Hainan Eyaleti Doğa Bilimleri Vakfı'ndan (Hibe no. 323QN262), Çin Ulusal Doğa Bilimleri Vakfı'ndan (Hibe no. 31701843 ve 32172483), Jiangsu Tarım Bilimi ve Teknoloji İnovasyon Fonu'ndan (Hibe No. CX (22) 3012 ve CX (21) 3008), Jiangsu Eyaleti "Shuangchuang Doktor" Vakfı (Hibe No. 202030472) ve Nanjing Ziraat Üniversitesi başlangıç fonu (Hibe No. 804018).

1. Böcek yetiştirme
<ol><li> Corcyra cephalonica'yı mısır unu üzerinde 26 ± 1°C sıcaklıkta ve %40 ± %10 bağıl nemde besleyin.</li>
	<li>Breed T. dendrolimi suşu, iç mekanlarda Corcyra cephalonica'nın yumurtalarını konakçı olarak kullanarak Jilin böceğinden elde edilir. Yaban arısı yetişkinlerini besleyin Drosophila tüplerinde 26 ± 1 °C sıcaklıkta,% 70 ±% 10 bağıl nem, açık (L): 14 saat: 10 saat karanlık (D) döneminde% 10 sakaroz suyu.</li>
</ol>2. Polietilen plastik film yumurta kartlarının hazırlanması
<ol><li>16 cm uzunluğunda, 12 cm genişliğinde ve 20 μm kalınlığında bir polietilen plastik film alın. 96 delikli standart PCR plaka düzenine göre bir cam taşlama çubuğu kullanarak 2-3 mm çapında ve yaklaşık 3 mm yüksekliğinde 30 yarım daire biçimli çıkıntıyı bastırın. NOT: Bir cam taşlama çubuğu kullanarak 30 yarım daire biçimli çıkıntıyı presleme işlemi, basınca dikkat edilerek yapılmalıdır çünkü çok sert bir pres plastiği delecek ve çıkarılan zehirsiz öğütme çubuğunu kirletecektir.</li>
	<li>Preslenmiş polietilen plastik filmi her iki tarafını 1 saat boyunca ultraviyole (UV) ışığa maruz bırakarak dezenfekte edin.</li>
	<li>Yarım daire biçimli yüzeye az miktarda% 10 polivinil alkol ekleyin.</li>
</ol>3. Trichogramma dendrolimi parazitizm
<ol><li>CO2 anestezisinden sonra, T. dendrolimi dişi yaban arılarını bir toplama kutusuna koyun ve yaban arısı sayısı ~ 3000 idi.</li>
	<li>Film yumurta kartının dışbükey tarafını toplama kutusuna doğru yerleştirin ve kenarlarını bir lastik bantla sabitleyin.</li>
	<li>Her yarım daire biçimli çıkıntıya 4 μL amino asit çözeltisi (6 g/L lösin, 4 g/L fenilalanin, 4.25 g/L histidin) ekleyin. 16 cm uzunluğunda ve 12 cm genişliğinde düz bir polietilen plastik film ile örtün. Toplama kutusunu iki plastik tabakayla sıkıca kapatmak için bir lastik bant kullanın.</li>
	<li>T. dendrolimi yaban arılarının 4-8 saat boyunca serbestçe parazitlenmesine izin verin ve ıslatılmış pamuktan% 10 sakaroz suyu sağlayın.</li>
</ol>4. T. dendrolimi zehirinin toplanması
<ol><li>Yapay yumurta kartının iç çıkıntısından parazitlenmiş amino asit çözeltisini elde edin ve 1.5 mL'lik tüplerin kapağına aktarın.</li>
	<li>Tüp kapağını 25 mm çapında 10 μm naylon ağ ile kapatın, naylon ağı ve santrifüj tüpünü sıkıca sabitleyin. Santrifüj tüpünü 10 saniye boyunca bir mini santrifüj (1360 x g) kullanarak kısa santrifüjleme için dik olarak yerleştirin ve filtrelenmiş çözeltiyi (~100 μL T. dendrolimi zehiri) toplayın.</li>
	<li>Toplanan T. dendrolimi zehirinin konsantrasyonunu bir Bikinkoninik asit (BCA) tahlil kiti kullanarak ölçün (Malzeme Tablosu).</li>
	<li>Daha fazla analiz için zehri -80 °C'de saklayın.</li>
</ol>5. SDS-PAGE analizleri
<ol><li>10 μL 4x sodyum dodesil sülfat-poliakrilamid jel elektroforezi (SDS-PAGE) numune yükleme tamponuna (Malzeme Tablosu) 30 μL T. dendrolimi zehiri ekleyin ve 95 °C'de 10 dakika ısıtın.</li>
	<li>SDS-PAGE jeli 120 dakika boyunca 130 V'ta çalıştırın.</li>
	<li>Protein boyama aparatını (Malzeme Tablosu) kullanarak SDS-PAGE jelini boyayın ve rengini giderin.</li>
</ol>

