Name: measuring blood pressure in mice using volume pressure recording, a tail-cuff method
Uploaded: 2009-05-15T00:00:00
Duration: 8 min 54 s
Description: Watch this Scientific Journal Video about Measuring Blood Pressure in Mice using Volume Pressure Recording, a Tail-cuff Method at JoVE.com

<ol style="padding:5px;"><li> Подключение оборудования <ol style="padding:5px;"><li> Выберите область, в лаборатории, где температура в помещении при температуре не выше 20 ° C. </li><li> Избегайте мест возле вентиляционных шахт и / или громкий шум. </li><li> Не подвергайте животных к запахам, которые могут вызвать раздражение и / или стресс, такие как духи, одеколон, химикатов и чистящих средств. </li><li> Включите контроллер CODA. </li><li> Включите потепление платформы и установить на Уровень 3. Если температура в помещении выше 25 ° С, начать на уровнях 1 и 2. </li><li> Контроллер Диагностический тест <ol style="padding:5px;"><li> Открытое программное обеспечение CODA. </li><li> Выберите устройство CODA, щелкнув по нему. </li><li> Нажмите на &quot;Тест Выбранное устройство&quot;. </li><li> Выберите манжеты и каналы для проверки и нажмите кнопку &quot;Test&quot;. </li><li> После завершения тестирования, закройте окно Устройство испытаний. </li></ol></li></ol></li><li> Набор программного обеспечения для деятельности <ol style="padding:5px;"><li> Управление кадров и животных <ol style="padding:5px;"><li> Управление персонала <ol style="padding:5px;"><li> Выберите Сервис&gt; Управление персоналом. </li><li> Нажмите на &quot;Исследователь 1&quot;, чтобы изменить имя. </li><li> Нажмите на последующие строки для добавления дополнительных исследователей. </li><li> Нажмите на &quot;Техники Tab&quot;, чтобы изменить или добавить техников. </li><li> Нажмите на &quot;Образцы Tab&quot;, чтобы назвать животное для облегчения идентификации и выбора типа животных, крысы или мыши. </li><li> Нажмите на &quot;Животные Tab&quot;, чтобы изменить тип животных и чувствительности. </li></ol></li></ol></li><li> Новый эксперимент <ol style="padding:5px;"><li> Выберите Файл&gt; Создать&gt; Эксперимент </li><li> Начните новый эксперимент <ol style="padding:5px;"><li> Введите Название эксперимента. </li><li> Выберите ключевые научный сотрудник. </li><li> Выберите Дата начала и нажмите кнопку &quot;Далее&quot;. </li></ol></li><li> Основная информация сессии <ol style="padding:5px;"><li> Введите Имя сеанса </li><li> Установить &quot;Acclimation Циклы&quot; до 5. Если вы предпочитаете не включать акклиматизации циклов, равным нулю. Для оказания помощи в акклиматизации животных владельцу и манжеты, добавить дополнительные циклы в эксперимент и запустить эксперимент в течение 5 дней подряд. </li><li> Установить &quot;Количество наборов&quot; 1. </li><li> Комплект &quot;Время между сетами&quot; до 30 секунд для нескольких наборов </li><li> Установить &quot;Обороты в Set&quot; до 20 циклов. </li><li> Комплект &quot;Время между циклами&quot; на 5 секунд и нажмите кнопку &quot;Далее&quot;. </li></ol></li></ol></li><li> Выбор образца <ol style="padding:5px;"><li style="list-style-type:none;"><ol style="padding:5px;"><li> Выберите образец из образцов бассейн и присвоить ей первый доступный канал и нажмите кнопку &quot;Далее&quot;. </li></ol></li><li> Сессия Параметры <ol style="padding:5px;"><li> Установить &quot;Максимальное давление Occlusion&quot;, чтобы 250mmHg. </li><li> Установить &quot;Дефляция Time&quot; до 20 секунд для мышей, 15 секунд для крыс. </li><li> Установить &quot;минимальный объем&quot;, чтобы 15ul. </li><li> Установить &quot;Display Style&quot; для одного канала на графике. </li><li> Добавить дополнительные исследователей и технологов, и нажмите кнопку &quot;Далее&quot;. </li></ol></li><li> Сценарий сессии <ol style="padding:5px;"><li> Обзор сессии сценария и нажмите кнопку &quot;Далее&quot;. </li><li> Не выбирайте Finish до завершения разделе Подготовка животных. </li></ol></li></ol></li></ol></li><li> Подготовка животных <ol style="padding:5px;"><li> Животное