Name: porphyromonas gingivalis as a model organism for assessing interaction of anaerobic bacteria with host cells
Uploaded: 2015-12-17T13:00:00.000+00:00
Duration: 12 min 16 s
Description: Watch this Scientific Journal Video about Porphyromonas gingivalis as a Model Organism for Assessing Interaction of Anaerobic Bacteria with Host Cells at JoVE.com

We would like to thank Dr. Hiroshi Miyazaki, Dr. Scott Henderson, Dr. Todd Kitten, Dr. Justin Hutcherson, Dr. Catherine Jauregui, and Collin R. Berry. This work was supported by NIH NIDCR grants R01DE016124, R01DE018039, and R01DE023304 to J.P. Lewis.
Microscopy was performed at the VCU Department of Anatomy and Neurobiology Microscopy Facility, supported, in part, with funding from NIH-NINDS Center core grant (5P30NS047463).

Aşağıdaki protokoller anaerobik türler, P. tarafından işgali kültüre ve eğitim yöntemlerini anlatacağız gingivalis; Bununla birlikte, bu protokoller anaerobik patojenlerin bir dizi kullanılabilir. HUVECler kullanılsa da, bu protokol immün olmayan bağışıklık hem de ökaryotik hücreler için kullanılabilmektedir. 1. Anaerobik Odası Kullanımı ve Bakımı Not: P. gingivalis ortam havasındaki karşılaşılan oksijen normal düzeylere duyarlı bir anaerob olduğunu. Kontrollü bir anaerobik ortam P. ekimi için hayati önem taşımaktadır gingivalis. <ol><li> Burada, karışık anaerobik gaz (% 80 N2,% 10 H2, 2 10% CO) bir vinil anaerobik odası içinde (Şekil 1A) &#39;de verilen bir yapay atmosferi korumak. Anaerobik odasına laboratuar ortamında öğeleri aktarmak için bir hava kilidi (Şekil 1B) kullanın. Hava kilidi elle tw faaliyetKarışık anaerobik gazın önce N 2 gazı ile buz temizleme. </li><li> Istenmeyen hidrojen sülfid bakım gerektirmeyen çıkarılması için bir bir hidrojen sülfür arındırma kolonu (Şekil 1C) kullanın. Katalizör tarafından oluşturulan O H 2 kaldırmak ve kontaminasyon yayılmasını kolaylaştıran aerosoller önlemek için bölme içinde bir nem alıcı yerleştirin. Not: Hidrojen sülfür, birçok anaerobik bakteri doğal metabolik yan ürünü olduğunu ve birikim bakteriler için toksik ve elektronik zarar ve bir katalizör ömrünü azaltabilir. </li><li> Hidrojen mevcudiyetinde (Şekil 1D) oksijeni ortadan kaldıran bir paladyum katalizörü vasıtasıyla odası atmosferinin sirküle edilmesi için bir fan kutusu kullanın. Not: Bir çevrimli atmosferik (HEPA) filtresi 0.22 um veya daha büyük bir boyutu ile havadaki kirletici kaldırır. </li><li> Anaerobik içinde bulunan bir 37 ° C kuluçka makinesi içinde kültür anaerobik bakterilerodası. Anaerobik odasının içine çalışırken standart aseptik teknikler kullanın. </li></ol><img alt="figür 1" src="/files/ftp_upload/53408/53408fig1.jpg" /> Şekil 1. Anaerobik vinil odası ve bileşenleri. (A) atmosferik oksijen tamamen kapatılmış bir vinil anaerobik odası bir anda (32 x 78 in) iki kişi için çalışma alanı sağlar. Bu (geri orta) 37 ° C&#39;de ayarlanmış bir inkübatör içermektedir. (B) Bir hava kilidi anaerobik odasına laboratuar ortamında öğelerin aktarımı için kullanılır. Resimde otomatik olarak anaerobik ortam yaratmak için gerekli vakum ve temizleme işlemleri gerçekleştirmek için programlanabilir bir kontrolör ile çalıştırılan bir otomatik airlock olduğunu. (C) bir hidrojen sülfür arındırma Sütun istenmeyen hidrojen sülfitin bakım gerektirmeyen bir yüksek kapasiteli kaldırma sağlar. (D) İki katalizör fan kutularıhidrojen varlığında, oksijeni ayırmaktadır, paladyum katalizörü vasıtasıyla odası atmosferinin dolaşımını sağlamaya anaerobik odası boyunca yerleştirilir. Anaerobik odası üreticinin talimatlarına göre ayarlanır. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53408/53408fig1large.jpg" target="_blank">Bu rakamın büyük halini görmek için lütfen buraya tıklayınız.</a> Anaerobik Bakterilerin 2. Hazırlık Not: P. gingivalis aerotolerant ve havadar koşullarda saklanabilir ancak% 6 17,18 daha yüksek seviyelerde oksijen varlığında büyüme olmaz. Bir anaerobik odası P. uygun yetiştirilmesi için gerekli olan gingivalis ve diğer anaerobik türler (Şekil 1). Anaerobik odası kullanımı ile ilgili uygun eğitim ve öğretim microanaerobes 19 ile çalışmaya başlamadan önce gerekmektedir. <ol><li> Anaerobik iklimlendirme tüm sıvı ortamları ve plakaları dengelenmesiEn az 12 saat boyunca deney öncesinde iyonları artık oksijen çıkarmak için. </li><li> P Transferi anaerobik odasına -80 ° C derin dondurucuda gelen gingivalis, çözülme edelim. </li><li> Streak P. (TSA II% 5 koyun kanı ile) triptikaz soya kan agar plaklarına gingivalis. 4-7 gün için bir anaerobik kuluçka makinesi içinde 37 ° C &#39;de parafilm ve mağaza plakaları sarın. </li><li> P aşılamak 3 ml beyin kalp infüzyon halinde gingivalis (BHI) et steril döngüleri kullanarak, hemin ve menadoin anaerobik ve titiz mikroorganizmaların izolasyonu ve kültürü için zenginleştirilmiş bir seçici olmayan sıvı ortam ile takviye edilmiştir. Not: Uzun süreli depolama için, -80 ° C derin dondurucuda gliserol veya DMSO (% 10-20 nihai konsantrasyon) ve yer ile BHI hazırlanan bakteri kültürleri karıştırın. </li><li> P. bir başlangıç ​​kültürünü hazırlayın 1:10 seyreltme yapılmadan ve bakteri, orta log fazına kadar büyümeye izin vererek gingivalis. </li></ol> Not: bac optik yoğunluğunuarteryal Süspansiyon belirlenir ve incelenecek her bir suş için bakteri konsantrasyonu ayarlanır. P. gingivalis, orta log fazında ve • 7 x 10 8 hücre / ml 0,7 tekabül OD 660 bir süspansiyon. Protokolde tarif edildiği büyüme koşulları yukarıdaki P. özgüdür gingivalis ve diğer bakteri türleri için adapte edilmesi gerekebilir. 