Trichogramma dendrolimi ve Venom Ekstraksiyonu ile Yapay Konak Parazitizasyonu

<ol>
	<li>Pennacchio, F., Strand, M. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Evolution+of+developmental+strategies+in+parasitic+hymenoptera.">Evolution of developmental strategies in parasitic hymenoptera.</a> Annual Review of Entomology. 51, 233-258 (2006).</li><li>Yan, Z. C., Ye, X. H., Wang, B. B., Fang, Q., Ye, G. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Research+advances+on+composition,+function+and+evolution+of+venom+proteins+in+parasitoid+wasps.">Research advances on composition, function and evolution of venom proteins in parasitoid wasps.</a> Chinese Journal of Biological Control. 33 (1), 1-10 (2017).</li><li>Asgari, S., Rivers, D. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Venom+proteins+from+endoparasitoid+wasps+and+their+role+in+host-parasite+interactions.">Venom proteins from endoparasitoid wasps and their role in host-parasite interactions.</a> Annual Review of Entomology. 56, 313-335 (2011).</li><li>Moreau, S. J. M., Guillot, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Advances+and+prospects+on+biosynthesis,+structures,+and+functions+of+venom+proteins+from+parasitic+wasps.">Advances and prospects on biosynthesis, structures, and functions of venom proteins from parasitic wasps.</a> Insect Biochemistry and Molecular Biology. 35 (11), 1209-1223 (2005).</li><li>Yan, Z. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+venom+serpin+splicing+isoform+of+the+endoparasitoid+wasp+Pteromalus+puparum+suppresses+host+prophenoloxidase+cascade+by+forming+complexes+with+host+hemolymph+proteinases.">A venom serpin splicing isoform of the endoparasitoid wasp Pteromalus puparum suppresses host prophenoloxidase cascade by forming complexes with host hemolymph proteinases.</a> Journal Biological Chemistry. 292 (3), 1038-1051 (2017).</li><li>Woelke, J. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Description+and+biology+of+two+new+egg+parasitoid+species+(Hymenoptera:+Trichogrammatidae)+reared+from+eggs+of+Heliconiini+butterflies+(Lepidoptera:+Nymphalidae:+Heliconiinae)+in+Panama.">Description and biology of two new egg parasitoid species (Hymenoptera: Trichogrammatidae) reared from eggs of Heliconiini butterflies (Lepidoptera: Nymphalidae: Heliconiinae) in Panama.</a> Journal of Natural History. 53 (11-12), 639-657 (2019).</li><li>Zang, L. S., Wang, S., Zhang, F., Desneux, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Biological+control+with+Trichogramma+in+China:+History,+present+status,+and+perspectives.">Biological control with Trichogramma in China: History, present status, and perspectives.</a> Annual Review of Entomology. 66, 463-484 (2021).</li><li>Nettles, W. C. J., Morrison, R. K., Xie, Z. N., Ball, D., Shenkir, C. A., Vinson, S. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Synergistic+action+of+potassium+chloride+and+magnesium+sulfate+on+parasitoid+wasp+oviposition.">Synergistic action of potassium chloride and magnesium sulfate on parasitoid wasp oviposition.</a> Science. 218, 4568 (1982).</li><li>Tilden, R. L., Ferkovich, S. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Kairomonal+stimulation+of+oviposition+into+an+artificial+substrate+by+the+endoparasitoid+Microplitis+croceipes+(Hymenoptera)Braconidae).">Kairomonal stimulation of oviposition into an artificial substrate by the endoparasitoid Microplitis croceipes (Hymenoptera)Braconidae).</a> Annals of the Entomological Society of America. 81 (1), 152-156 (1988).</li><li>Xie, Z. N., Li, L., Xie, Y. Q. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=In+vitro+culture+of+Habrobracon+hebetor.">In vitro culture of Habrobracon hebetor.</a> Chinese Journal of Biological Control. 5 (2), 49-51 (1989).</li><li>Han, S. T., Liu, W. H., Li, L. Y., Chen, Q. X., Zeng, B. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Breeding+Trichogramma+ostriniae+with+artificial+eggs.">Breeding Trichogramma ostriniae with artificial eggs.</a> Journal of Environmental Entomology. 21 (1), 9-12 (1999).</li><li>Li, L. Y., Chen, Q. X., Liu, W. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Oviposition+behavior+of+twelve+species+of+Trichogramma+and+its+influence+on+the+efficiency+of+rearing+them+in+vitro.">Oviposition behavior of twelve species of Trichogramma and its influence on the efficiency of rearing them in vitro.</a> Journal of Environmental Entomology. 11 (1), 31-35 (1989).</li><li>Xing, J. Q., Li, L. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Rearing+of+an+egg+parasite+Anastatus+japonicus+Ashmead+in+vitro.">Rearing of an egg parasite Anastatus japonicus Ashmead in vitro.</a> Acta Entomologica Sinica. 33 (2), 166-173 (1990).</li><li>Moreau, S. J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=&#34;It+stings+a+bit+but+it+cleans+well&#34;:+Venoms+of+Hymenoptera+and+their+antimicrobial+potential.">&#34;It stings a bit but it cleans well&#34;: Venoms of Hymenoptera and their antimicrobial potential.</a> Journal of Insect Physiology. 59 (2), 186-204 (2013).</li><li>Moreau, S. J. M., Asgari, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Venom+proteins+from+parasitoid+wasps+and+their+biological+function.">Venom proteins from parasitoid wasps and their biological function.</a> Toxins. 7 (7), 2385-2412 (2015).</li></ol>

