetic prognostic and predictive markers in colorectal cancer.</a> Nat Rev Cancer. 9 (7), 489-499 (2009).</li>
<li>Fearon, E. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Molecular+genetics+of+colorectal+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22Annu+Rev+Pathol%22%5BJournal%5D)">Molecular genetics of colorectal cancer.</a> Annu Rev Pathol. 6, 479-507 (2011).</li>
<li>Moser, A. R., Pitot, H. C., Dove, W. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+dominant+mutation+that+predisposes+to+multiple+intestinal+neoplasia+in+the+mouse%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">A dominant mutation that predisposes to multiple intestinal neoplasia in the mouse.</a> Science. 247 (4940), 322-324 (1990).</li>
<li>Su, L. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Multiple+intestinal+neoplasia+caused+by+a+mutation+in+the+murine+homolog+of+the+APC+gene%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Multiple intestinal neoplasia caused by a mutation in the murine homolog of the APC gene.</a> Science. 256 (5057), 668-670 (1992).</li>
<li>Watson, A. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Epithelial+barrier+function+in+vivo+is+sustained+despite+gaps+in+epithelial+layers%5BTitle%5D)+AND+%22Gastroenterology%22%5BJournal%5D)">Epithelial barrier function in vivo is sustained despite gaps in epithelial layers.</a> Gastroenterology. 129 (3), 902-912 (2005).</li>
<li>McDole, J. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Goblet+cells+deliver+luminal+antigen+to+CD103%2B+dendritic+cells+in+the+small+intestine%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Goblet cells deliver luminal antigen to CD103+ dendritic cells in the small intestine.</a> Nature. 483 (7389), 345-349 (2012).</li>
<li>Xu, C., Shen, Y., Littman, D. R., Dustin, M. L., Velazquez, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Visualization+of+mucosal+homeostasis+via+single-+and+multiphoton+intravital+fluorescence+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22J+Leukoc+Biol%22%5BJournal%5D)">Visualization of mucosal homeostasis via single- and multiphoton intravital fluorescence microscopy.</a> J Leukoc Biol. 92 (3), 413-419 (2012).</li>
<li>Haigis, K. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differential+effects+of+oncogenic+K-Ras+and+N-Ras+on+proliferation%2C+differentiation+and+tumor+progression+in+the+colon%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Genet%22%5BJournal%5D)">Differential effects of oncogenic K-Ras and N-Ras on proliferation, differentiation and tumor progression in the colon.</a> Nat Genet. 40 (5), 600-608 (2008).</li>
<li>Sansom, O. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Loss+of+Apc+allows+phenotypic+manifestation+of+the+transforming+properties+of+an+endogenous+K-ras+oncogene+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Loss of Apc allows phenotypic manifestation of the transforming properties of an endogenous K-ras oncogene in vivo.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 103 (38), 14122-14127 (2006).</li>
<li>Janssen, K. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((APC+and+oncogenic+KRAS+are+synergistic+in+enhancing+Wnt+signaling+in+intestinal+tumor+formation+and+progression%5BTitle%5D)+AND+%22Gastroenterology%22%5BJournal%5D)">APC and oncogenic KRAS are synergistic in enhancing Wnt signaling in intestinal tumor formation and progression.</a> Gastroenterology. 131 (4), 1096-1109 (2006).</li>
<li>Takaku, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intestinal+tumorigenesis+in+compound+mutant+mice+of+both+Dpc4+%28Smad4%29+and+Apc+genes%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Intestinal tumorigenesis in compound mutant mice of both Dpc4 (Smad4) and Apc genes.</a> Cell. 92 (5), 645-656 (1998).</li>
</ol>

The authors have nothing to disclose.

Bu yazıda ayrıntılı protokol bağırsak serozal taraftan görüntülenmiş bir canlı hayvanda bir kaç saat için intestinal tümörlerde miyeloid hücre dinamikleri disk confocal görüntüleme eğirme için bir işlem açıklanmaktadır. Inflamasyonu önlemek için ve en iyi fizyolojik koşulları için, bağırsak görüntüleme, bozulmamış organ üzerinde yapılmalıdır. Işık epitel ulaşmadan önce bu tür düz kas olarak çeşitli doku katmanlarının geçmesi gerekir Ancak, ...