3. Endotel Hücre Kültürü Not: Alma üreticinin talimatlarına uygun olarak,% 5 CO2 içinde 37 ° C &#39;de, vasküler endotelyal büyüme faktörleri (VEGF) ihtiva eden bazal ortam içinde primer HUVECler ve kültür toplanmış. <ol><li> 15 ml VEGF medyada 2.5 x 10 5 hücre / şişeye T-75 matara Tohum HUVECler. Not:% 4,0 tripan mavisi ile 1 seyreltme: 1 vasıtasıyla canlılığı kontrol edin. Binoküler ışık mikroskobu altında bakıldığında tripan mavisi koruyacaktır bir tehlikeye membran ile hücreler, intakt membranlı sağlıklı hücre, beyaz görünecektir. Counhücrelerin% 80&#39;den fazla 20 yaşayabilir olduğundan emin olun, 100 hücre t. </li><li> Hücreler ~% 80 confluency ulaşana kadar önceden ısıtılmış taze VEGF medya ile Ortam 2 günde değiştirin. </li><li> Önceden ısıtılmış bir kez PBS ile yıkayın hücreleri. 2 ml tripsin nötrleştirme çözeltisi, ardından 5 dakika boyunca 2 ml tripsin-EDTA (% 0.25) ile inkübe edilerek T75 şişeden hücreler serbest bırakılması. </li><li> Bir 50 ml konik bir tüp içinde süspansiyon haline getirilmiş edilmiş HuVEClerde toplayın. PBS ile T-75 şişeler herhangi bir ekstra hücreleri yıkayın ve 50 ml konik tüpler transfer. </li><li> 10 dakika boyunca 200 x g&#39;de santrifüje hücreleri. </li><li> Süpernatantı 10 ml önceden ısıtılmış VEGF medya hücre pelet askıya. </li><li> Hemasitometre veya benzer hücre sayım cihazı kullanarak hücre konsantrasyonunu belirleyin. </li><li> (50.000 / oyuk) lamelleri ile 6-çukurlu bir tablaya (400,000 / çukur) veya 12-çukurlu plaka ya da eklemek hücre süspansiyonu miktarını hesaplayın. HUVECler ertesi gün deneme için hazır olacak. </li></ol> 4. Survival Testi Invasion / Etkileşim(Kaplama) Not: Bu deney yaparken, / de 400,000 hücre &#39;de tohumlanmakta endotel hücrelerinin iki 6-oyuklu plakalar hazırlamak. Bir tabak bakteri bağlı ve ana hücreler tarafından değerlendirmek için kullanılacaktır. Diğer levha içi bakteriler için hesap verecek. Iki numune kopyaların bir deneyde ifa edilecek olan, 6-yuvalı plaka sağlar. Bu protokolün bir taslak hayatta kalma tahlil akış şeması (Şekil 2) bakınız. <ol><li> Onlar orta-log büyüme (OD 660 0.5-0.7) ulaşıncaya kadar (bölüm 1) yukarıda açıklandığı gibi anaerobik bakteri hazırlayın. </li><li> Santrifüj bakteri 10 dakika için 5000 xg&#39;de. Santrifüj dış anaerobik odası ise, sıkıca kapatılmış bir 15 ml tüp içinde bakteriyel numuneleri taşıyan oksijen sızmasını önlemek için parafilm kap sarma: edin. </li><li> Topak haline P. yerleştirin gingivalis geri odasında, süpernatant atın. VEGF Beni resuspending önce tekrar PBS ile pelet bakteri yıkayındia. Tüm bakteri soyları, orta log fazında (~ 7 x 10 8 hücre / ml) karşılık gelen 0.7 OD 660 değerinde test için süspansiyonlar hazırlayın. Bakteriler şimdi enfeksiyon için hazır. </li><li> Anaerobik odasına doku kültürü inkübatör HUVECler içeren transfer 6 oyuklu plakalar. Ortamı çıkarın ve anaerobik PBS ile üç kez yıkayın. Her bir oyuğa, anaerobik VEGF ortamının 2 ml ilave edilir ve enfeksiyon için sıcaklık dengelenmesi için 20 dakika boyunca anaerobik bir inkübatörde 37 ° C&#39;de plakalar yerleştirin. Not: enfeksiyon için kullanılan olanları sağlamak için kan agar plaklarına Plaka bakteriler homojen ve enfeksiyon sırasında kontamine değildir. </li><li> 100: enfeksiyon çokluğunda bakteri konakçı hücreleri (ana MOI bakteriler) Infect 1. Not: HUVEC hücre sayısı enfeksiyondan önce tek bir oyuk üzerinde tripan dışlama testi ile tespit edilir. Bakteriyel hücre sayısı (0,5 = 5 x 10 8 hücre / ml OD, gibi), optik yoğunluk ile belirlenmiştir. Bİçeriği: Bakteri konsantrasyonu HUVECler konsantrasyonuna 21 dayalı doğru İçişleri Bakanlığı ayarlanır. </li><li> Anaerobik inkübatör içine enfekte HUVEC 6-çukurlu tabak yerleştirin ve bakteriler, 30 dakika boyunca, konak hücreleri ile etkileşim sağlar. </li><li> BHI içinde saponin anaerobik odası içinde ve 0.2 um&#39;lik bir filtreden filtre (ağ / hac% 1.0) hazırlayın. </li><li> Hem takılı ve içselleştirilmiş bakteri Survival. <ol><li> Inkübatörden, aspirat ortam plakaları çıkarın anaerobik üç kez PBS ile yıkayın ve 2 ml (adım 4.8 de tarif edildiği gibi hazırlanmıştır),% 1.0 saponin, süzüldü ekleyin. Ev sahibi hücre lizizine izin vermek için 15 dakika boyunca inkübe edin. </li><li> Hücre kazıyıcı ile her iyi alt kazıyın. Beher kuyudan hücre karışımını toplamak ve 1 yapın: BHI 1 seyreltme. </li><li> Numunenin seri dilüsyonları yapmaya devam edin. Bakteriyel türler ve konsantrasyona bağlı olarak, seri dilüsyonları ayarlayın. 1 ile başlayın: 100 veya 1: 1000 dilüsyonları. </li><li> Kan agar plakaları üzerine istenen seyreltme 200 ul Plate. Bürünmüş37 ° C&#39;de anaerobik kuluçka makinesinde parafilm ve yerine o plakalar. </li><li> 37 ° C&#39;de yedi günlük inkübasyondan sonra, plakalar çıkarın ve el koloniler saymak için bir ışık kutusu kullanılarak koloni oluşturan birimler (CFU) sayısı. Not: CFU numaralandırılan. CFU büyük miktarlar için, görüntü alınabilir ve bilgisayar programı CFU numaralandırılmasına kolaylaştırmak için kullanılabilir. </li></ol></li><li> Içselleştirilmiş bakteri Survival. <ol><li> Inkübatör plakaları çıkarın. Anaerobik PBS ile üç kez yıkanır ve takviye antibiyotik (gentamisin 300 ug / ml, metronidazole 400 ug / ml) ile 2 ml VEGF ortamı eklenir. </li><li> 1 saat süreyle inkübe edin. Istenilen bakteri