Yazarın ifşa edecek hiçbir şeyi yoktur ve rekabet eden mali çıkarları yoktur.

Burada, yapay konakçılar kullanarak T. dendrolimi'den zehir çıkarmak için bir yöntem sunuyoruz. Zehir toplama deneyinde kilit noktalar aşağıdaki gibidir. (1) Hazırlık sırasında, T. dendrolimi uygun bir CO2 konsantrasyonu ile hızlı bir şekilde uyuşturulmalıdır. CO2 konsantrasyonu çok düşükse, Trichogramma'yı hızlı bir şekilde uyuşturmak yetersiz olacaktır. Tersine, konsantrasyon çok yüksekse, Trichogramma ölebilir ve yapay konağı p...

Parazitoid yaban arıları, biyolojik mücadele için önemli kaynaklar olan parazitik hymenopteran böceklerdir1. 600.000'den fazla tahmini türe sahip çok çeşitli parazitoid yaban arıları vardır2. Parazitoid yaban arılarının çeşitliliği,, koni salyangozları, örümcekler, akrepler ve arılar gibi diğer zehirli eklembacaklılarınkinden çok daha fazladır. Zehir, parazitoid yaban arılarında önemli bir parazit faktörüdür. Başarılı bir parazitizm için, konakçıya zehir enjekte edilir ve konakçının davranışını, bağışıklığını, gelişimini ve metabolizmasını modüle eder3. Dahası, parazitoid yaban arılarının zehiri, moleküler yapılarında, hedeflerinde ve işlevlerinde dikkate değer bir çeşitlilik gösterir ve konakçılarıyla karmaşık birlikte evrimi yansıtır. Bu nedenle, parazitoid zehir, böcek öldürücü veya tıbbi amaçlar için değerli ve yeterince takdir edilmeyen bir aktif molekül kaynağıdır4. Yılan, koni salyangoz, örümcek, akrep ve arı zehirinin aksine, parazitoid yaban arısı zehiri doğrudan stimülasyon veya elektriksel stimülasyon ile toplanamaz5. Parazitoid yaban arısı zehirinin çıkarılması için mevcut yöntem, zehir rezervuarını incelemektir. Bununla birlikte, parazitoid yaban arıları genellikle küçüktür ve parazitoid yaban arılarının diseksiyonu yüksek teknik beceriler gerektirir. Bu nedenle, parazitoid yaban arılarının zehirini verimli ve rahat bir şekilde toplamanın bir yolunu bulabilirsek, parazitoid yaban arılarının zehirini araştırmak çok yardımcı olacaktır.
Trichogramma (Hymenoptera: Trichogrammatidae), küçük (~0.5 mm uzunluğunda) parazitoid yaban arılarının bir cinsidir6. Bu yaban arıları, özellikle hem tarımda hem de ormanlarda çeşitli lepidopteran zararlılarının yumurtalarını hedef alan en yaygın kullanılan biyokontrol ajanları arasındadır. Örneğin, Çin'de en yaygın kullanılan Trichogramma türlerinden biri olan T. dendrolimi, Dendrolimus superans, Ostrinia furnacalis ve Chilo suppressalis gibi çeşitli tarım ve ormancılık zararlılarını kontrol etmek için yaygın olarak uygulanmıştır. Önceki çalışmalar, Trichogramma yaban arılarının yumurtalarını yapay konakçılara enjekte edebildiğini gösterdi7. Balmumu8, agar9, Parafilm10 ve plastik film11 gibi malzemeler kullanılarak yapay konakçılar oluşturulabilir. Trichogramma için yeterli yumurtlamayı indükleyen yapay konakçılardaki çözelti, amino asitler veya inorganik tuzlargibi basit olabilir 12. T. dendrolimi'nin yapay konakçıları parazitleştirebilme özelliğine dayanarak, bu çalışma yapay konakçılar kullanarak parazitoid yaban arılarından zehir çıkarmak için yeni bir yöntem sunmaktadır. Bu yaklaşım, mevcut ekstraksiyon tekniklerinde düşük verim, düşük saflık ve kontaminasyona yatkınlık eksikliklerini gidermeyi amaçlamaktadır. Bu yöntemi kullanarak, bilimsel araştırma ve biyoaktif moleküllerin böcek öldürücü veya tıbbi amaçlar için taranması ihtiyaçlarını karşılayan T. dendrolimi'den büyük miktarda yüksek saflıkta zehir ekstrakte edilebilir.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>10 &#956;m Nylon Net</td>