Настройка <ol style="padding:5px;"><li> Животное держатель <ol style="padding:5px;"><li> Для обучения и повышения животных акклиматизации, добавить дополнительные циклы в эксперимент и запустить эксперимент в течение пяти дней подряд. Вы также можете помочь с акклиматизации, помещая животных в держателе в течение 15 минут в течение 3 последовательных дней до фактического исследования. </li><li> Место каждого животного в держатель, поднимая животное за хвост и осторожно размещения животных в заднюю часть держателя, которая стоит перед открытым концом носового обтекателя. Примечание: размер животного в зависимости от размера выбранного держателя. Животное должно иметь возможность свободно въезжать в держатель. </li><li> Тщательно безопасный задний люк, чтобы держатель, поворачивая красный колпачок на задний люк. Следует проявлять осторожность, чтобы избежать защемления хвост или любой другой части тела, обеспечивая при этом задний люк. </li><li> Слайд носового конуса в сторону заднего люка, ограничение движения животного. Носового обтекателя должны быть в состоянии ограничить животное от оборачиваясь то время как внутри держателя. </li><li> Место держатель на потепление платформы в указанном положении. Если тестирование одной группе животных в течение периода времени, не забудьте повернуть держатель позиции на потепление платформу для улучшения согласованности и точности ваших измерений АД. Разрешить животное по крайней мере 5-минут, чтобы акклиматизироваться к держателю. </li><li> Не трогайте и не обрабатывать животных в то время как внутри держателя. Расширить контакты могут раздражать животное. </li><li> Никогда не оставляйте животных в держателях без присмотра. </li></ol></li><li> Манжета размещения <ol sТайл = &quot;обивка: 5px;&quot;&gt; <li> Тема хвост через &quot;Occlusion Каффа&quot;. Разместите эту манжету как можно ближе к основанию хвоста насколько это возможно без силы. </li><li> Безопасные &quot;Occlusion манжеты трубы&quot; в паз на верхней задней части держателя. </li><li> Тема хвост через &quot;VPR Каффа&quot;, поместив его в течение 2 мм &quot;Occlusion Каффа&quot;. </li><li> Безопасные &quot;VPR манжеты трубы&quot; в паз на верхней задней части держателя. </li><li> Прикрепить манжеты к контроллеру CODA. </li></ol></li><li> Температура животных <ol style="padding:5px;"><li> Разрешить животное по крайней мере 5-минут thermoregulate. </li><li> Запись температуры животных часто с инфракрасным термометром. Животных температура должна быть от 32 до 35 ° C. </li></ol></li></ol></li></ol></li><li> Эксперимент <ol style="padding:5px;"><li> Начать эксперимент <ol style="padding:5px;"><li> Нажмите кнопку &quot;Готово&quot;, и эксперимент начнется немедленно. </li></ol></li><li> Конец эксперимента <ol style="padding:5px;"><li> Животное <ol style="padding:5px;"><li> Немедленно снять животное с манжетами и держатель. </li><li> Вернуться животных к их клетке после &quot;Простые краткого доклада сессии&quot; не отображается. </li></ol></li><li> Сбор данных <ol style="padding:5px;"><li> После завершения последнего цикла принято циклы будут автоматически отображаться в формате электронной таблицы в приложении CODA, нажмите на кнопку &quot;Экспорт в Excel&quot; кнопку. </li><li> Выберите папку для размещения файла в, имя файла и нажмите кнопку &quot;Сохранить&quot;. </li><li> Откройте приложение Excel и нажмите на кнопку «Открыть». </li><li> Посмотреть все типы файлов для показа &quot;. CSV-файл, сохраненный&quot;, нажмите на файле. </li></ol></li><li> Обработка данных <ol style="padding:5px;"><li> Есть несколько способов для обработки данных в файл Excel. Обычной практикой является получение среднего и стандартного отклонения. </li><li> Удалить измерения, если стандартное отклонение более чем на 30. </li><li> Кроме того, отклонена циклы могут быть просмотрены и вся база данных может быть легко экспортированы в Excel. Обратитесь к руководству пользователя для получения дополнительной информации. </li></ol></li></ol></li></ol></li></ol>