suşu öldürme% 100 etkilidir, böylece antibiyotik test etmek ve onlar konakçı hücreleri 22,23 nüfuz olmadığından emin olmak için emin olun. </li><li> Aspire medya, süzülmüş% 1.0 saponin 2 ml ekleyin. Ev sahibi hücre lizizine izin vermek için 15 dakika boyunca inkübe edin. </li><li> Her wel alt Pençehücre kazıyıcı ile l. Her kuyudan hücre karışımı toplayın ve 1 yapın: BHI 1 seyreltme. </li><li> Örnek (: 100, 1: 1000, 1) seri dilüsyonları hazırlayın. </li><li> Kan agar plakaları üzerine istenen seyreltme 200 ul Plate. Anaerobik inkübatör parafilm ve yerinde plakaları sarın. </li><li> 37 ° C&#39;de inkübasyondan yedi gün sonra plakaları kaldırmak ve CFU sayımı C. </li></ol></li></ol><img alt="Şekil 2," src="/files/ftp_upload/53408/53408fig2.jpg" /> Şekil 2. ökaryotik hücreler ile anaerobik bakteri hayatta kalmak için kullanılan bir protokol şematik. Toplam bakteri hayatta kalma ve içselleştirilmiş bakteri hayatta kalmak için her iki deneyleri aynı anda yapılabilir. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53408/53408fig2large.jpg" target="_blank">Bu rakamın büyük halini görmek için lütfen buraya tıklayınız.</a> Ana Ce içine Bakterilerin 5. içselleştirilmesills (Floresan Mikroskobu) Not: P. gingivalis, 2 &#39;ile 7&#39;-bis- etiketlenmiştir (2-karboksietil) -5- (ve-6) -Carboxyfluorescein, asetoksimetil ester (BCECF-AM). BCECF-AM floresan olmayan bir zan-geçirgen bir boyadır; Hücre içi esterazların etkisi ile floresein BCECF olan dönüşüm hücre canlılığı gösterebilir. P. gingivalis BCECF-AM boyası ile etiketlenmiş ve sonra ökaryotik hücreleri enfekte etmek için kullanılır. Enfeksiyonu takiben, hücreler sabitlenir ve DAPI ve TRITC-falloidinle etiketli. Ökaryotik hücre çekirdeği leke kullanılan DAPI leke da değil metabolik cleave BCECF-AM can cansız bakterileri tanımlamak için bir karşı-önlem sağlar bakteriyel hücre çekirdeğine, etiketleyecektir. Konakçı hücreler TRITC-Phalloidin, kırmızı aktin boya ile vurgulanır. <ol><li> Otoklav lamelleri. Aseptik / gözenek 5 x 10 4 hücre endotelial hücreler, tohumlamadan önce 12 oyuklu plakalara lamelleri ekleyin. (Deneyden önce hazırlanan gün) </li><li&gt; yukarıda tarif edildiği gibi 12-yuvalı plakalar içinde 18 mm (# 1.5 kalınlık) dairesel lamelleri hazırlanan endotel hücrelerini yazıldı. </li><li> Bölüm 1&#39;de anlatıldığı gibi orta-log fazı büyüdü anaerobik bakteriler (= 0.5-0.7 OD 660) hazırlayın. </li><li> Yıkama bakteri 5000 xg&#39;de santrifüj ve 5-7 x 10 8 hücre / ml&#39;de PBS içinde süspansiyon haline pelet ile anaerobik PBS ile 2x. </li><li> 2 uM BCECF-AM bir son konsantrasyona kadar bakteriyel süspansiyon (5-7 x 10 8 hücre / ml) içinde 2 ml 0,2 mM BCECF-AM 20 ul ekle. </li><li> Karanlıkta 30 dakika boyunca 37 ° C&#39;de inkübe edilir. </li><li> Anaerobik odasına doku kültürü inkübatör 18 mm (# 1.5 kalınlık) dairesel lamelleri numaralı seribaşı endotel hücreleri ile transfer plakaları. PBS ve anaerobik VEGF medya ile alışverişi ile yıkayın. Not: HUVECler ışık mikroskobu altında sağlıklı olduğundan emin olun. HUVECler% 80 birleşen, morfoloji üreticilerine karşılaştırılabilir olmalıdır ~ olmalıdır. </li><li> Santrifüj etiketli bakteriler10 dakika için 5000 xg artık BCECF-AM boya kaldırmak için. 2 ml anaerobik VEGF medyada Askıya. </li><li> 1 (bakteri: host) 100 MOI&#39;da etiketlenmiş bakteri ile konak hücreleri enfekte. </li><li> 30 dakika boyunca 37 ° C&#39;de anaerobik odasında inkübe edilir. </li><li> Ve PBS ile üç kez enfeksiyon yıkama hücreleri sonra 10 dakika boyunca taze hazırlanmış% 4.0 paraformaldehid düzeltmek. Not: hücrelerin sabitlenmesi sonra deney anaerobik ile odacığın dış tarafına yapılabilir. </li><li> Yıkama PBS ile üç kez lamelleri. </li><li> 10 dakika için% 0.2 Triton X-100, 1 ml ekleyin. </li><li> Yıkama PBS ile üç kez lamelleri. </li><li> 45 dakika boyunca lamelleri TRITC falloidinle (50 ug / ml) 50 ul ekle. </li><li> Yıkama DAPI içeren yumuşak set montaj ortamı ile bir slayt 12 plaka ve yerden kaldırmak üç kez lamelleri. Oje ile kenarlarını kapatın. Not: Slaytlar karanlıkta birkaç ay saklanabilir. Foto-ağartma önlemek için hafif maruz kalmaktan kaçının. </li><li> Görünüm slaytlarkonfokal mikroskop ile incelendi. <ol><li> Burada, (ters) bir AxioObserver etrafında düzenlenmiş bir 34 kanallı spektral sistemi (32 kanal dizi detektörü ve iki yan PMT dedektörleri, artı iletilen ışık dedektörü) bir motorlu XY sahnede stand kullanın. Mavi diyot (405 nm), multi-line Argon (458, 488, 514 nm), yeşil diyot (561 nm), kırmızı HeNe (633 nm) ve 440 nm darbeli lazer: Sistem beş lazerler vardır. (FRET-Flim için) 2 hibrid GaAsP dedektörleri ile bir Flüoresans Ömrü Görüntüleme sistemini donatın. </li><li> 340-380 nm ve 540-560 nm, ve sırası ile 435-485 nm ve 570-590 nm&#39;lik bir emisyon filtresi uyarım dalga boyları ile bir çift bant filtre kullanılarak bir kanalda DAPI ve TRITC floresans algılama. 440-500 nm eksitasyon dalga boyu ve 510-590 nm&#39;lik bir emisyon filtresi olan bir filtre kullanılarak BCECF-AM floresans algılama. Not: Her bakteri suşu yapılmalıdır BCECF-AM için Kontrolleri canlı bakteri doğru etiketleme sağlamak için çalışılmaktadır. Öncelikle bu nonviab doğrulamakle bakteri DAPI-pozitif ve BCECF-negatiftir. İkincisi, canlı bakteri floresein BCECF içine BCECF-AM metabolize sağlamak. Bakteri veya BCECF-AM boyası değişken konsantrasyonları uygun etiketleme için test edilmesi gerekebilir. </li></ol></li></ol>