			<td>Millipore</td>
			<td>NY1002500</td>
			<td>For filtering the eggs</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>10% Polyvinyl alcohol</td>
			<td>Aladdin</td>
			<td>P139533</td>
			<td>For attractting&#160; T. dendrolimi&#160; to lay eggs</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>10% Sucrose water</td>
			<td>Sinopharm Chemical Reagent&#160;</td>
			<td>10021463</td>
			<td>Feed Trichogramma dendrolimi</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>4x LDS loading buffer</td>
			<td>Ace Hardware</td>
			<td>B23010301</td>
			<td>SDS-PAGE</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Collection box</td>
			<td>Deli</td>
			<td>8555</td>
			<td>Container for T. dendrolimi parasitism</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Future PAGE&#160; 4&#8211;12% (12 wells)</td>
			<td>Ace Hardware</td>
			<td>J70236502X</td>
			<td>SDS-PAGE</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>GenScript eStain L1 protein staining apparatus</td>
			<td>GenScript</td>
			<td>L00753</td>
			<td>SDS-PAGE</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Glass grinding rod&#160;&#160;</td>
			<td>Applygen</td>
			<td>tb6268</td>
			<td>Semicircular protrudations&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>L- Leucine</td>
			<td>Solarbio</td>
			<td>L0011</td>
			<td>Artificial host components</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>L-Histidine</td>
			<td>Aladdin</td>
			<td>A2219458</td>
			<td>Artificial host components</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>L-Phenylalanine</td>
			<td>Solarbio</td>
			<td>P0010</td>
			<td>Artificial host components</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Mini-Centrifuges</td>
			<td>Scilogex</td>
			<td>D1008</td>
			<td>Centrifuge</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>MOPS-SDS running buffer</td>
			<td>Ace Hardware</td>
			<td>B23021</td>
			<td>SDS-PAGE</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Omni-Easy Instant BCA protein assay kit</td>
			<td>Shanghai Yamay Biomedical Technology&#160;</td>
			<td>ZJ102</td>
			<td>For esimation of venom protein concentration</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PCR plate layout of 96 holes</td>
			<td>Thermo Fisher</td>
			<td>AB1400L</td>
			<td>Semicircular protrudations&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Polyethylene plastic film</td>
			<td>Suzhou Aopang Trading &#160;</td>
			<td>001c5427</td>
			<td>Artificial egg card</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Prestained color protein marker(10&#8211;180 kDa)</td>
			<td>YiFeiXue Biotech</td>
			<td>YWB007</td>
			<td>SDS-PAGE</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Rubber band</td>
			<td>Guangzhou qianrui biology science and technology</td>
			<td>009</td>
			<td>Tighten the plastic film and the collection box</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Silicone rubber septa mat, 96-well, round hole</td>
			<td>Sangon Biotech</td>
			<td>F504416-0001</td>
			<td>Semicircular protrudations&#160;</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