Tüm veriler hemen fibroblastlar, endotel hücreleri, bağışıklık ve enflamatuvar hücrelerde, hücre üstü matris ve çözünür faktörler dahil olmak üzere heterojen hücre popülasyonu, aşağıdakilerden oluşan tümör mikro, hemen hemen tüm katkıda başlatılması ve katı tümörlerin ilerlemesinde önemli bir rol oynadığını ortaya koymaktadır kanser 1 özellikleridir. Nitekim, tümör ilerlemesi esnasında, malignite 2 elverişli bir mikro oluşturmak için gelişmeye dönüştürülmüş kanser hücreleri ve stromal hücreler arasında sürekli dinamik etkileşimler vardır. Tümör mikro infiltre hücreler arasında immün, miyeloid hücreleri, 3, en bol miktarda bulunmaktadır. (TAM) tümörle ilişkili makrofaj oluşan miyeloid türevi bastırıcı hücreleri (MDSCs), dendritik hücreler (DC) ve nötrofil (PMNler), miyeloid hücreler, kemik iliğinden kişi etüde dahil edilir ve kademeli olarak sitokinler, büyüme faktörleri ve proteazlar serbest, tümör infiltre teşvik edebilirtümör büyümesi ve 4 yayıldı. Kanser hücreleri ve miyeloid hücreleri arasındaki karışma karmaşık ama dinamiktir. Böylece onların etkileşimlerinin doğası anlayışı bu hücrelerin yerine bir anti-tümör immün yanıtı katılan kanser ilerlemesini teşvik neden belirlemede çok önemli olduğunu ve onu kontrol etmek için yeni hedefler bulmak için yardımcı olabilir. Intravital mikroskobu ile doğrudan gözlem canlı farelerde 5 dokuların içinde hücre dinamikleri hakkında bilgi sağlar. Dört renkli, çok-bölgeli, mikro mercekli döner disk konfokal sistemi meme tümörlerinin 6 olan stromal hücreler incelemek için dizayn edilmiştir. Bu yaklaşım uzun vadeli sürekli görüntülenmesine olanak sağlar ve bu hareket eserler en aza indirmek için, (a) hızlı görüntüleri edinme, (b) uzun süreli anestezi, (c) farklı hücre tiplerini takip dört renk satın alma, (d) floresan etiketleme gibi çeşitli avantajlar içermektedir Farklı tümör bileşenler ve farklı tümör mikroçevrelerde zeka (e) gözlemAynı fareyi hin fare değişkenliği 7-9 fare önlemek için. Bu teknoloji ile, farklı hücre davranışlar tümör oluşumunun progresif aşamalarını gösterir meme tümör virüsü (MMTV) promoterinin yükseltici sürüşlü polioma orta T onkojen (PyMT) modeli olarak bildirilmiştir. (Foxp3 EGFP transgen tarafından görüntülenmiştir Tregs) kan damarları yakınında tercihli göç düzenleyici T-lenfositler DH&#39;lerin (CD11c&#39;nin-DTR-EGFP), karsinom ilişkili fibroblastlar (FsP1 + / + -EGFP) ve miyeloid hücreleri (c-FMS ise -EGFP) tümör kitlesi içinde daha tümör çevresi daha yüksek hareketlilik gösterirler. Akut sistemik hipoksi durumda, hücreler farklı göç: Tregs 6 hareket etmeye devam miyeloid hücrelerinin aksine göç dur. Buna ek olarak, aynı fare modelinde, tümör aşaması ile bu doksorubisin duyarlılık değişiklikleri gösterilmiştir, ilaç dağıtım ilaç tepkisi ve doksorubisin ile ilgilidirTedavi tümörlere miyeloid hücrelerin CCR2 bağımlı işe yol açar. Böylece, canlı görüntüleme ayrıca yerinde ilaç yanıtları anlayışlar ve kemoterapi direncinin 10,11 biyolojisini kazanmak için kullanılabilir. Adenomatus poliposis koli (APC), gen mutasyonu genel olarak insan kolorektal adenomlar ve karsinomlar 12 ve 13 kolon kanseri için son derece yüksek bir risk faktörüdür ailevi adenomatoz polipoz (FAP), APC gen sonuç tek bir kopyasının mutasyon meydana gelir. Fare suşu Süm Min / + Süm geni kodon 850 bir kesme mutasyonu taşıyan ve kendiliğinden bütün ince bağırsağın 14-16 üzerindeki birden fazla bağırsak adenomu gelişir. Periton boşluğuna açma bağırsak erişim için gerekli olduğu bağırsak uzun süreli intravital görüntüleme, çünkü işlemin invaziflik zordur. Kısa vadeli canlı görüntüleme studies önceden sağlıklı bağırsak 17,18 yayınlanmıştır ancak, bağırsak tümörleri uzun vadeli doğrudan gözlem rapor edilmemiştir. Bir cerrahi prosedür, daha önce Resim göğüs tümörlerinde 6,10 kullanılan İntra vital mikroskopik döner disk sistemi kullanılarak tasarlanmış ve bağırsak serozal yüzeyi boyunca tümörlerin görselleştirmek için rafine edilmiştir. Bu makalede, bir protokol bir Apc asgari / + fareleri kullanarak küçük bağırsakta da ötesi tümörler içerisindeki miyeloid hücrelerinin hareketlerine de takip etmesini sağlar tarif edilmektedir.