Authors have nothing to disclose.

Yukarıdaki yöntemler eukaryotik hücreleri ile anaerobik bakteri ilişkinin değerlendirilmesi için özel bir tahlilleri tasarlamak için de kullanılabilir. Ancak, başarılı deneyler gerçekleştirmek için bazı noktalar vardır. İlk çalışmada kullanılan mikrobiyal soylar bulunmaktadır. Bu, benzer bir büyüme aşamalarında ve invazyon verim 13 etkileyebilir yukarıda herhangi bir fark benzer hücre konsantrasyonları elde hayatta kalma tahlilinde hem de iki suşlar?...

Anaerobik bakteriler insan vücudunun hemen hemen tüm yüzeyleri kolonize. Oksijen konsantrasyonu düşüktür bağırsak ve genitoüriner yolun florasında baskın olmasına rağmen, aynı zamanda cilt, ağız, burun, boğaz ve 1 yüksek seviyelerde bulunmaktadır. Anaerobik bakteriler endojen enfeksiyon ortak bir nedenidir ve sıklıkla hastalıklı sitelerden izole edilmiştir. Bununla birlikte, bunların üreyen doğa anaeroblar izole etmek ve kültür, zor olabilir. Anaerobik bakteri içeren çalışmalar kısıtlı şartlarda yapılmalıdır. Modern anaerobik-kültür teknikleri araştırmacılar, birçok anaerobik laboratuar suşları ve hatta klinik izolatları 2,3 incelemek için gerekli olan anaerobik ayarlarını taklit izin verir. Patojenik anaerobik bakteriler içinde bulundukları konakçı hücreler ile dinamik bir ilişki ve ko-evrim geliştirdik. En anaeroblar infecti ulaşmadan önce bir vücut bağışıklığı tepkisi ile öldürülmeye duyarlılı seviyeleri. Ancak, bazı patojen bakteriler kaçmak ya da konak immün yanıtı yıkmak için mekanizmalar geliştirmişlerdir. Bunlar, bağışıklık tanıma bağışıklık aracılarının nötralizasyon, hücre-aracılı bağışıklığın bir değişiklik, konakçı hücrelerin istilası ve 4 sinyal İmmün alterasyon kaçırma gibi mekanizmalarla bu amacı gerçekleştirmek. Porphyromonas gingivalis, hem oral hem de karışmış bir Gram-negatif anaerob ağız dışı hastalıklar, ev 5-7 patojen değişikliklerin neden olabilecek yüksek adapte bakteriyel patojenin bir örnektir. Biyofilm plak cepler atmosferik oksijen 8 korunur anaerobik bakteri barındırabilir diş ve dişeti mukoza dokusunun arasında oluşan derin yarıklar oluşmuştur. Bunlar periodontal cepler gibi P. gibi çeşitli anaerobik patojenler, bir niş olarak hizmet gingivalis 9. P. gingivalis şeklini kapasitesine sahip bir kilit taşı patojendirPeriodontal hastalıkların 10 gelişmesini ve ilerlemesini teşvik şekillerde ağız mikrobiyal topluluk ing. Bu ana proteinlerin geniş bir spektrumuna karşı aktif olan ve ana savunma 11 kaçırma için mekanizmalar sağlar hastalık oluşturma faktörlerinin çok sayıda üretir. Aynı zamanda, in vitro ve in vivo 12-14 15 epitel, endotel, fibroblastik ve periodontal ligament hücreleri istila edebilir. Etkin bir şekilde, P. konakçı hücreleri işgal tarafından gingivalis konak bağışıklık kaçabilir. Konakçı hücrelerin etkili işgali sadece bakteri konak savunma kaçmasına izin değil, aynı zamanda gelecekte yeniden enfeksiyon için bir rezervuar olarak hizmet yanı sıra konakçı hücreyi değiştirir. Konakçı hücreler tarafından yapışması ve bakterinin içselleştirme yer alan moleküler mekanizmalar çalışmalar gereklidir. Birkaç laboratuvarlarda Araştırma P. içselleştirilmesi ile ilgili moleküler olayları anlamaya odaklanmıştır konakçı hücreler tarafından gingivalishem de bastırmak ve bağışıklık yanıtı kaçırmak ve düşman konak savunma mekanizmaları hayatta kalmak için kullanılan mekanizmalar olarak. Tanımlanması ve konakçı hücreleri işgal edebilen patojenleri karakterize edebilen çok sayıda deneyler vardır. Oksijen yokluğunda hantal araçlara dayanan çalışmalar yapmak zor olduğundan Ancak, anaerobik patojenler ile in vitro çalışmalar ağırlıklı olarak araştırmacı birçok deneysel sorunlar oluşturmaktadır. Bu ökaryotik hücreler büyümeye oksijene ihtiyaç ve dolayısıyla doku kültürü inkübatörlerde ayrı hazırlanmış olmalıdır gerçeği ile birleşir. Bu tür engelleri önlemek için bir yolu atmosferik oksijenin altında çalışmalar yapmak olurdu, ama o anaerobik bakteri büyüme imkansız hale getirecektir. Başka bir yöntem, enfekte ve ana-hücre etkileşimini incelemek ısı ile öldürülmüş bakterilerin kullanmak olacaktır. Ancak, farklılıkların konak-patojen etkileflimlere alaka azaltmak ısı ile öldürülmüş ve canlı bakteri arasındaki mevcut16. Bu konak hücreleri ile etkileşim değişmeden ifade ile canlı bakteri incelemek için merkezi; P kültürlemek için, bu nedenle, yöntem anaerobik ortamda gingivalis verilmiştir. Aynı zamanda, iki basit düşük maliyetli protokoller P. yeteneğini değerlendirmek için gösterilmektedir gingivalis, insan göbek damarı endotel hücreleri (HUVECler) tarafından içselleştirilebilir için. Birinci protokol popüler antibiyotik koruma deneyi dayanmaktadır. Deney basittir, ancak anaerobik mikroorganizmalar kullanılarak hususlar verilmiştir. İkinci protokol etkileşim görselleştirmek için bir floresan tarama mikroskobu kullanılmasını gerektirir ve P. içsel gingivalis. Her deney sınırlamaları ve anaerobik bakteri invazivliğini eğitimi için araştırmacı bir taslağını sunmak üzere ele alınacak avantajlara sahiptir. Geçerli el yazması P çalışmaları olsa da gingivalis ve HUVECler, bu protokoller ve diğer pek çok anaerobik bakteriler için kullanılabilirEv sahibi hücre tiplerine olarak gösterilmiştir.