extracting venom from the parasitoid wasp trichogramma dendrolimi using an artificial host

Parazitoid yaban arıları, haşere biyokontrolü için paha biçilmez kaynaklar olarak hizmet eden çeşitli bir hymenopteran böcek grubudur. Başarılı parazitizm sağlamak için parazitoid yaban arıları, konakçılarının bağışıklığını bastırmak, konakçıların gelişimini, metabolizmasını ve hatta davranışlarını modüle etmek için konakçılarına zehir enjekte eder. 600.000'den fazla tahmini türle, parazitoid yaban arılarının çeşitliliği,, koni salyangozları ve örümcekler gibi diğer zehirli hayvanlarınkini geride bırakıyor. Parazitoid yaban arısı zehiri, haşere kontrolü ve tıpta potansiyel uygulamaları olan, yeterince keşfedilmemiş bir biyoaktif molekül kaynağıdır. Bununla birlikte, parazitoit zehrin toplanması, doğrudan veya elektriksel stimülasyonun kullanılamaması ve küçük boyutları nedeniyle diseksiyonun zorluğu nedeniyle zordur. Trichogramma , hem tarımda hem de ormanlarda lepidopteran zararlılarının biyolojik kontrolü için yaygın olarak kullanılan küçük (~0,5 mm) yumurta parazitoid yaban arısı cinsidir. Burada, yapay konakçılar kullanarak T. dendrolimi'den zehir çıkarmak için bir yöntem bildiriyoruz. Bu yapay konakçılar, polietilen film ve amino asit çözeltileri ile oluşturulur ve daha sonra parazitizm için Trichogramma yaban arıları ile aşılanır. Zehir daha sonra toplandı ve konsantre edildi. Bu yöntem, zehir rezervuarı diseksiyon protokollerinde yaygın bir sorun olan diseksiyonun neden olduğu diğer dokulardan kontaminasyonu önlerken, büyük miktarlarda Trichogramma zehirinin çıkarılmasını sağlar. Bu yenilikçi yaklaşım, Trichogramma zehirinin incelenmesini kolaylaştırarak yeni araştırmaların ve potansiyel uygulamaların önünü açıyor.