<table><tbody><tr><td>&lt;em&gt;Apc&lt;sup&gt;Min/+&lt;/sup&gt;&lt;/em&gt; mice</td><td>Jackson Laboratory</td><td>2020</td><td></td></tr><tr><td>ACTB-ECFP mice</td><td>Jackson Laboratory</td><td>3773</td><td></td></tr><tr><td>cfms-EGFP mice</td><td>Jackson Laboratory</td><td>18549</td><td></td></tr><tr><td>2,000 kDa Dextran, rhodamine-conjugated</td><td>Invitrogen</td><td>D7139</td><td></td></tr><tr><td>Isoflurane</td><td>Butler Animal Health Supply</td><td>29450</td><td></td></tr><tr><td>Nitrogen</td><td>UCSF</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Oxygen</td><td>UCSF</td><td></td><td></td></tr><tr><td>1x PBS</td><td>UCSF cell culture facility</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Saline Buffer</td><td>UCSF cell culture facility</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Anti-mouse Ly-6G (GR1) antibody AF647</td><td>UCSF Monoclonal antibody core</td><td></td><td>Stock 1 mg/ml. Use at 7 &amp;mu;g/mouse</td></tr><tr><td>Atropine</td><td>LARC UCSF</td><td></td><td>Use at 1 mg/kg mouse</td></tr><tr><td>Alcohol wipes</td><td>Becton Dickinson</td><td>326895</td><td></td></tr><tr><td>28 G x 1/2 in. insulin syringe</td><td>Becton Dickinson</td><td>329465</td><td></td></tr><tr><td>Remium cover glass</td><td>Fisher Scientific</td><td>12-548-5M</td><td>24x50-1</td></tr><tr><td>Betadine</td><td>LARC UCSF</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Heat blanket</td><td>Gaymar Industries</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Hot bead sterilizer</td><td>Fine Science Tools</td><td>18000-45</td><td>Turn ON 30 min before use</td></tr><tr><td>Cotton tipped apllicators 6-inch</td><td>Electron Microscopy Sciences</td><td>72310-10</td><td></td></tr><tr><td>Anesthesia system</td><td>Summit Anesthesia Support</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Inverted microscope</td><td>Carl Zeiss Inc</td><td>Zeiss Axiovert 200M</td><td></td></tr><tr><td>Stage insert</td><td>Applied Sientific Instrumentation</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Mouse Ox oximeter, software and sensors</td><td>Starr Life Sciences</td><td>MouseOx</td><td></td></tr><tr><td>Nebulizer</td><td>Summit Anesthesia Support</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Imaris</td><td>Bitplane</td><td></td><td></td></tr><tr><td>&amp;mu;Manager</td><td>Vale lab, UCSF</td><td></td><td>Open-source software</td></tr><tr><td>ICCD camera</td><td>Stanford Photonics</td><td>XR-Mega-10EX S-30</td><td></td></tr><tr><td>Spinning disk confocal sacan-head</td><td>Yokogawa Corporation</td><td>CSU-10b</td><td></td></tr></tbody></table>