<table><tbody><tr><td>Vinyl Anaerobic Chamber-Type B</td><td>Coy Laboratory Products</td><td></td><td>Model 2000 incubator&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>TSA II Trypticase Soy Agar with 5% Sheep Blood</td><td>BBL</td><td>221261</td><td></td></tr><tr><td>Human Umbilical Vein Endothelial Cells 10-donor Pool</td><td>LifeLine Technology</td><td>FC-0044</td><td></td></tr><tr><td>VascuLife VEGF Medium Complete Kit</td><td>LifeLine Technology</td><td>LL-0003</td><td></td></tr><tr><td>TrypKit</td><td>LifeLine</td><td>LL-0013</td><td></td></tr><tr><td>Saponin</td><td>Riedel-de Haen</td><td>16109</td><td></td></tr><tr><td>Gentamicin Sulfate Salt</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>G-1264</td><td></td></tr><tr><td>Metronidazole</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>M-3761</td><td></td></tr><tr><td>BCECF-AM</td><td>LifeTechnologies</td><td>B1150</td><td></td></tr><tr><td>TRITC Phalloidin&amp;nbsp;</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P1951</td><td></td></tr><tr><td>18 mm Circular Coverslips</td><td>Electron Microscopy Sciences</td><td>72222-01</td><td></td></tr><tr><td>VectaShield Mounting Medium with DAPI</td><td>Vector Laboratories</td><td>H-1200</td><td></td></tr></tbody></table>

porphyromonas gingivalis as a model organism for assessing interaction of anaerobic bacteria with host cells

Anaerobik bakteriler çok böyle gut, ağız ve vajina gibi birçok insan nişler aerop çoğunluktadır. Ayrıca, anaerobik enfeksiyonlar sık ​​ve sık sık yerli kökenlidir. İnsan hücreleri istila bazı anaerobik patojenlerin yeteneğini onlara doğal bağışıklığı kaçmak için de konakçı hücre davranışını modüle edilmesi için bir tedbir alınması verir. Ancak, anaerobik bakteriler zorluklar oluşturabilecek olayların deneysel soruşturma sırasında canlı sağlanması olduğunu. Porphyromonas gingivalis, bir Gram-negatif anaerob, ökaryot fagositik olmayan hücrelere çeşitli işgal yeteneğine sahiptir. Bu makale başarıyla kültür ve P. yeteneğini değerlendirmek için nasıl özetliyor gingivalis, insan göbek damarı endotel hücreleri (HUVECler) işgal etmek. İki protokolleri geliştirilmiştir: Bir başarı istila ve ev sahibi içinde hayatta ve diğer konakçı hücreleri ile etkileşim bakteri görselleştirmek için bakteriler ölçmek için kullanılır. Bu teknikler, bir ANAE kullanımını zorunlurobic P. tedarik bölmesi Optimal büyüme için bir anaerobik ortam ile gingivalis. Birinci protokol büyük ölçüde bakterilerin konakçı hücrelerin istilası incelemek için kullanılır antibiyotik koruma deneyi, dayanmaktadır. Bununla birlikte, antibiyotik koruma deneyi sınırlıdır; Antibiyotik tedavisi ve konak hücre lizis aşağıdaki kültürlenebilen sadece hücre içi bakteriler ölçülür. Canlı ve ölü konakçı hücreler ile etkileşen tüm bakteri değerlendirmek için, konukçu-patojen etkileşimini incelemek için flüoresan mikroskopi kullanan bir protokol geliştirilmiştir. Bakteriler flüoresan olarak, 2 &#39;ile 7&#39;-bis- (2-karboksietil) olarak etiketlenmiştir -5- (and-6) -carboxyfluorescein asetoksimetil ester (BCECF-AM) ve anaerobik koşullar altında ökaryotik hücrelerin enfeksiyonu için kullanılır. % 0.2 Triton X-100 ile formaldehit ve geçirgenliği ile tespit eden konakçı hücreler, sırasıyla, hücre sito-iskeletini ve çekirdeği etiketlemek için TRITC falloidinle ve DAPI ile etiketlenmiştir. Çoklu imaFarklı odak noktaları (Z-yığın) alınan ges bakterilerin zamansal-mekansal görselleştirme için elde edilir. Bu çalışmada kullanılan yöntemleri, herhangi bir ekilebilir anaerob herhangi bir ökaryotik hücre tipine uygulanabilir.