Parasitoid wasps are parasitic hymenopteran insects that are important resources for biological control1. There is a wide variety of parasitoid wasps, with over 600,000 estimated species2. The diversity of parasitoid wasps far exceeds that of other venomous arthropods, such as snakes, cone snails, spiders, scorpions, and bees. Venom is an important parasitic factor in parasitoid wasps. For successful parasitism, venom is injected into the host, modulating the host&#39;s behavior, immunity, development, and metabolism3. Moreover, the venom of parasitoid wasps displays remarkable diversity in its molecular structures, targets, and functions, reflecting complex coevolution with their hosts. Thus, parasitoid venom is a valuable and underappreciated resource of active molecules for insecticidal or medical purposes4. Unlike the venom of snakes, cone snails, spiders, scorpions, and bees, parasitoid wasp venom cannot be collected by direct stimulation or electrical stimulation5. The current method of extraction of parasitoid wasp venom is to dissect the venom reservoir. However, parasitoid wasps are often small, and dissection of parasitoid wasps requires high technical skills. Therefore, if we can find a way to collect the venom of parasitoid wasps efficiently and conveniently, it will be of great help to research the venom of parasitoid wasps.
Trichogramma (Hymenoptera: Trichogrammatidae) is a genus of tiny (~0.5 mm long) parasitoid wasps6. These wasps are among the most widely used biocontrol agents, particularly targeting eggs of various lepidopteran pests in both agriculture and forests. For example, T. dendrolimi, one of the most widely used Trichogramma species in China, has been extensively applied to control a variety of agricultural and forestry pests, such as Dendrolimus superans, Ostrinia furnacalis, and Chilo suppressalis. Previous studies showed that Trichogramma wasps could inject their eggs into artificial hosts7. Artificial hosts can be created using materials such as wax8, agar9, Parafilm10, and plastic film11. The solution in artificial hosts that induces sufficient oviposition for Trichogramma can be simple, such as amino acids or inorganic salts12. Based on the characteristic that T. dendrolimi can parasitize artificial hosts, this study provides a new method for extracting venom from parasitoid wasps using artificial hosts. This approach aims to address the shortcomings of low yield, low purity, and susceptibility to contamination in current extraction techniques. By using this method, a large amount of high-purity venom from T. dendrolimi can be extracted, which meets the needs of scientific research and screening of bioactive molecules for insecticidal or medical purposes.

Yazar Spotlight: Trichogramma Parazitoid Yaban Arılarından Verimli Zehir Ekstraksiyon Yöntemi 

Parazitoid Yaban Arısı Trichogramma dendrolimi'den Yapay Bir Konakçı Kullanarak Zehir Çıkarılması

Temsili zehir örneklerinin protein konsantrasyonu, protein tahlil kiti kullanılarak ölçüldü ve sonuçlar Tablo 1'de sunuldu. Sonuçlar, bu yöntemle toplanan zehir proteini konsantrasyonunun 0.35 μg/μL ila 0.46 μg/μL arasında değiştiğini, amino asit çözeltisinin negatif kontrolünün ise sadece 0.03 μg/μL ila 0.05 μg/μL protein konsantrasyonuna sahip olduğunu gösterdi. Bu yöntemle toplanan zehir proteini konsantrasyonu, negatif kontrolden çok daha yüksektir, bu da bu yöntemin pa...

Watch this Scientific Journal Video about Efficient Venom Extraction Method from Trichogramma Parasitoid Wasps at JoVE.com

Burada, polietilen film ve amino asit çözeltisi ile oluşturulan yapay bir konakçı kullanarak Trichogramma dendrolimi'den zehir çıkarmak için bir protokol sunuyoruz.