real-time imaging of myeloid cells dynamics in apcmin/+ intestinal tumors by spinning disk confocal microscopy

Myeloid hücreler tümörler içinde en bol bulunan bağışıklık hücreleri ve tümör gelişimini teşvik ettiği gösterilmiştir. Modern Intravital görüntüleme teknikleri organ içindeki canlı hücresel davranış gözlem imkanı ancak bağırsak gibi nedeniyle, organ ve tümör erişilebilirlik bazı kanser türlerinde zor olabilir. Bağırsak tümörlerinin doğrudan gözlenmesi, daha önce bildirilmemiştir. Burada tarif edilen bir cerrahi prosedür transgenik fareler flüoresan raportör ve enjekte edilebilir izleyiciler ya da antikorları kullanarak, canlı farelerde bağırsak tümörler içinde miyeloid hücre dinamikleri doğrudan gözlem sağlar. Bu amaç için, hızlı bir görüntü elde etme ve uzun süreli kesintisiz görüntüleme sağlayan bir dört renkli, çok-bölgeli, mikro mercekli döner disk konfokal mikroskop kullanılır olmuştur. Çaprazlanır ince bağırsakta çok adenom geliştirmek Apc Min / + fareleri miyeloid hücreleri görselleştirmek için, c-fms-EGFP fareler ve ACTB-eCFP fareler ilekriptaların bağırsak epitel hücreleri görselleştirmek için. , Kan damarları ve nötrofil ve serozal yüzeyi boyunca tümör görüntüleme için konumlandırılması için bir prosedür olarak, farklı tümör bileşenleri etiketlenmesi için prosedürler de tarif edilmiştir. Görüntülemenin birkaç saat derlenen Time-lapse film bağırsak mikroçevresinin in situ miyeloid hücre davranış analizini sağlar.

ACTB-eCFP;; Süm Min / + küçük bağırsakta dönen disk konfokal mikroskopi, tümöral olmayan ve tümoral dokuları kullanılarak c-fms-eCFP farenin seröz yüzeyden görülebilir. Görüntüleme sonra, kamera yazılımı analiz ve satın alma (Ek Şekil 1) ayarlamak için kullanılır. Floresan 2000 kDa dekstran-rodamin intravenöz (IV) enjeksiyonu ve bir Ly-6G 647 ile konjüge edilmiş antikor, sonra, kan damarları ve PMN idi (Şekil 1) tespi...

Watch this Scientific Journal Video about Real-time Imaging of Myeloid Cells Dynamics in ApcMin/+ Intestinal Tumors by Spinning Disk Confocal Microscopy at JoVE.com

Real-time Imaging of Myeloid Cells Dynamics in ApcMin/+ Intestinal Tumors by Spinning Disk Confocal Microscopy

By using transgenic reporter mice and injectable fluorescent labels, long-term intravital spinning disk confocal microscopy enables direct visualization of myeloid cell behavior into intestinal adenoma in the ApcMin/+ colorectal cancer model.