Yukarıda özetlenen Protokoller P. arasındaki konak-patojen etkileşimi inceleyerek kullanılmıştır gingivalis ve endotel hücreleri. P. gingivalis W83 ve bir P. PG0228 bir silme taşıyan gingivalis V3150 çalışmada kullanılmıştır. PG0228 sonuçta P. etkileşimini etkileyebilir RNA ve protein seviyelerini değiştirebilir bir protein kodladığı tahmin edilmiştir Ev sahibi hücreleri ile gingivalis. P. PG0228 etkisini araştırmak ...

Watch this Scientific Journal Video about Porphyromonas gingivalis as a Model Organism for Assessing Interaction of Anaerobic Bacteria with Host Cells at JoVE.com

Porphyromonas gingivalis as a Model Organism for Assessing Interaction of Anaerobic Bacteria with Host Cells

This article presents two protocols: one to measure anaerobic bacteria that can successfully invade and survive within the host, and the other to visualize anaerobic bacteria interacting with host cells. This study can be applied to any cultivable anaerobe and any eukaryotic cell type.

Ana Hücreleri ile Anaerobik Bakteriler Etkileşim değerlendirilmesi için bir model organizma olarak Porphyromonas gingivalis

Anaerobic bacteria far outnumber aerobes in many human niches such as the gut, mouth, and vagina. Furthermore, anaerobic infections are common and ...

porphyromonas-gingivalis-as-model-organism-for-assessing-interaction

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

Porphyromonas gingivalis as a Model Organism for Assessing Interaction of Anaerobic Bacteria with Host Cells

26.2K Görüntüleme.  Virginia Commonwealth University. This article presents two protocols: one to measure anaerobic bacteria that can successfully invade and survive within the host, and the other to visualize anaerobic bacteria interacting with host cells. This study can be applied to any cultivable anaerobe and any eukaryotic cell type. 

Video: Porphyromonas gingivalis as a Model Organism for Assessing Interaction of Anaerobic Bacteria with Host Cells

Assessing the Viability of a Synthetic Bacterial Consortium on the In Vitro Gut Host-microbe Interface

The interplay between host and microbiota has been long recognized and extensively described. The mouth is similar to other sections of the gastrointestinal tract, as resident microbiota occurs and prevents colonisation by exogenous bacteria. Indeed, more than 600 species of bacteria are found in the oral cavity, and a single individual may carry around 100 different at any time. Oral bacteria possess the ability to adhere to the various niches in the oral ecosystem, thus becoming integrated within the resident microbial communities, and favouring growth and survival. However, the flow of bacteria into the gut during swallowing has been proposed to disturb the balance of the gut microbiota. In fact, oral administration of P. gingivalis shifted bacterial composition in the ileal microflora. We used a synthetic community as a simplified representation of the natural oral ecosystem, to elucidate the survival and viability of oral bacteria subjected to simulated gastrointestinal transit conditions. Fourteen species were selected, subjected to in vitro salivary, gastric, and intestinal digestion processes, and presented to a multicompartment cell model containing Caco-2 and HT29-MTX cells to simulate the gut mucosal epithelium. This model served to unravel the impact of swallowed bacteria on cells involved in the enterohepatic circulation. Using synthetic communities allows for controllability and reproducibility. Thus, this methodology can be adapted to assess pathogen viability and subsequent inflammation-associated changes, colonization capacity of probiotic mixtures, and ultimately, potential bacterial impact on the presystemic circulation.

Assessing the Viability of a Synthetic Bacterial Consortium on the In Vitro Gut Host-microbe Interface

Gut host-microbe interactions were assessed using a novel approach combining a synthetic oral community, in vitro gastrointestinal digestion, and a model of the small intestine epithelium. We present a method that can be adapted to evaluate cell invasion of pathogens and multi-species biofilms, or even to test probiotic formulations&#39; survivability.

Sentetik bir bakteriyel konsorsiyum Vitro Gut ana bilgisayar-mikrop arabirimde canlılık değerlendirilmesi

The interplay between host and microbiota has been long recognized and extensively described. The mouth is similar to other sections of the ...

Biyokimya

A Mouse Model for Pathogen-induced Chronic Inflammation at Local and Systemic Sites

Chronic inflammation is a major driver of pathological tissue damage and a unifying characteristic of many chronic diseases in humans including neoplastic, autoimmune, and chronic inflammatory diseases. Emerging evidence implicates pathogen-induced chronic inflammation in the development and progression of chronic diseases with a wide variety of clinical manifestations. Due to the complex and multifactorial etiology of chronic disease, designing experiments for proof of causality and the establishment of mechanistic links is nearly impossible in humans. An advantage of using animal models is that both genetic and environmental factors that may influence the course of a particular disease can be controlled. Thus, designing relevant animal models of infection represents a key step in identifying host and pathogen specific mechanisms that contribute to chronic inflammation.
Here we describe a mouse model of pathogen-induced chronic inflammation at local and systemic sites following infection with the oral pathogen Porphyromonas gingivalis, a bacterium closely associated with human periodontal disease. Oral infection of specific-pathogen free mice induces a local inflammatory response resulting in destruction of tooth supporting alveolar bone, a hallmark of periodontal disease. In an established mouse model of atherosclerosis, infection with P. gingivalis accelerates inflammatory plaque deposition within the aortic sinus and innominate artery, accompanied by activation of the vascular endothelium, an increased immune cell infiltrate, and elevated expression of inflammatory mediators within lesions. We detail methodologies for the assessment of inflammation at local and systemic sites. The use of transgenic mice and defined bacterial mutants makes this model particularly suitable for identifying both host and microbial factors involved in the initiation, progression, and outcome of disease. Additionally, the model can be used to screen for novel therapeutic strategies, including vaccination and pharmacological intervention.

Animal models have proven to be invaluable tools in defining host and pathogen specific mechanisms that contribute to the development of chronic inflammation. Here we describe a mouse model of oral infection with the human pathogen Porphyromonas gingivalis and detail methodologies to assess the progression of inflammation at local and systemic sites.

Lokal ve sistemik Yer de patojen kaynaklı kronik enflamasyon Fare Modeli

Chronic inflammation is a major driver of pathological tissue damage and a unifying characteristic of many chronic diseases in humans including ...