The authors have nothing to disclose.

measuring blood pressure in mice using volume pressure recording, a tail-cuff method

CODA 8-канальное High Пропускная Неинвазивное кровяное давление системы мер артериального давления у до 8 мышей и крыс одновременно. CODA хвостовой манжеты системе используются тома давления записи (ВПР) для измерения артериального давления путем определения объема хвост крови. Специально разработанный датчик дифференциального давления и окклюзии хвостовой манжеты мера общего объема крови в хвост без необходимости получения отдельного сигнала пульса. Особое внимание предоставляемой длина окклюзии манжеты для того, чтобы получить самые точные показания артериального давления. VPR легко получить показания на темнокожих грызунов, таких как C57BL6 мышей и МРТ совместимы. Система CODA предоставляет Вам измерений шести (6) различные параметры кровяного давления; систолического и диастолического артериального давления, частоты сердечных сокращений, среднее артериальное давление, поток крови хвост, хвост и объем крови. Измерения могут быть сделаны на любом сне или под наркозом мышей и крыс. CODA системы включает в себя контроллер, портативный компьютер, программное обеспечение, манжеты, животного владельцам, инфракрасные колодки потепления и инфракрасный термометр. Есть семь различных размеров держатель для мышей, как малые, как 8 граммов на крыс такого размера, как 900 граммов.

Watch this Scientific Journal Video about Measuring Blood Pressure in Mice using Volume Pressure Recording, a Tail-cuff Method at JoVE.com

Measuring Blood Pressure in Mice using Volume Pressure Recording, a Tail-cuff Method

CODA 8-канальное High Пропускная Неинвазивное кровяное давление системы мер артериального давления у до 8 мышей и крыс одновременно. Этот хвост манжеты системе используются тома давления записи (ВПР) для измерения артериального давления путем определения объема хвост крови.

Измерение артериального давления у мышей использованием тома давления Запись, хвост манжеты Метод

The CODA 8-Channel High Throughput Non-Invasive Blood Pressure system measures the blood pressure in up to 8 mice or rats simultaneously. The CODA ...

Research

JoVE Journal

Biology

Pressure-polishing Pipettes for Improved Patch-clamp Recording

Давление полировки Пипетки для улучшения Патч-зажим Запись

Pressure-polishing is a method for shaping glass pipettes for patch-clamp recording.  We first developed this method for fabricating pipettes suitable for ...

Making Gynogenetic Diploid Zebrafish by Early Pressure

Создание данио рерио гиногенетических диплоидных на ранних давления

Heterozygosity in diploid eukaryotes often makes genetic studies cumbersome. Methods that produce viable homozygous diploid offspring directly from ...

Ambulatory ECG Recording in Mice

Амбулаторно запись ЭКГ у мышей

Telemetric ECG recording in mice is essential to understanding the mechanisms behind arrhythmias, conduction disorders, and sudden cardiac death. Although ...

Isolation and Culture of Pulmonary Endothelial Cells from Neonatal Mice

Выделение и культуре эндотелиальных клеток легочной от новорожденных мышей

Endothelial cells provide a useful research model in many areas of vascular biology. Since its first isolation 1, human umbilical vein endothelial cells ...

Assessing Murine Resistance Artery Function Using Pressure Myography

Оценка Мышиные функции артерий сопротивления с помощью давления Миография

Pressure myograph systems are  exquisitely useful in the functional assessment of small arteries, pressurized  to a suitable transmural pressure. The  ...

One-channel Cell-attached Patch-clamp Recording

Один канал сотового прилагается патч-зажим записи

Ion channel proteins are universal devices for fast communication across biological membranes. The temporal signature of the ionic flux they generate ...

Measuring Respiratory Function in Mice Using Unrestrained Whole-body Plethysmography

Измерение функции внешнего дыхания у мышей, используя безудержного плетизмографии всего тела

Respiratory dysfunction is one of the leading causes of morbidity and mortality in the world and the rates of mortality continue to rise. Quantitative ...

A Method for Screening and Validation of Resistant Mutations Against Kinase Inhibitors

Метод скрининга и проверка мутаций устойчивости против ингибиторов киназ

The discovery of BCR/ABL as a driver oncogene in chronic myeloid leukemia (CML) resulted in the development of Imatinib, which, in fact, demonstrated the ...

Cardiac Pressure-Volume Loop Analysis Using Conductance Catheters in Mice

Сердечная давления Объем Анализ обратной связи с использованием проводимости Катетеры у мышей

Cardiac pressure-volume loop analysis is the &#8220;gold-standard&#8221; in the assessment of load-dependent and load-independent measures of ventricular ...

Measuring Pressure Volume Loops in the Mouse

Измерение давления громкости Loops в мыши

Understanding the causes and progression of heart disease presents a significant challenge to the biomedical community. The genetic flexibility of the ...