Miyeloid hücrelerin Dynamics Gerçek zamanlı Görüntüleme<em&gt; Süm<sup&gt; Min / +</sup</em&gt; Bağırsak Tümörleri Disk Eşodaklı Mikroskopi Spinning tarafından

Myeloid cells are the most abundant immune cells within tumors and have been shown to promote tumor progression. Modern intravital imaging techniques ...

real-time-imaging-myeloid-cells-dynamics-apcmin-intestinal-tumors

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

Real-time Imaging of Myeloid Cells Dynamics in ApcMin/+ Intestinal Tumors by Spinning Disk Confocal Microscopy

9.7K Görüntüleme.  INSERM U661, Functional Genomic Institute. By using transgenic reporter mice and injectable fluorescent labels, long-term intravital spinning disk confocal microscopy enables direct visualization of myeloid cell behavior into intestinal adenoma in the ApcMin/+ colorectal cancer model. 

Video: Real-time Imaging of Myeloid Cells Dynamics in ApcMin/+ Intestinal Tumors by Spinning Disk Confocal Microscopy

İmplante Edilmiş Stabilize Pencere Kullanılarak Murin Pankreas Görüntüleme

Stabilized Window for Intravital Imaging of the Murine Pancreas

The physiology and pathophysiology of the pancreas are complex. Diseases of the pancreas, such as pancreatitis and pancreatic adenocarcinoma (PDAC) have high morbidity and mortality. Intravital imaging (IVI) is a powerful technique enabling the high-resolution imaging of tissues in both healthy and diseased states, allowing for real-time observation of cell dynamics. IVI of the murine pancreas presents significant challenges due to the deep visceral and compliant nature of the organ, which make it highly prone to damage and motion artifacts. 
Described here is the process of implantation of the Stabilized Window for Intravital imaging of the murine Pancreas (SWIP). The SWIP allows IVI of the murine pancreas in normal healthy states, during the transformation from the healthy pancreas to acute pancreatitis induced by cerulein, and in malignant states such as pancreatic tumors. In conjunction with genetically labeled cells or the administration of fluorescent dyes, the SWIP enables the measurement of single-cell and subcellular dynamics (including single-cell and collective migration) as well as serial imaging of the same region of interest over multiple days. 
The ability to capture tumor cell migration is of particular importance as the primary cause of cancer-related mortality in PDAC is the overwhelming metastatic burden. Understanding the physiological dynamics of metastasis in PDAC is a critical unmet need and crucial for improving patient prognosis. Overall, the SWIP provides improved imaging stability and expands the application of IVI in the healthy pancreas and malignant pancreas diseases.

Yazar Spotlight: Gelişmiş İntravital Görüntüleme ile Pankreas Hastalığı Anlayışında Devrim Yaratmak 

We present a protocol for the surgical implantation of a stabilized indwelling optical window for subcellular-resolution imaging of the murine pancreas, allowing serial and longitudinal studies of the healthy and diseased pancreas.

Murin Pankreasın İntravital Görüntülenmesi için Stabilize Pencere

The physiology and pathophysiology of the pancreas are complex. Diseases of the pancreas, such as pancreatitis and pancreatic adenocarcinoma (PDAC) have ...

Kanser Araştırmaları

Imaging Neutrophils and Monocytes in Mesenteric Veins by Intravital Microscopy on Anaesthetized Mice in Real Time

Efficient immune response is dependent on rapid mobilization of blood leukocytes to the site of infection or injury. Investigating leukocyte migration in vivo is crucial for understanding the molecular basis of leukocyte transendothelial migration and interaction with vascular endothelium. One powerful approach involves intravital microscopy on transgenic mice expressing fluorescent proteins in cells of interest.
Here we present a protocol for imaging monocytes and neutrophils in the CX3CR1gfp/wt mouse i.v. injected with orange dye-labeled neutrophils with an inverted confocal microscope. Time-lapse movies gathered from 30 min&#160;to several hours of imaging allow the analysis of leukocyte behavior in mesenteric veins under both steady state and inflammatory conditions. We also describe the steps to locally induce blood vessel inflammation with TLR2/TLR1 agonist Pam3SK4 and monitor the subsequent recruitment of neutrophils and monocytes.
The presented technique can also be used to monitor other populations of leukocytes and investigate molecules implicated in leukocyte recruitment or trafficking using other stimuli or transgenic mice.