İmmünoloji ve Enfeksiyon

Robust Ligature-Induced Model of Murine Periodontitis for the Evaluation of Oral Neutrophils

The main advantages of studying the pathophysiology of periodontal disease utilizing murine models are the reduced cost of animals, array of genetically modified strains, the vast number of analyses that can be performed on harvested soft and hard tissues. However, many of these systems are subject to procedural criticisms. As an alternative, the ligature-induced model of periodontal disease, driven by the localized development and retention of a dysbiotic oral microbiome, can be employed, which is rapidly induced and relatively reliable. Unfortunately, the variants of ligature-induced murine periodontitis protocol are isolated to focal regions of the periodontium and subject to premature avulsion of the installed ligature. This minimizes the amount of tissue available for subsequent analyses and increases the number of animals required for study. This protocol describes the precise manipulations required to place extended molar ligatures with improved retention and usage of a novel rinse technique to recover oral neutrophils in mice with an alternative approach that mitigates the aforementioned technical challenges.

This article presents a protocol for establishing a ligature-induced model of murine periodontitis involving multiple maxillary molars, resulting in larger areas of the involved gingival tissue and bone for subsequent analysis as well as reduced animal usage. A technique to assess oral neutrophils in a manner analogous to human subjects is also described.

Oral Nötrofillerin Değerlendirilmesinde Mürin Periodontitin Sağlam Ligatür Kaynaklı Modeli

The main advantages of studying the pathophysiology of periodontal disease utilizing murine models are the reduced cost of animals, array of genetically ...

Models of Murine Vaginal Colonization by Anaerobically Grown Bacteria

The mammalian vagina can be colonized by many bacterial taxa. The human vaginal microbiome is often dominated by Lactobacillus species, but one-in-four women experience bacterial vaginosis, in which a low level of lactobacilli is accompanied by an overgrowth of diverse anaerobic bacteria. This condition has been associated with many health complications, including risks to reproductive and sexual health. While there is growing evidence showing the complex nature of microbial interactions in human vaginal health, the individual roles of these different anaerobic bacteria are not fully understood. This is complicated by the lack of adequate models to study anaerobically grown vaginal bacteria. Mouse models allow us to investigate the biology and virulence of these organisms in vivo. Other mouse models of vaginal bacterial inoculation have previously been described. Here, we describe methods for the inoculation of anaerobically grown bacteria and their viable recovery in conventionally raised C57Bl/6 mice. A new, less stressful procedural method for vaginal inoculation and washing is also described. Inoculation and viable recovery of Gardnerella are outlined in detail, and strategies for additional anaerobes such as Prevotella bivia and Fusobacterium nucleatum are discussed.

The protocol presents a mouse model of vaginal colonization with anaerobically cultured human vaginal bacteria. We focus on Gardnerella vaginalis,&#160;while including suggestions for Prevotella bivia and Fusobacterium nucleatum. This protocol can also be used as a guide for vaginal inoculations and viable recovery of other anaerobically grown bacteria.

Yapay Olarak Yetiştirilen Bakteriler Tarafından Murin Vajinal Kolonizasyon Modelleri

The mammalian vagina can be colonized by many bacterial taxa. The human vaginal microbiome is often dominated by Lactobacillus species, but one-in-four ...

Organotypic Tissue Model Systems for Investigating Host-Pathogen Interactions In Vitro

Recapitulating the host-pathogen interface at the epithelial or mucosal barrier in vitro remains a challenging prospect for infection biologists. While in-house grown 2D epithelial monolayers lack true representation of the in vivo situation, commercially available tissue models are often overlooked due to their cost and practicality. However, with careful planning, such models provide reproducible platforms for a vast array of different applications. Here, we report the use of epithelial models that can be utilized for a wide variety of experimental purposes to investigate host-pathogen interactions in various ecological niches, such as the oral cavity, skin, and vaginal mucosa. From simple planktonic cells to complex biofilm co-culture, epithelial models are used to assess microbial adherence and invasion, and to evaluate the host response at a transcriptional and/or protein level, with scope for more detailed profiling using different omics approaches. Furthermore, these biological systems can be used as more accurate test beds for evaluating conventional and novel antimicrobial activity in a complex host-pathogen microenvironment in vitro. The protocols described herein document how models are handled upon arrival and prepared in the laboratory for co-culture stimulation with biofilm communities. The methods detail how experimental outputs are achieved from the model systems, including the processing of tissue, the co-culture setup, and data generation. These experiments include host gene expression through single- and multiplex qPCR analyses and inflammatory protein detection using ELISAs. In conclusion, epithelial models provide useful in vitro systems for preclinical investigatory studies into simple or complex host-pathogen interactions.

The present protocol outlines the application of organotypic tissue models for investigating host-pathogen interactions in vitro. Specifically, the model system described uses a multi-layered oral epithelium exposed to microorganisms associated with biofilms (dental plaque) within the context of oral health versus disease.

Konak-Patojen Etkileşimlerinin İn Vitro Araştırılması için Organotipik Doku Model Sistemleri

Recapitulating the host-pathogen interface at the epithelial or mucosal barrier in vitro remains a challenging prospect for infection biologists. While ...

Establishing Stable Binary Cultures of Symbiotic Saccharibacteria from the Oral Cavity

Many bacterial species cannot be cultured in the laboratory using standard methods, posing a significant barrier to studying the majority of microbial diversity on earth. Novel approaches are required to culture these uncultured bacteria so that investigators can effectively study their physiology and lifestyle using the powerful tools available in the laboratory. The Candidate Phyla Radiation (CPR) is one of the largest groups of uncultivated bacteria, comprising ~15% of the living diversity on earth. The first isolate of this group was a member of the Saccharibacteria phylum, 'Nanosynbacter lyticus' strain TM7x. TM7x is an unusually small bacterium that lives as a symbiont in direct contact with a bacterial host, Schaalia odontolytica, strain XH001. Taking advantage of the unusually small cell size and its lifestyle as a symbiotic organism, we developed a protocol to rapidly culture Saccharibacteria from dental plaque. This protocol will show how to filter a suspension of dental plaque through a 0.2 &#181;m filter, then concentrate the collected Saccharibacteria cells and infect a culture of host organisms. The resulting coculture can be passaged as any normal bacterial culture and infection is confirmed by PCR. The resulting binary culture can be maintained in the laboratory and used for future experiments. While contamination is a possibility, the binary culture can be purified by either further filtering and reinfection of host, or by plating the binary culture and screening for infected colonies. We hope this protocol can be expanded to other sample types and environments, leading to the cultivation of many more species in the CPR.