Parasitoid wasps are a diverse group of hymenopteran insects that serve as invaluable resources for pest biocontrol. To ensure successful parasitism, ...

Etkili zehir ekstraksiyon yöntemlerinin olmaması, özellikle küçük parazitoid yaban arılarında, parazitoid yaban arılarının zehiri üzerine yapılan araştırmaları sınırlar. Bu çalışma, protein kompanzasyonu ve zehir fonksiyon analizi gibi Trichogramma zehirinin takip sonrası çalışması ile Trichogramma zehirini çıkarmak için etkili bir yöntem sağlar. Önceden, parazitoid yaban arısı zehirinin değiş tokuşu için hiçbir yöntem, zehir rezervinin ayırt edilmesini gerektirmiyordu.Bununla birlikte, parazitoid yaban arıları küçüktür. Zehri ayırt etmek için teknik gereksinimler yüksek olmakla kalmaz, aynı zamanda diseksiyon sırasında diğer dokuların devamı da yaygındır. Normal yöntemimiz yapay konak kullanır, böylece bu tür sorunlardan kaçınır.Gelecekte, Trichogramma zehirinin tarımına ve tıbbi uygulamalarına odaklanacağız. Haşere kontrolü için spesifik böcek öldürücü zehir genlerini kullanmayı amaçlıyoruz. Bu arada, Trichogramma zehirinin metodolojide, özellikle immünoterapi tekniklerinin geliştirilmesinde ve yeni antibiyotik moleküllerinin keşfinde ileriye dönük faydasının kullanılmayan potansiyelini araştırmayı planlıyoruz.

extracting-venom-from-parasitoid-wasp-trichogramma-dendrolimi-using

Research

JoVE Journal

Biochemistry

Extracting Venom from the Parasitoid Wasp Trichogramma dendrolimi Using an Artificial Host

972 Görüntüleme.  Nanjing Agricultural University. Etkili zehir ekstraksiyon yöntemlerinin olmaması, özellikle küçük parazitoid yaban arılarında, parazitoid yaban arılarının zehiri üzerine yapılan araştırmaları sınırlar. Bu çalışma, protein kompanzasyonu ve zehir fonksiyon analizi gibi Trichogramma zehirinin takip sonrası çalışması ile Trichogramma zehirini çıkarmak için etkili bir yöntem sağlar. Önceden, parazitoid yaban arısı zehirinin değiş tokuşu için hiçbir yöntem, zehir rezervinin ayırt edilmesin...

Video: Yazar Spotlight: Trichogramma Parazitoid Yaban Arılarından Verimli Zehir Ekstraksiyon Yöntemi 

Parasitoid wasps are a diverse group of hymenopteran insects that serve as invaluable resources for pest biocontrol. To ensure successful parasitism, parasitoid wasps inject venom into their hosts to suppress their hosts&#39; immunity, modulate hosts&#39; development, metabolism, and even behavior. With over 600,000 estimated species, the diversity of parasitoid wasps surpasses that of other venomous animals, such as snakes, cone snails, and spiders. Parasitoid wasp venom is an underexplored source of bioactive molecules with potential applications in pest control and medicine. However, collecting parasitoid venom is challenging due to the inability to use direct or electrical stimulation and the difficulty in dissection because of their small size. Trichogramma is a genus of tiny (~0.5 mm) egg parasitoid wasps that are widely used for the biological control of lepidopteran pests in both agriculture and forests. Here, we report a method for extracting venom from T. dendrolimi using artificial hosts. These artificial hosts are created with polyethylene film and amino acid solutions and then inoculated with Trichogramma wasps for parasitism. The venom was subsequently collected and concentrated. This method enables the extraction of large amounts of Trichogramma venom while avoiding contamination from other tissues caused by dissection, a common issue in venom reservoir dissection protocols. This innovative approach facilitates the study of Trichogramma venom, paving the way for new research and potential applications.

Here, we present a protocol for extracting venom from Trichogramma dendrolimi using an artificial host created with polyethylene film and amino acid solution.