We detail a protocol to monitor the behavior of neutrophils and monocytes in mesenteric veins under steady state and inflammatory conditions using intravital confocal microscopy on anaesthetized mice.

Real Time Anestetize Farelerde Intravital Mikroskopi Mezenterik Damarlardaki nötrofiller ve monositler Görüntüleme

Efficient immune response is dependent on rapid mobilization of blood leukocytes to the site of infection or injury. Investigating leukocyte migration in ...

İmmünoloji ve Enfeksiyon

Imaging CD4 T Cell Interstitial Migration in the Inflamed Dermis

The ability of CD4 T cells to carry out effector functions is dependent upon the rapid and efficient migration of these cells in inflamed peripheral tissues through an as-yet undefined mechanism. The application of multiphoton microscopy to the study of the immune system provides a tool to measure the dynamics of immune responses within intact tissues. Here we present a protocol for non-invasive intravital multiphoton imaging of CD4 T cells in the inflamed mouse ear dermis. Use of a custom imaging platform and a venous catheter allows for the visualization of CD4 T cell dynamics in the dermal interstitium, with the ability to interrogate these cells in real-time via the addition of blocking antibodies to key molecular components involved in motility. This system provides advantages over both in vitro models and surgically invasive imaging procedures. Understanding the pathways used by CD4 T cells for motility may ultimately provide insight into the basic function of CD4 T cells as well as the pathogenesis of both autoimmune diseases and pathology from chronic infections.

The mechanisms that govern the interstitial motility of CD4 effector T cells at sites of inflammation are relatively unknown. We present a non-invasive approach to visualize and manipulate in vitro-primed CD4 T cells in the inflamed ear dermis, allowing for study of the dynamic behavior of these cells in situ.

Iltihaplı Dermisinde içinde görüntüleme CD4 + T hücre Geçiş Göç

The ability of CD4 T cells to carry out effector functions is dependent upon the rapid and efficient migration of these cells in inflamed peripheral ...

Visualizing Adhesion Formation in Cells by Means of Advanced Spinning Disk-Total Internal Reflection Fluorescence Microscopy

In living cells, processes such as adhesion formation involve extensive structural changes in the plasma membrane and the cell interior. In order to visualize these highly dynamic events, two complementary light microscopy techniques that allow fast imaging of live samples were combined: spinning disk microscopy (SD) for fast and high-resolution volume recording and total internal reflection fluorescence (TIRF) microscopy for precise localization and visualization of the plasma membrane. A comprehensive and complete imaging protocol will be shown for guiding through sample preparation, microscope calibration, image formation and acquisition, resulting in multi-color SD-TIRF live imaging series with high spatio-temporal resolution. All necessary image post-processing steps to generate multi-dimensional live imaging datasets, i.e. registration and combination of the individual channels, are provided in a self-written macro for the open source software ImageJ. The imaging of fluorescent proteins during initiation and maturation of adhesion complexes, as well as the formation of the actin cytoskeletal network, was used as a proof of principle for this novel approach. The combination of high resolution 3D microscopy and TIRF provided a detailed description of these complex processes within the cellular environment and, at the same time, precise localization of the membrane-associated molecules detected with a high signal-to-background ratio.

An advanced microscope that permit fast and high-resolution imaging of both, the isolated plasma membrane and the surrounding intracellular volume, will be presented. The integration of spinning disk and total internal reflection fluorescence microscopy in one setup allows live imaging experiments at high acquisition rates up to 3.5 s per image stack.

Hücreleri tarafından seçilmiş adezyon oluşumunda görselleştirme gelişmiş Disk-toplam iç yansıma floresans mikroskobu iplik

In living cells, processes such as adhesion formation involve extensive structural changes in the plasma membrane and the cell interior. In order to ...