We demonstrate a method for isolating difficult-to-grow members of the novel bacterial phylum, Saccharibacteria, by filtering dental plaque and co-culturing with host bacteria.

Ağız Boşluğundan Simbiyotik Sakkarakterinin Kararlı İkili Kültürlerinin Kurulması

Many bacterial species cannot be cultured in the laboratory using standard methods, posing a significant barrier to studying the majority of microbial ...

Biyoloji

Measuring the Migration and Biofilm Formation of Various Bacteria

As microbes that thrive in the host body primarily have adaptive abilities that facilitate their survival, methods for classifying and identifying their nature would be beneficial in facilitating their characterization. Currently, most studies focus only on one specific characterization method; however, the isolation and identification of microorganisms from the host is a continuous process and usually requires several combinatorial characterization methods. Herein, we describe methods of identifying the microbial biofilm-forming ability, the microbial respiration state, and their chemotaxis behavior. The methods are used to identify five microbes, three of which were isolated from the bone tissue of Sprague-Dawley (SD) rats (Corynebacterium stationis, Staphylococcus cohnii subsp. urealyticus, and Enterococcus faecalis) and two from the American Type Culture Collection (ATCC)-Staphylococcus aureus ATCC 25923&#160;and Enterococcus faecalis V583. The microbes isolated from the SD rat bone tissue include the gram-positive microbes. These microbes have adapted to thrive under stressful and nutrient-limiting environments within the bone matrix. This article aims to provide the readers with the specific know-how of determining the nature and behavior of the isolated microbes within a laboratory setting.

<meta charset="utf8"></head><body>Çeşitli Bakterilerin Migrasyonunun ve Biyofilm Oluşumunun Ölçülmesi

Here, we present a practical method for the isolation and identification of microorganisms within the host. In this way, the physicochemical properties of microorganisms and possible ways of living in the host are clearly described.

Çeşitli Bakterilerin Migrasyonunun ve Biyofilm Oluşumunun Ölçülmesi

As microbes that thrive in the host body primarily have adaptive abilities that facilitate their survival, methods for classifying and identifying their ...

Anti-Infective Efficacy in Cystic Fibrosis with Aggregate Biofilm Models

Cystic Fibrosis Aggregate Biofilm Model to Study Infection-relevant Gene Expression

Standard pre-clinical testing methods for novel antimicrobial therapeutics used to treat chronic lung infections in people with cystic fibrosis do not reflect the environmental conditions of the hostile lung niche. Current reductionist testing conditions can lead to the progression of compounds along a preclinical pipeline without evidence of their activity under cystic fibrosis lung niche-appropriate conditions. Several approaches used to study traditional antimicrobials may not be suitable for antibiotic alternatives, including anti-virulence therapeutics like anti-quorum sensing agents and siderophore inhibitors. This protocol documents an aggregate biofilm model of Pseudomonas aeruginosa to compare resistance and infection-relevant gene expression in single-species and multi-species cultures (Staphylococcus aureus and Candida albicans), examining colony-forming unit (CFU) reductions and changes in gene expression, using algD as an exemplar. The model was optimized for small, static volumes of bacterial cultures to allow the study of novel compounds in the discovery phase of the drug development pipeline, where compound quantities may be limited. Single-species P. aeruginosa biofilms were formed in Synthetic Cystic Fibrosis Medium 2 (SCFM2) for 24 h before treatment with meropenem at different concentrations (1, 16, and 256 &#181;g/mL) for a further 24 h. Polymicrobial biofilms were established by growing Staphylococcus aureus and Candida albicans together in SCFM2, then inoculating with P. aeruginosa for an additional 24 h and treating with meropenem. The lack of a direct connection between compound efficacy measures in pre-clinical testing and clinical trial results has cast doubt on the applicability of current laboratory screening tools. This model allows us to understand the impact of relevant factors on P. aeruginosa gene expression, including genes contributing to resistance and virulence, thereby bridging this gap.

This study outlines a framework for developing an aggregate polymicrobial biofilm model and optimizing an RNA extraction protocol to assess Pseudomonas aeruginosa gene expression reflective of the cystic fibrosis lung environment. Applications include evaluating antimicrobial effects and studying antibiotic alternatives under conditions relevant to cystic fibrosis.

Standard pre-clinical testing methods for novel antimicrobial therapeutics used to treat chronic lung infections in people with cystic fibrosis do not ...

Visualization of Internalized Anaerobic Bacteria within Host Endothelial Cells

Source: Wunsch, C. M. et. al., <a href="https://app.jove.com/v/53408">Porphyromonas gingivalis as a Model Organism for Assessing Interaction of Anaerobic Bacteria with Host Cells.</a> J. Vis. Exp. (2015)
In this video, we demonstrate a procedure to visualize internalized Porphyromonas gingivalis, an anaerobic pathogenic bacterium, within human endothelial cells using confocal microscopy. The bacteria are stained with a fluorescent dye while the host endothelial cell actin cytoskeleton is labeled with a different fluorescent dye. The internalized Porphyromonas gingivalis inside endothelial cells are visualized using confocal microscopy.

Ana Hücreleri ile Anaerobik Bakteriler Etkileşim değerlendirilmesi için bir model organizma olarak Porphyromonas gingivalis

Özet

Daha Fazla Video Keşfet

Bu videodaki bölümler

Sentetik bir bakteriyel konsorsiyum Vitro Gut ana bilgisayar-mikrop arabirimde canlılık değerlendirilmesi

Lokal ve sistemik Yer de patojen kaynaklı kronik enflamasyon Fare Modeli

Oral Nötrofillerin Değerlendirilmesinde Mürin Periodontitin Sağlam Ligatür Kaynaklı Modeli

Yapay Olarak Yetiştirilen Bakteriler Tarafından Murin Vajinal Kolonizasyon Modelleri

Konak-Patojen Etkileşimlerinin İn Vitro Araştırılması için Organotipik Doku Model Sistemleri

Ağız Boşluğundan Simbiyotik Sakkarakterinin Kararlı İkili Kültürlerinin Kurulması

Çeşitli Bakterilerin Migrasyonunun ve Biyofilm Oluşumunun Ölçülmesi

Çeşitli Bakterilerin Migrasyonunun ve Biyofilm Oluşumunun Ölçülmesi

Cystic Fibrosis Aggregate Biofilm Model to Study Infection-relevant Gene Expression

Konak Endotel Hücreleri İçinde İçselleştirilmiş Anaerobik Bakterilerin Görüntülenmesi