Biyomühendislik

Extended Time-lapse Intravital Imaging of Real-time Multicellular Dynamics in the Tumor Microenvironment

In the tumor microenvironment, host stromal cells interact with tumor cells to promote tumor progression, angiogenesis, tumor cell dissemination and metastasis. Multicellular interactions in the tumor microenvironment can lead to transient events including directional tumor cell motility and vascular permeability. Quantification of tumor vascular permeability has frequently used end-point experiments to measure extravasation of vascular dyes. However, due to the transient nature of multicellular interactions and vascular permeability, the kinetics of these dynamic events cannot be discerned. By labeling cells and vasculature with injectable dyes or fluorescent proteins, high-resolution time-lapse intravital microscopy has allowed the direct, real-time visualization of transient events in the tumor microenvironment. Here we describe a method for using multiphoton microscopy to perform extended intravital imaging in live mice to directly visualize multicellular dynamics in the tumor microenvironment. This method details cellular labeling strategies, the surgical preparation of a mammary skin flap, the administration of injectable dyes or proteins by tail vein catheter and the acquisition of time-lapse images. The time-lapse sequences obtained from this method facilitate the visualization and quantitation of the kinetics of cellular events of motility and vascular permeability in the tumor microenvironment.

This protocol describes the use of multiphoton microscopy to perform extended time-lapse imaging of multicellular interactions in real time, in vivo at single cell resolution.

Tümör mikroçevresinde Gerçek zamanlı Multisellüler Dynamics Genişletilmiş Time-lapse intravital Görüntüleme

In the tumor microenvironment, host stromal cells interact with tumor cells to promote tumor progression, angiogenesis, tumor cell dissemination and ...

Tıp

Intravital Microscopy of Tumor-associated Vasculature Using Advanced Dorsal Skinfold Window Chambers on Transgenic Fluorescent Mice

Tumor and tumor vessel development, as well as tumor response to therapeutics, are highly dynamic biological processes. Histology provides static information and is often not sufficient for a correct interpretation. Intravital evaluation, in which a process is followed in time, provides extra and often unexpected information. With the creation of transgenic animals expressing cell-specific markers and live cell tracers, improvements to imaging equipment, and the development of several imaging chambers, intravital microscopy has become an important tool to better understand biological processes. This paper describes an experimental design for the investigation of tumor vessel development and of therapeutic effects in a spatial and temporal manner. Using this setup, the stage of vessel development, tip cell and lumen formation, blood flow, extravasation, an established vascular bed, and vascular destruction can be visualized and followed. Furthermore, therapeutic effects, intratumoral fate, and the localization of chemotherapeutic compounds can also be followed.

This protocol describes the intravital imaging of transgenic mice expressing cell-specific fluorescent markers. Intravital imaging provides a non-invasive method for high-resolution observations in living animals using implantable windows through which the microscopic visualization of processes is possible. This method is especially useful to study longitudinal processes.

Tümör ilişkili damarlara kullanmanın intravital mikroskobu gelişmiş Dorsal deri kıvrım pencere Chambers transgenik floresan fareler üzerinde

Tumor and tumor vessel development, as well as tumor response to therapeutics, are highly dynamic biological processes. Histology provides static ...

Intravital Microscopy of Monocyte Homing and Tumor-Related Angiogenesis in a Murine Model of Peripheral Arterial Disease

The therapeutic goal for peripheral arterial disease and ischemic heart disease is to increase blood flow to ischemic areas caused by hemodynamic stenosis. Vascular surgery is a viable option in selected cases, but for patients without indications for surgery such as progression to rest pain, critical limb ischemia, or major disruptions to life or work, there are few possibilities for mitigating their disease. Cell therapy via monocyte-enhanced perfusion through the stimulation of collateral formation is one of a few non-invasive options.
Our group examines arteriogenesis after monocyte transplantation into mice using the hindlimb ischemia model. Previously, we have demonstrated improvement in hindlimb perfusion using tetanus-stimulated syngeneic monocyte transplantation. In addition to the effects on the collateral formation, tumor growth could be affected by this therapy as well. To investigate these effects, we use a basement membrane-like matrix mouse model by injecting the extracellular matrix of the Engelbreth-Holm-Swarm sarcoma into the flank of the mouse, after occlusion of the femoral artery.
After the artificial tumor studies, we use intravital microscopy to study in vivo tumor-angiogenesis and monocyte homing within collateral arteries. Previous studies have described the histological examination of animal models, which presupposes subsequent analysis to post-mortem artifacts. Our approach visualizes monocyte homing to areas of collateralization in real time sequences, is easy to perform, and investigates the process of arteriogenesis and tumor angiogenesis in vivo.

Monocytes are important mediators of arteriogenesis in the context of peripheral arterial disease. Using a basement membrane-like matrix and intravital microscopy, this protocol investigates monocyte homing and tumor-related angiogenesis after monocyte injection in the femoral artery ligation murine model.

Monosit posta ve tümör ile ilgili angiogenez periferik arter hastalığı, bir fare modeli intravital mikroskobu

The therapeutic goal for peripheral arterial disease and ischemic heart disease is to increase blood flow to ischemic areas caused by hemodynamic ...

Intravital Imaging of Intraepithelial Lymphocytes in Murine Small Intestine

Intraepithelial lymphocytes expressing &#947;&#948; T cell receptor (&#947;&#948; IEL) play a key role in immune surveillance of the intestinal epithelium. Due in part to the lack of a definitive ligand for the &#947;&#948; T cell receptor, our understanding of the regulation of &#947;&#948; IEL activation and their function in vivo remains limited. This necessitates the development of alternative strategies to interrogate signaling pathways involved in regulating &#947;&#948; IEL function and the responsiveness of these cells to the local microenvironment. Although &#947;&#948; IELs are widely understood to limit pathogen translocation, the use of intravital imaging has been critical to understanding the spatiotemporal dynamics of IEL/epithelial interactions at steady-state and in response to invasive pathogens. Herein, we present a protocol for visualizing IEL migratory behavior in the small intestinal mucosa of a GFP &#947;&#948; T cell reporter mouse using inverted spinning disk confocal laser microscopy. Although the maximum imaging depth of this approach is limited relative to the use of two-photon laser-scanning microscopy, spinning disk confocal laser microscopy provides the advantage of high speed image acquisition with reduced photobleaching and photodamage. Using 4D image analysis software, T cell surveillance behavior and their interactions with neighboring cells can be analyzed following experimental manipulation to provide additional insight into IEL activation and function within the intestinal mucosa.

We describe a method to visualize GFP-labeled &#947;&#948; IELs using intravital imaging of murine small intestine by inverted spinning disk confocal microscopy. This technique enables the tracking of live cells within the mucosa for up to 4 h and can be used to investigate a variety of intestinal immune-epithelial interactions. &#160;

Miyeloid hücrelerin Dynamics Gerçek zamanlı Görüntüleme

Özet

Daha Fazla Video Keşfet

Murin Pankreasın İntravital Görüntülenmesi için Stabilize Pencere

Murin Pankreasın İntravital Görüntülenmesi için Stabilize Pencere

Murin Pankreasın İntravital Görüntülenmesi için Stabilize Pencere

Real Time Anestetize Farelerde Intravital Mikroskopi Mezenterik Damarlardaki nötrofiller ve monositler Görüntüleme

Iltihaplı Dermisinde içinde görüntüleme CD4 + T hücre Geçiş Göç

Hücreleri tarafından seçilmiş adezyon oluşumunda görselleştirme gelişmiş Disk-toplam iç yansıma floresans mikroskobu iplik

Tümör mikroçevresinde Gerçek zamanlı Multisellüler Dynamics Genişletilmiş Time-lapse intravital Görüntüleme

Tümör ilişkili damarlara kullanmanın intravital mikroskobu gelişmiş Dorsal deri kıvrım pencere Chambers transgenik floresan fareler üzerinde

Monosit posta ve tümör ile ilgili angiogenez periferik arter hastalığı, bir fare modeli intravital mikroskobu

Murine Ince bağırsak INTRAEPİTELYAL lenfosit intravital görüntüleme